Helminthic cysteine proteases are well known to play critical roles in tissue invasion, nutrient uptake, and immune evasion of the parasites. In the same manner, the sparganum, the plerocercoid of Spirometra mansoni, is also known to secrete a large amount of cysteine proteases. However, cysteine protease inhibitors regulating the proteolytic activities of the cysteine protease are poorly illustrated. In this regard, we partially purified an endogenous cysteine protease inhibitor from spargana and characterized its biochemical properties. The cysteine protease inhibitor was purified by sequential chromatographies using Resource Q anion exchanger and Superdex 200 HR gel filtration from crude extracts of spargana. The molecular weight of the purified protein was estimated to be about 11 kD on SDS-PAGE. It was able to inhibit papain and 27 kDa cysteine protease of spargana with the ratio of 25.7% and 49.1%, respectively, while did not inhibit chymotrypsin. This finding suggests that the cysteine protease inhibitor of spargana may be involved in regulation of endogenous cysteine proteases of the parasite, rather than interact with cysteine proteases from their hosts.
Cysteine showed strong inhibitory effect on growth and protease production of Pseudo- monas sp. RP-222 and its mutant, MR-3966. Mid- to late-log phase cells were most sensitive to the presence of 10 mM cysteine. The inhibition caused by cysteine was almost completely overcome by addition of isoleucine, leucine and valine mixture to the medium, and inclusion of iso#leucine alone could greatly reduce the inhibitory effects of cysteine. Homocysteine and #cysteine, sulfur compounds having similar structure as cysteine, inhibited to varying degrees the growth of both strains. Cysteine and homocysteine were strong inhibitors of threonine deaminase but not transa#- minase B. These results suggest a relationship between the growth-inhibitory effects of cysteine and other sulfur compounds and the inhibition of isoleucine synthesis at the level of threonine deaminase.
Cysteine proteases have been known as a critical factor in plant defense mechanisms in pineapple, papaya, or wild fig. Papain or ficin is one kind of cysteine proteases that shows toxic effects to herbivorous insects and pathogenic bacteria. However, resistance to bacterial soft rot of plants genetically engineered with cysteine protease has been little examined thus far. We cloned a cysteine protease cDNA from Ananas comosus and introduced the gene into Chinese cabbage (Brassica rapa) under the control of the cauliflower mosaic virus 35S promoter. The transgene was stably integrated and actively transcribed in transgenic plants. In comparisons with wild-type plants, the $T_2$ and $T_3$ transgenic plants exhibited a significant increase in endo-protease activity in leaves and enhanced resistance to bacterial soft rot. A cDNA microarray analysis revealed that several genes were more abundantly transcribed in the transgenic than in the wild type. These genes encode a glyoxal oxidase, PR-1 protein, PDF1, protein kinase, LTP protein, UBA protein and protease inhibitor. These results suggest an important role for cysteine protease as a signaling regulator in biotic stress signaling pathways, leading to the build-up of defense mechanism to pathogenic bacteria in plants.
In this study, we have cloned a novel cDNA encoding for a papain-family cysteine protease from the Uni-ZAP XR cDNA library of the polychaete, Periserrula leucophryna. This gene was expressed in Escherichia coli using the T7 promoter system, and the protease was characterized after partial purification. First, the partial DNA fragment (498 bp) was amplified from the total RNA via RT-PCR using degenerated primers derived from the conserved region of cysteine protease. The full-length cDNA of cysteine protease (PLCP) was prepared via the screening of the Uni-ZAP XR cDNA library using the $^{32}P-labeled$ partial DNA fragment. As a result, the PLCP gene was determined to consist of a 2591 bp nucleotide sequence (CDS: 173-1024 bp) which encodes for a 283-amino acid polypeptide, which is itself composed of an 59-residue signal sequence, a 6-residue propeptide, a 218-residue mature protein, and a long 3'-noncoding region encompassing 1564 bp. The predicted molecular weights of the preproprotein and the mature protein were calculated as 31.8 kDa and 25 kDa, respectively. The results of sequence analysis and alignment revealed a significant degree of sequence similarity with other eukaryotic cysteine proteases, including the conserved catalytic triad of the $Cys^{90},\;His^{226},\;and\;Asn^{250}$ residues which characterize the C1 family of papain-like cysteine protease. The nucleotide and amino acid sequences of the novel gene were deposited into the GenBank database under the accession numbers, AY390282 and AAR27011, respectively. The results of Northern blot analysis revealed the 2.5 kb size of the transcript and ubiquitous expression throughout the entirety of the body, head, gut, and skin, which suggested that the PLCP may be grouped within the cathepsin F-like proteases. The region encoding for the mature form of the protease was then subcloned into the pT7-7 expression vector following PCR amplification using the designed primers, including the initiation and termination codons. The recombinant cysteine proteases were generated in a range of 6.3 % to 12.5 % of the total cell proteins in the E. coli BL21(DE3) strain for 8 transformants. The results of SDS-PAGE and Western blot analysis indicated that a cysteine protease of approximately 25 kDa (mature form) was generated. The optimal pH and temperature of the enzyme were determined to be approximately 9.5 and $35^{\circ}C$, respectively, thereby indicating that the cysteine protease is a member of the alkaline protease group. The evaluation of substrate specificity indicated that the purified protease was more active towards Arg-X or Lys-X and did not efficiently cleave the substrates with non-polar amino acids at the P1 site. The PLCP evidenced fibrinolytic activity on the plasminogen-free fibrin plate test.
Hong, Seong Chul;Her, Kyu-Hee;Kim, Heung-Up;Lee, Jaechun;Lee, Sang Pyo;Chung, Young-Bae
Parasites, Hosts and Diseases
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제52권1호
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pp.117-120
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2014
Several studies have reported that the citrus red mites Panonychus citri were an important allergen of citrus-cultivating farmers in Jeju Island. The aim of the present study was to purify and assess properties of a cysteine protease from the mites acting as a potentially pathogenic factor to citrus-cultivating farmers. A cysteine protease was purified using column chromatography of Mono Q anion exchanger and Superdex 200 HR gel filtration. It was estimated to be 46 kDa by gel filtration column chromatography and consisted of 2 polypeptides, at least. Cysteine protease inhibitors, such as trans poxy-succinyl-L-leucyl-amido (4-guanidino) butane (E-64) and iodoacetic acid (IAA) totally inhibited the enzyme activities, whereas serine or metalloprotease inhibitors did not affect the activities. In addition, the purified enzyme degraded human IgG, collagen, and fibronectin, but not egg albumin. From these results, the cysteine protease of the mites might be involved in the pathogenesis such as tissue destruction and penetration instead of nutrient digestion.
Protease inhibitor of 72.6 kDa was successively purified from chum salmon (Oncorhynchus keta) eggs by ion exchange, gel permeation, and affinity chromatographies. Protease inhibitor was purified with yield and purification fold of 1.50% and 58.11, respectively. SDS-PAGE results showed purified protease inhibitor consisted of two protein subunits of 54.0 and 18.6 kDa. Chum salmon inhibitor exhibited stability between 20 and $40^{\circ}C$ in weak acid environment (PH 6), and inhibited papain and cathepsin, members of cysteine protease, but not chymotrypsin. The protein inhibited cathepsin more effectively than did egg white protease inhibitor, whereas the reverse was true for papain. These results indicate chum salmon egg inhibitor is heterodimer, thus the inhibitor was classified as cysteine protease inhibitor.
Proteases play important roles in parasite development and host parasite interactions. The protease of Kudoa spp. has been recognized as a key factor of severe proteolysis of fish muscle post-mortem; however, there is little information available regarding the protease of Kudoa (K.) septempunctata, which was recently identified as a cause of food poisoning in humans. The present study was conducted to isolate and characterize proteases to elucidate the type of protease contained in the parasite and determine the optimal pH for protease activity. We confirmed the cysteine protease and metalloprotease produced by K. septempunctata. While the cysteine protease showed optimal activity at pH 5 that decreased rapidly with increasing pH, the optimal activity of metalloprotease was pH 7, and it remained stable from pH 6 to pH 8. These results indicate that the pH of cysteine protease is not proper for fish muscle postmortem, and that metalloprotease can act in human intestines. Overall, the present study provides important information that improves our understanding of the role of protease physiology and the subsequent food poisoning caused by K. septempunctata.
KIM Ji-Young;YANG Hyun-Jong;KIM Kwang-Sig;CHUNG Young-Bae
Parasites, Hosts and Diseases
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제43권4호
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pp.157-160
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2005
A 29kDa cysteine protease of Taenia solium metacestodes was purified by Mono Q anion-exchanger and Superose 6 HR gel filtration chromatography. The enzyme was effectively inhibited by cysteine protease inhibitors, such as iodoacetic acid (IAA) and trans-epoxy-succinyl-L-leucyl-amido (4-guanidino) butane (E-64) while inhibitors acting on serine- or metallo-proteases did not affect the enzyme activity. The purified enzyme degraded human immunoglobulin G (IgG), collagen and bovine serum albumin (BSA), but human IgG was more susceptible for proteolysis by the enzyme. To define the precise biological roles of the enzyme, more detailed biochemical and functional studies would be required.
참굴큰입흡충 (Gymnophalloides seoi)의 병원성을 규명하기 위한 연구의 일환으로 성충의 조효 소에서 단백분해효소를 분리 정제한 후 생화학적 특성을 관찰하였다. 조효소를 0.1 M sodium acetate (pH 4.5)로 투석한 후 원심분리하여 얻은 상층액을 Sephacris S-200 HR column chromatography로 부분 정제한 후 DEAE-Sephacelcolumnchromatography를 실시하여 순수 정 제하였다. SDS-PAGE를 실시하여 각 정제 단계별 시료의 정제도를 확인한 결과 분자량이 40 kDa 인 단일 분획이 관찰되었다. 정제된 효소는 시스테인 단백분해효소의 특이억제제인 L-lorans- epoxysuccinylleucylamido (4-guanidino) butane (E-64)와 iodoacetic acid, 세린 및 시스테인 단백분해효소의 일반 억제제인 leupeptin에 의해 활성이 억제되어 시스테인 단백분해효소임을 확 인하였다. 정제된 효소는 콜라겐, 파이브로넥틴과 같은 세포외 기질을 분해하였으나 헤모글로빈은 분해정도가 낮아 반응 12시간 후에도 단량체 (monomer)와 이합체 (dimer)의 양이 대조군과 큰 차이가 없었으며, IgGEa와 slgAE 거의 분해하지 믓하였다. 따라서, 참굴큰입흡충 성충의 40 kDa 시스테인 단백분해효소는 충체가 숙주 체내에서 기생생환을 하는데 필요한 영양분 섭취에 주로 관여할 것으로 생각되었다.
As a preliminary study for the explanation of pathobiology of Neodiplostomum seoulense infection. a 54 kDa protease was purified from the crude extract of adult worms by sequential chromatographic methods. The crude extract was subjected to DEAE-Sepharose Fast Flow column, and protein was eluted using 25 mM Tris-HC1 (pH 7.4) containing 0.05. 0.1, 0.2 and 0.4 M NaC1 in stepwise elution. The 0.2 M NaCl fraction was further purified by Q-Sepharose chromatography and protein was eluted using 20 mM sodium acetate (pH 6.4) containing 0.05, 0.1. 0.2 and 0.3 M NaCl, respectively. The 0.1M NaCl fraction showed a single protein band on SDS-PAGE carried out on a 7.5-15% gradient gel. The proteolytic activities of the purified enzyme were specifically inhibited by L-trans-epoxy-succinylleucylamide (4-guanidino) butane (E-64) and iodoacetic acid. The enzyme, cysteine protease. showed the maximum proteolytic activity at pH 6.0 in 0.1 M buffer, and degraded extracellular matrix proteins such as collagen and fibronectin with different activities. It is suggested that the cysteine protease may playa role in the nutrient uptake of N. seoulense from the host intestine.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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