We have previously reported that 2.4 kb of L-plastin promoter (LP) could regulate the expression of adenoviral vector (AV) exogenous genes in a tumor cell specific manner. In the present study, we tested if the replication competent AdLPE1A vector results in a direct cytotoxic effect in hepatocelluar carcinoma (HCC) cells. In vitro cytotoxicity tests were carried out with replication-competent (AdLPE1A) and -incompetent (AdLPCD) LP-driven vectors. AdLPE1A is an AV in which LP was inserted 5' to the E1A and E1B genes. The AdLPCD vector contains LP and the E. coli cytosine deaminase (CD) gene in transcription unit. Exposure of cells to AdLPE1A generated a significant cytotoxic effect as compared to the control. Almost 90% of the cell had manifested the characteristic cytopatic effect on day 9 after infection of cells with 10 MOI of AdLPE1A. On the other hand, almost 35% of the cells were left when the cells had been treated with 100 MOI of AdLPCD together with 5-FC on day 9 when compared with the cells which had never been exposed neither 5-FC nor AdLPCD. These results showed that the replication competent AdLPE1A vector could kill the HepG2 cells directly by the oncolytic effect of the virus. The replication competent AV vector carrying viral E1A generated greater cytotoxic effect than the replication incompetent AV, which contains the CD prodrug activation transcription unit without E1A, in HepG2 cells.
단백질분해효소를 생산하지 않는 균주 B. subtilis MT-2의 염색체 DNA를 추출한 다음, B. subtilis AC819 균주에 상동성 유전자재조합을 이용하여 competent cell 형질전환을 시켰다. 얻어진 형질전환체를 B. subtilis HL-1이라고 명명하였으며, 그 표현형은 histidine 요구성, streptomycin 내성, tetracyclin 내성을 나타내면서 단백질 분해효소를 생산하지 않았다. 플라스미드 pUB110 을 이용한 B. subtilis HL-1의 protoplst 형질전환율은 B. subtilis MT-2의 형질전환율보다 높았다. 따라서 새로운 B. subtilis HL-1균주는 단백질분해효소의 형질전환과 내열성 protease 유전자클로닝에서 숙주로 사용하는데 유용하다.
본 연구는 형질전화우의 생산성 제고를 위한 일환으로서 새로운 기법인 retrovirus vector system의 이용성을 검토하고자 실시하였다. Retrovirus-producing cell은 미세주입법을 이용하여 체외생산된 1.5일(1~4-세포기) 수정란의 위란강에 주입(5~10 cells/embryo) 되었으며, 이때 사용된 retrovirus-producing cell line은 Gibbon ape leukemia virus (GaLV) envelope protein에 encapsidation되어 replication-defective retrovirus를 분비하도록 제작되었다. 주입된 유전자의 표지유전자로서 E. coli LacZ 유전자를 사용하였으며, X-gal 염색법은 발달이 유도된 상실배와 배반포 단계에 실시하여 LacZ 유전자의 발현 유무를 확인하였다. 이 실험의 결과를 요약하면 다음과 같다. 1. Virus의 infectivity를 높이기 위해 사용된 polybrene의 최저농도는 5$\mu\textrm{g}$/ml이었다. 2. Retrovirus-producing cell이 주입된 1.5일 수정란의 상실배기와 배반포기로의 발달율은 29%였다. 3. 이 때의 LacZ+ 발현율은 21%였다. 4. 본 실험에 사용된 retrovirus-producing cell은 replication-competent retroviruses를 생산해 내지않는다는 것을 확인할 수 있었다.
Production of genome-edited animals using germline-competent cells and genetic modification tools has provided opportunities for investigation of biological mechanisms in various organisms. The recently reported programmed genome editing technology that can induce gene modification at a target locus in an efficient and precise manner facilitates establishment of animal models. In this regard, the demand for genome-edited avian species, which are some of the most suitable model animals due to their unique embryonic development, has also increased. Furthermore, germline chimera production through longterm culture of chicken primordial germ cells (PGCs) has facilitated research on production of genome-edited chickens. Thus, use of avian germline modification is promising for development of novel avian models for research of disease control and various biological mechanisms. Here, we discuss recent progress in genome modification technology in avian species and its applications and future strategies.
온도감수성 대장균 M5248 균주에 있어서의 plasmid $pPL-\lambda$와 pAS1을 $30^{\circ}C$에서 형질전환 시킬 때의 조건을 조사한 바 배양시간에 있어서는 균주의 대수 증식기 중반인 2시간 30분 배양시, 즉 cell농도는 $4.5\times10^7\;cells/ml$이며 파장 590nm에서의 흡광도가 0.45 일 때 plasmid $pPL-\lambda$와 pAS1 모두 형질전환율은 $2.4\times10^6$과 $1.5\times10^{-6}$로서 가장 높았다. 그리 고 competent cell $200{\mu}l(9\times10^{-6}cell)$에 대하여 plasmid 농도가 $6.4{\mu}g/ml$ 형질전환율이 $4.4\times10^{-6}$로서 높게 나타났으며 이때 calcium chloride만으로 처리한 것 보다 calcium chloride와 thymidine을 혼합하여 처리했을 때 2배 정도 더 많은 transformant를 유도하였다. Ampicillin 내성유전자는 LB배지를 첨가하여 $30^{\circ}C$에서 2시간 동안 배양했을 때 그 형질이 표현되었다.
Direct Methanol Fuel Cell (DMFC) is considered as a candidate technology for applications in stationary, transportation as well as electronic power generation purposes. To develop a high performance direct methanol fuel cell(DMFC), a competent electrolyte membrane is needed. The electrolyte membrane should be durable and methanol crossover must be low. One of the approaches to increase the stability of generally used polymer electrolyte membranes such as Nafion against swelling or thermal degradation is to bond it with an inorganic material physically or chemically. In Noritake Company, we have developed a novel method of reinforcing the polymer electrolyte matrix with inorganic fibers. Methanol crossover values measured were significantly lower than the original polymer electrolyte membranes. These fiber reinforced electrolyte membranes (FREM) were used for DMFC study and stable power output values as high 160 mW/$\textrm{cm}^2$ were measured. The details of the characteristics of the membranes as well as I-V data of fuel cell stacks are detailed in the paper.
The fusogenic membrane glycoprotein (FMG) derived from the human endogenous retrovirus-W (HERV-W) exhibits fusogenic properties, making it a promising candidate for cancer gene therapy. When cells are transfected with HERV-W FMG, they can fuse with neighboring cells expressing the receptor, resulting in the formation of syncytia. These syncytia eventually undergo cell death within a few days. In addition, it has been observed that an HERV-W env mutant, which is truncated after amino acid 483, displays increased fusogenicity compared to the wild-type HERV-W env. In this study, we observed syncytium formation upon transfection of HeLa and TE671 human cancer cells with plasmids containing the HERV-W 483 gene. To explore the potential of a semi-replication-competent retroviral (s-RCR) vector encoding HERV-W 483 for FMG-mediated cancer gene therapy, we developed two replication-defective retroviral vectors: a gag-pol vector encoding HERV-W 483 (MoMLV-HERV-W 483) and an env vector encoding VSV-G (pCLXSN-VSV-G-EGFP). When MoMLV-HERV-W 483 and pCLXSN-VSV-G-EGFP were co-transfected into HEK293T cells to produce the s-RCR vector, gradual syncytium formation was observed. However, the titers of the s-RCR virus remained consistently low. To enhance gene transfer efficiency, we constructed an RCR vector encoding HERV-W 483 (MoMLV-10A1-HERV-W 483), which demonstrated replication ability in HEK293T cells. Infection of A549 and HT1080 human cancer cell lines with this RCR vector induced syncytium formation and subsequent cell death. Consequently, both the s-RCR vector and RCR encoding HERV-W 483 hold promise as valuable tools for cancer gene therapy.
Human Immunodeficiency Virus type 1 (HIV-l) based lentivirus vector has demonstrated great potential as gene therapy vectors mediating efficient gene delivery and long-term transgene expression in both dividing and nondividing cells. However, for clinical studies it must be confirmed that vector preparations are safe and not contaminated by replication competent lentivirus (RCL) related to the parental pathogenic virus, HIV-l. In this study, we would like to establish the method for titration and RCL detection of lentivirus vector. The titration was determined by vector expression containing the green fluorescent protein, GFP in transduced cells. The titer was $1{\times}10^7$ Transducing Unit/ml in the GFP expression assay and $8.9{\times}10^7$ molecules/ml in the real-time PCR. Also, for the detection of RCL, we have used a combination method of PCR and p24 antigen detection. First, PBS/psi and VSV-G region in the genomic DNA of transduced cells was detected by PCR assay. Second, transfer and expression of the HIV-1 gag gene was detected by p24 ELISA. In an attempt to amplify any RCL, the transduced cells were cultured for 3 weeks (amplification phase) and the supernatant of amplified transduced cell was used for the second transduction to determine whether a true RCL was present (indicator phase). Analysis of cells and supernatant at day 6 in indicator phase were negative for PBS/psi, VSV-G, and p24 antigen. These results suggest that they are not mobilized and therefore there are no RCL in amplification phase. Thus, real-time PCR is a reliable and sensitive method for titration and RCL detection of lentivirus vector.
Genetic materials including DNA plasmid are effective delivery vehicle to express interesting gene efficiently and safely not to generate replication competent virus. Moreover, it has advantages to design a better vector and to simplify manufacturing and storage condition. To understand a possible pathogenic mechanism by a flavivirus, West Nile virus (WNV), WNV genome sequence was aligned to other pathogenic viral genome. Interestingly, WNV capsid (Cp) amino acid sequence has some homology to HIV-l Vpr protein. These proteins induce apoptosis in human cell lines as well as in vivo and cell cycle arrest. Therefore, DNA plasmid carrying apoptosis-inducing and cell cycle arresting viral proteins including a HIV-1 Vpr and a WNV Cp protein can be useful for anti-cancer therapeutic applications. This WNV Cp protein is an early expressed protein which can be a reasonable target antigen (Ag) for vaccine design. Immunization of a DNA construct encoding WNV Cp protein induces a strong Ag-specific humoral and Th1-type immune responses in animal. Therefore, DNA plasmid encoding apoptotic viral proteins can be useful tool for therapeutic and prophylactic applications.
Journal of mucopolysaccharidosis and rare diseases
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제5권1호
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pp.12-16
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2021
Mucopolysaccharidosis type II (MPS II, Hunter syndrome) is an X-linked lysosomal storage disorder caused by deficiency of the enzyme iduronate-2-sulfatase, leading to the accumulation of glycosaminoglycans (GAGs), which affects multiple organs and systems. Current treatments for MPS II include enzyme replacement therapy (ERT) and hematopoietic cell transplantation (HCT) to reduce the accumulation of GAGs. HCT has the potential advantage that donor-derived enzyme-competent cells can provide a continuous secreting source of the enzyme. However, HCT as a treatment for MPS II remains controversial because its effectiveness is unclear, particularly in terms of neurological symptoms. To date, several clinical experiences with HCT in MPS II have been reported. In this paper, we review post-HCT outcomes in the previously published literature and discuss the effects of HCT on each of the clinical signs and symptoms of MPS II.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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