We recently found that the insect-derived antimicrobial peptide CopA3 (LLCIALRKK) directly binds to and inhibits the proteolytic activation of caspases, which play essential roles in apoptotic processes. However, the mechanism of CopA3 binding to caspases remained unknown. Here, using recombinant GST-caspase-3 and -6 proteins, we investigated the mechanism by which CopA3 binds to caspases. We showed that replacement of cysteine in CopA3 with alanine caused a marked loss in its binding activity towards caspase-3 and -6. Exposure to DTT, a reducing agent, also diminished their interaction, suggesting that this cysteine plays an essential role in caspase binding. Experiments using deletion mutants of CopA3 showed that the last N-terminal leucine residue of CopA3 peptide is required for binding of CopA3 to caspases, and that C-terminal lysine and arginine residues also contribute to their interaction. These conclusions are supported by binding experiments employing direct addition of CopA3 deletion mutants to human colonocyte (HT29) extracts containing endogenous caspase-3 and -6 proteins. In summary, binding of CopA3 to caspases is dependent on a cysteine in the intermediate region of the CopA3 peptide and a leucine in the N-terminal region, but that both an arginine and two adjacent lysines in the C-terminal region of CopA3 also contribute. Collectively, these results provide insight into the interaction mechanism and the high selectivity of CopA3 for caspases.
Cysteine-cysteine chemokine receptor 9 (CCR9) homologue cDNA was isolated from olive flounder leukocyte cDNA library. Olive flounder CCR9 homologue consisted of 1709 bp encoding 367amino acid residues. When compared with other known CCR peptide sequences, the most conserved region of the olive flounder CCR9 peptide is the seven transmembranes. A phylogenetic analysis based on the deduced amino acid sequence showed the homologous relationship between the olive flounder CCR9 sequence and that of Mouse CCR9. The olive flounder CCR9 gene was predominantly expressed in the Peripheral blood leukocytes (PBLs), kidney, spleen, and gills.
Ornithine decarboxylase (ODC, EC 4.1.1.17) is the first and key enzyme in eukaryotic polyamine biosynthesis. The cDNA encoding ornithine decarboxylase from Nicotiana glutinosa was cloned ($GeBank^{TM}$ AF 323910) and expressed in E. coli. Site directed mutagenesis were performed on several highly conserved cysteine residues. Among the mutants, C115A showed significant changes in the kinetic properties. The $K_m$ value of the C115A mutant was $1790\;{\mu}M$, which was 3-fold higher than that of the wild-type ODC. There was a dramatic decrease in the $k_{cat}$, values of the C115A mutant, compared to that of the wild-type ODC, which had a $k_{cat}$ value of $77.75\;s^{-1}$. C115A caused a shift in the optimal pH from 8.0 to 8.4. Considering these results, we suggest that cys-115 is involved in the catalytic activity of N. glutinosa ODC.
The catabolic ${\alpha}-acetolactate$ synthase purified from Serratia marcescens ATCC 25419 was rapidly inactivated by the tryptophane-specific reagent, N -bromosuccinimide, and the arginine-specific reagent, phenylglyoxal. The enzyme was inactivated slowly by the cysteine-specific reagent N-ethylmaleimide. The second-order rate constants for the inactivation by N-bromosuccinimide, phenylglyoxal. and N -ethylmaleimide were $114,749M^{-1}min^{-1}$, $304.3M^{-1}min^{-1}$, and $5.1M^{-1}min^{-1}$, respectively. The reaction order with respect to N-bromosuccinimide, phenylglyoxal, and N-ethylmaleimide were 1.5,0.71, and 0.86, respectively. The inactivation of the catabolic aacetolactate synthase by these modifying reagents was protected by pyruvate. These results suggest that essential tryptophane, arginine, and cysteine residues are located at or near the active site of the catabolic ${\alpha}-acetolactate$ synthase.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제5권1호
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pp.103-108
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2002
We describe here the cDNA sequence and mRNA expression of a novel serine pretense from the firefly, Pyrocoelia rufa. The 771 bp cDNA encodes for 257 amino acid residues. The deduced protein of P. rufa serine pretense gene contains the catalytic triad and six-conserved cysteine residues. Alignment of the deduced protein of P. rufa serine pretense gene showed 47.4% protein sequence identity to known coleopteran insect Rhyzopertha dominica midgut trpsin-like enzyme. Northern blot analysis revealed that the P. rufa serine pretense is specifically expressed in the midgut of P. rufa larvae.
Oxidative damage to mitochondria is a critical mechanism in necrotic or apoptotic cell death induced by many kinds of toxic chemicals. Thioredoxin (Trx) family proteins are known to play protective roles in organisms under oxidative stress through redox reaction by using reducing equivalents of cysteines at a conserved active site, Cys-X-X-Cys. Whereas biological and physiological properties of Trx1 are well characterized, significance of mitochondrial thioredoxin (Trx2) is not well known. Therefore, we addressed physiological role of Trx2 in PC12 cells under oxidative stress. In PC12 cells, transiently overexpressed Trx2 significantly reduced cell death induced by hydrogen peroxide, whereas mutant Trx2, having serine residues instead of two cysteine residues at the active site did not. In addition, stably expressed Trx2 protected PC12 cells from serum deprivation. These results suggest that Trx2 may play defensive roles in PC12 cells by reducing oxidative stress to mitochondria.
SigR ($\sigma$$\^$R/) is a sigma factor responsible for inducing the thioredoxin system in response to oxidative stress in Streptomyces coelicolor. RsrA specifically binds to $\sigma$$\^$R/ and inhibits $\sigma$$\^$R/-directed transcription under reducing conditions. Exposure to H$_2$O$_2$ or thiol-specific oxidant diamide dissociates $\sigma$$\^$R/-RsrA complex. RsrA contains 7 cysteine residues in 105 total amino acid residues.(omitted)
대한약학회 2002년도 Proceedings of the Convention of the Pharmaceutical Society of Korea Vol.2
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pp.179-180
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2002
The phospholipase $A_2$($PLA_2$) family represents a diverse group of enzymes that hydrolyze sn-2 fatty acid from the cell membrane. Several mammalian cytosolic $PLA_2$ and secretory $PLA_2$(s$PLA_2$) have been characterized and classified into different families. At present, 12 distinct sPLA$_2$s have been identified in mammals and classified into different groups, depending on their primary structures as characterized by the number and position of cysteine residues. (omitted)
A ${\beta}$-galactosidase with high transgalactosylic activity was purified from a Bacillus species, registered as KFCC10855. The enzyme preparation showed a single protein band corresponding to a molecular mass of 150 kDa on SDS-PAGE and gave a single peak with the estimated molecular mass of 250 kDa on Sephacryl S-300 gel filtration, suggesting that the enzyme is a homodimeric protein. The amino acid and sugar analyses revealed that the enzyme is a glycoprotein, containing 19.2 weight percent of sugar moieties, and is much more abundant in hydrophilic amino acid residues than in hydrophobic residues, the mole ratio being about 2:1. The pI and optimum pH were determined to be 5.0 and 6.0, respectively. Having a temperature optimum at $70^{\circ}C$ for the hydrolysis of lactose, the enzyme showed good thermal stability. The activity of the enzyme preparation was markedly increased by the presence of exogenous Mg (II) and was decreased by the addition of EDTA. Among the metal ions examined, the most severely inhibitory effect was seen with Ag (I) and Hg (II). Further, results of protein modification by various chemical reagents implied that 1 cysteine, 1 histidine, and 2 methionine residues occur in certain critical sites of the enzyme, most likely including the active site. Enzyme kinetic parameters, measured for both hydrolysis and transgalactosylation of lactose, indicated that the enzyme has an excellent catalytic efficiency for formation of the transgalactosylic products in reaction mixtures containing high concentrations of the substrate.
Succinic semialdehyde reductase, one of key enzyme of GABA shunt in CNS, is inactivated by o-phthalaldehyde, The inactivation followed pseudo first-order kinetics, and the second-order rate constant for the inactivation process was 28 M$\^$-1/s$\^$-1/ at pH 7.4 and 25$^{\circ}C$. The absorption spectrum(λ$\_$max/=377nm), fluorescence exitation(λ$\_$max/=340nm) and fluorescence emission spectra (λ$\_$max/=409nm) were consistent with the formation of an isoindole derivative in the catalytic site between a cysteine and a lysine residues about 3${\AA}$ apart. The substrate, succinic semialdehyde, did not protect the enzymatic activity against inactivation, whereas the coenzyme, NADPH, protected against o-phthalaldehyde induced inactivation of the enzyme. About 1 isoindole group per moi of the enzyme was formed following complete loss of the enzymatic activity. These results suggest that the amino acid residues of the enzyme participating in reaction with o-phthalaldehyde more likely residues at or near the coenzyme binding site.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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