Pseudomonas aeruginosa accounts for a significant proportion of nosocomial infections. This study examined the antimicrobial susceptibility pattern and clonal relatedness of P. aeruginosa isolates of clinical and environmental origin. These isolates displayed susceptibility to levofloxacin, ciprofloxacin, gentamicin, imipenem, and ceftazidime of 65.0%, 62.5%, 90.0%, 100%, and 85%, respectively. PCR-RAPD analysis of the P. aeruginosa isolates revealed marked variation. No correlation was observed between the antibiotic resistance profiles and the DNA typing patterns.
We compared the antimicrobial resistance and clonal relationships among the community-acquired (CA) and hospital-acquired (HA) methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) strains that were isolated from blood cultures in a university hospital over a 4-year period. A total of 131 MRSA isolates, including 28 CA-MRSA and 103 HA-MRSA strains, were identified; antimicrobial susceptibility testing indicated that the CA-MRSA isolates were more susceptible to erythromycin (21 % vs 6% ; P=0.02), clindamycin (46% vs 12%; P<0.01), ciprofloxacin (43% vs 11%; P<0.01), and gentamicin (43% vs 6%; P<0.01) than were the HA-MRSA isolates. Pulsed-field gel electrophoresis (PFGE) typing and antimicrobial resistance profiles separated the 20 CA-MRSA isolates into 14 and 10 different patterns, respectively, and the 53 HA-MRSA isolates were separated into 24 and 7 different patterns, respectively. Twenty-one (40%) of the 53 HA-MRSA isolates belonged to two predominant PFGE types, and most of them showed multi-drug resistant patterns. Four (20%) of the 20 CA-MRSA and 10 (19%) of the 53 HA-MRSA isolates fell into two common PFGE patterns, and each of them showed the same multi-drug resistant pattern. This study suggests that, although the CA-MRSA blood isolates showed diverse PFGE and antimicrobial resistance patterns, some of these isolates may have originated from the HA-MRSA strains.
DNA fingerprint patterns of 8 Brucella reference strains and 15 B. abortus field isolates were characterized by repetitive element sequence-based PCR (rep-PCR) using BOX- and ERIC-primers in this study. AMOS PCR differentiated all Brucella field isolates from B. abortus RB51, a vaccine strain by producing a B. abortus-specific 498 bp band. Rep-PCR using BOX-primer produced 13 to 18 bands with sizes of between 230 and 3,300 bp, and discriminated Brucella strains to the species level except B. canis and B. suis. PCR products amplified with ERIC primers were, however, not appropriate for differentiating the Brucella isolates. DNA fingerprint patterns for all B. abortus field isolates were identical among them and were put on one cluster with B. abortus biovar 1 reference strain in the dendrogram, indicating they were highly clonal. These results suggested that rep-PCR using BOX primer might to be a useful tool for calculating genetic relatedness among the Brucella species and for the study of brucellosis epidemiology.
Distribution of Salmonella enterica serovars and their associated virulence determinants is wide-spread among food animals, which are continuously implicated in periodic salmonellosis outbreaks globally. The aim of this study was to determine and evaluate the diversity of five Salmonella serovar virulence genes (invA, pefA, cdtB, spvC and iroN) isolated from food animals and humans. Using standard microbiological techniques, Salmonella spp. were isolated from the feces of humans and three major food animals. Virulence determinants of the isolates were assayed using PCR. Clonal relatedness of the dominant serovar was determined via pulsed-field gel electrophoresis (PFGE) using the restriction enzyme, Xbal. Seventy one Salmonella spp. were isolated and serotyped into 44 serovars. Non-typhoidal Salmonella (NTS; 68) accounted for majority (95.8%) of the Salmonella serovars. Isolates from chicken (34) accounted for 47.9% of all isolates, out of which S. Budapest (14) was predominant (34.8%). However, the dominant S. Budapest serovars showed no genetic relatedness. The invA gene located on SPI-1 was detected in all isolates. Furthermore, 94% of the isolates from sheep harbored the spvC genes. The iroN gene was present in 50%, 100%, 88%, and 91% of isolates from human, chicken, sheep, and cattle, respectively. The pefA gene was detected in 18 isolates from chicken and a single isolate from sheep. Notably, having diverse Salmonella serovars containing plasmid encoded virulence genes circulating the food chain is of public health significance; hence, surveillance is required.
Kim, Se-Hee;Kim, Keun-Yong;Kim, Chang-Hoon;Lee, Woo-Sung;Chang, Man;Lee, Jung-Hyun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제14권5호
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pp.959-966
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2004
Twenty-three cultures of harmful algal bloom (HAB)-(causing dinoflagellates were isolated from the coastal waters of Korea. For each of the 14 morphospecies, the nuclearencoded small subunit (SSU) rDNA was analyzed to determine the phylogenetic relatedness of the species. Despite temporal and spatial isolation, 3-4 clonal cultures of Alexandrium catenella, Cochlodinium polykrikoides, and Gymnodinium catenatum had 100% identical SSU rDNA sequences. In contrast, heterogeneities in the SSU rDNA sequences were observed in Akashiwo sanguinea and Lingulodinium polyedrum strains. Extreme sequence polymorphism was shown within the SSU rRNA genes of an Al. tamarense clonal culture. A homology search in GenBank revealed that 11 dinoflagellate species were located in clusters corresponding to their morphological classification. The SSU rDNA sequences of C. polykrikoides, Gyrodinium instriatum, and Pheopolykrikos hartmannii, which were determined for the first time in this study, showed the following phylogenetic relationships: C. polykrikoides formed an independent branch separated from other dinoflagellates; Gyr. instriatum was placed in a monophyletic group with Gyr. dorsum and Gyr. uncatenum; and Ph. hartmanii, which forms a distinct two-celled pseudocolony, belonged to Gymnodinium sensu Hansen and Moestrup.
Jareonmit, Pechrada;Sajjaphan, Kannika;Sadowsky, Michael J.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제20권1호
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pp.169-178
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2010
The microbial community structure in Thailand soils contaminated with low and high levels of arsenic was determined by denaturing gradient gel electrophoresis. Band pattern analysis indicated that the bacterial community was not significantly different in the two soils. Phylogenetic analysis obtained by excising and sequencing six bands indicated that the soils were dominated by Arthrobacter koreensis and $\beta$-Proteobacteria. Two hundred and sixty-two bacterial isolates were obtained from arsenic-contaminated soils. The majority of the As-resistant isolates were Gramnegative bacteria. MIC studies indicated that all of the tested bacteria had greater resistance to arsenate than arsenite. Some strains were capable of growing in medium containing up to 1,500 mg/l arsenite and arsenate. Correlations analysis of resistance patterns of arsenite resistance indicated that the isolated bacteria could be categorized into 13 groups, with a maximum similarity value of 100%. All strains were also evaluated for resistance to eight antibiotics. The antibiotic resistance patterns divided the strains into 100 unique groups, indicating that the strains were very diverse. Isolates from each antibiotic resistance group were characterized in more detail by using the repetitive extragenic palindromic-PCR (rep-PCR) DNA fingerprinting technique with ERIC primers. The PCR products were analyzed by agarose gel electrophoresis. The genetic relatedness of 100 bacterial fingerprints, determined by using the Pearson product-moment similarity coefficient, showed that the isolates could be divided into four clusters, with similarity values ranging from 5-99%. Although many isolates were genetically diverse, others were clonal in nature. Additionally, the arsenic-resistant isolates were examined for the presence of arsenic resistance (ars) genes by using PCR, and 30% of the isolates were found to carry an arsenate reductase encoded by the arsC gene.
Chung, Yeon Soo;Kwon, Ka Hee;Shin, Sook;Kim, Jae Hong;Park, Yong Ho;Yoon, Jang Won
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제24권3호
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pp.386-393
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2014
Possible cross-transmission of hospital-associated enterococci between human patients, medical staff, and hospital environments has been extensively studied. However, limited information is available for veterinary hospital-associated Enterococcus isolates. This study investigated the possibility of cross-transmission of antibiotic-resistant enterococci between dog patients, their owners, veterinary staff, and hospital environments. Swab samples (n=465) were obtained from five veterinary hospitals in Seoul, Korea, during 2011. Forty-three Enterococcus strains were isolated, representing seven enterococcal species. E. faecalis and E. faecium were the most dominant species (16 isolates each, 37.2%). Although slight differences in the antibiotic resistance profiles were observed between the phenotypic and the genotypic data, our antibiogram analysis demonstrated high prevalence of the multiple drug-resistant (MDR) isolates of E. faecalis (10/16 isolates, 62.5%) and E. faecium (12/16 isolates, 75.0%). Pulsed-field gel electrophoretic comparison of the MDR isolates revealed three different clonal sets of E. faecalis and a single set of E. faecium, which were isolated from different sample groups or dog patients at the same or two separate veterinary hospitals. These results imply a strong possibility of cross-transmission of the antibiotic-resistant enterococcal species between animal patients, owners, veterinary staff, and hospital environments.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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