The object of this study was to obtain accurate information about the co-administration effects of cardiotonic pills on the pharmacokinetics of cilostazol were observed as a process of the comprehensive and integrative medicine. Cilostazol is a synthetic anti-platelet and vasodilator agent developed for the treatment of intermittent claudication resulting from peripheral arterial disease. By increasing intracellular cyclic adenosine monophosphate (cAMP), cilostazol induces the activation of protein kinase A, which activates endothelial nitric oxide synthase. In order to evaluate the effect of a single or repeated cardiotonic pill dose on the pharmacokinetics of cilostazol, a single dose of pure_distilled water or a colloidal suspension of distilled water and cardiotonic pills were administered to the control and test groups, respectively. After 30 min, both groups were administered cilostazol. Plasma was collected 30min before administration, and 0.25, 0.5, 0.45, 1, 2, 4, 6, 8, and 24h after the end of cilostazol treatment. We then evaluated the pharmacokinetic changes observed with cilostazol between the control and test groups. No statistically significant differences were observed. These findings demonstrated that a single dose of cardiotonic pills did not affect the pharmacokinetics of cilostazol. The results obtained in this study suggest that co-administration of cardiotonic pills and cilostazol may not affect the bioavailability of cilostazol as a potential drug interaction.
Cilostazol is known to be a selective inhibitor of phosphodiesterase III and is generally used to treat stroke. Our previous findings showed that cilostazol enhanced capillary density through angiogenesis after focal cerebral ischemia. Angiogenesis is an important physiological process for promoting revascularization to overcome tissue ischemia. It is a multistep process consisting of endothelial cell proliferation, migration, and tubular structure formation. Here, we examined the modulatory effect of cilostazol at each step of the angiogenic mechanism by using human brain microvascular endothelial cells (HBMECs). We found that cilostazol increased the migration of HBMECs in a dose-dependent manner. However, it did not enhance HBMEC proliferation and capillary-like tube formation. We used a cDNA microarray to analyze the mechanisms of cilostazol in cell migration. We picked five candidate genes that were potentially related to cell migration, and we confirmed the gene expression levels by real-time PCR. The genes phosphoserine aminotransferase 1 (PSAT1) and CCAAT/enhancer binding protein ${\beta}$ ($C/EBP{\beta}$) were up-regulated. The genes tissue factor pathway inhibitor 2 (TFPI2), retinoic acid receptor responder 1 (RARRES1), and RARRES3 were down-regulated. Our observations suggest that cilostazol can promote angiogenesis by promoting endothelial migration. Understanding the cilostazol-modulated regulatory mechanisms in brain endothelial cells may help stimulate blood vessel formation for the treatment of ischemic diseases.
Alcoholic hepatitis is a leading cause of liver failure in which the increased production of tumor necrosis factor ${\alpha}$ (TNF${\alpha}$) plays a critical role in progression of alcoholic liver disease. In the present study, we investigated the effects of cilostazol, a selective inhibitor of type III phosphodiesterase on ethanol-mediated TNF${\alpha}$ production in vitro and $in$$vivo$, and the effect of cilostazol was compared with that of pentoxifylline, which is currently used in clinical trial. RAW264.7 murine macrophages were pretreated with ethanol in the presence or absence of cilostazol then, stimulated with lipopolysacchride (LPS). Cilostazol significantly suppressed the level of LPS-stimulated TNF${\alpha}$ mRNA and protein with a similar degree to that by pentoxifylline. Cilostazol increased the basal AMP- activated protein kinase (AMPK) activity as well as normalized the decreased AMPK by LPS. AICAR, an AMPK activator and db-cAMP also significantly decreased TNF${\alpha}$ production in RAW264.7 cells, but cilostazol did not affect the levels of intracellular cAMP and reactive oxygen species (ROS) production. The $in$$vivo$ effect of cilostazol was examined using ethanol binge drinking (6 g/kg) mice model. TNF${\alpha}$ mRNA and protein decreased in liver from ethanol gavaged mice compared to that from control mice. Pretreatment of mice with cilostazol or pentoxifylline further reduced the TNF${\alpha}$ production in liver. These results demonstrated that cilostazol effectively decrease the ethanol-mediated TNF${\alpha}$ production both in murine macrophage and in liver from binge drinking mice and AMPK may be responsible for the inhibition of TNF${\alpha}$ production by cilostazol.
Ginkgo biloba (G. biloba) extract is a widely used phytomedicine for the oral treatment of peripheral vascular disease. Cilostazol is a synthetic antiplatelet and vasodilating agent for the treatment of intermittent claudication resulting from peripheral arterial disease. It is likely to use concomitantly G. biloba extract and cilostazol for the treatment of peripheral arterial disease, which raises a concern of increasing their adverse effects of herbal-drug interactions. To clarify any possible herbal-drug interaction between G. biloba extract and cilostazol, the effect of the G. biloba extract on the pharmacokinetics of cilostazol was investigated. As cilostazol is known to be eliminated mainly by cytochrome P450 (CYP)-mediated metabolism, we investigated the effects of G. biloba extract on the human CYP enzyme activities and the effect of G. biloba extract on the pharmacokinetics of cilostazol after co-administration of the two agents to male beagle dogs. The G. biloba extract inhibited more or less CYP2C8, CYP2C9, and CYP2C19 enzyme activities in the in vitro microsomal study with $IC_{50}$ values of 30.8, 60.5, and $25.2{\mu}g/ml$, respectively. In the pharmacokinetic study, co-administration with the G. biloba extract had no significant effect on the pharmacokinetics of cilostazol in dogs, although CYP2C has been reported to be responsible for the metabolism of cilostazol. In conclusion, these results suggest that there may not be a pharmacokinetic interaction between G. biloba extract and cilostazol.
Cilostazol has both antithrombotic and cerebral vasodilating effects, and one of the mechanism is the selective inhibition of platalet cyclic AMP phosphodiesterase. Bioequivalence of two cilostazol tablets, the $Pletaal^{TM}$ (Korea Otsuka Pharmaceutical Co.) and the LG $Cilostazol^{TM}$ (LG Chemical Co.), was evaluated according to the guidelines of Korea Food and Drug Administration (KFDA). Sixteen normal male volunteers ($20\sim29$ years old) were randomly divided into two groups and a randomized $2\times2$ cross-over study was employed. After oral administration of $Pletaal^{TM}$ or LG $Cilostazol^{TM}$ tablet (100 mg cilostazol), blood samples were taken at predetermined time intervals and the serum cilostazol concentrations were determined using an HPLC method with UV/VIS detector. The pharmacokinetic parameters $(AUC_t,\;C_{max}\;and\;T_{max})$ were calculated and ANOVA was utilized for the statistical analysis. The results showed that the differences in AUCt, C_{max} and Tmax between two tablets based on the $Pletaal^{TM}$ tablet were $-5.39\%,\;2.32\%\;and\;4.26\%$, respectively. The powers (1-${\beta}$) for $AUC_t,\;C_{max}\;and\;T_{max}\;were\;83.81\%,\;96.02\%\;and\;91.04%$, respectively. Minimum detectable differences ($\Delta$) and $90\%$ confidence intervals were all less than $\pm20\%$. All these parameters met the criteria of KFDA for bioequivalence, indicating that LG $Cilostazol^{TM}$ tablet is bioequivalent to $Pletaal^{TM}$ tablet.
Kim, Jung-Eun;Sung, Jin-Young;Woo, Chang-Hoon;Kang, Young-Jin;Lee, Kwang-Youn;Kim, Hee-Sun;Kwun, Woo-Hyung;Choi, Hyoung-Chul
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.15
no.4
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pp.203-210
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2011
Cilostazol is a selective inhibitor of phosphodiesterase 3 that increases intracellular cAMP levels and activates protein kinase A, thereby inhibiting vascular smooth muscle cell (VSMC) proliferation. We investigated whether AMP-activated protein kinase (AMPK) activation induced by heme oxygenase-1 (HO-1) is a mediator of the beneficial effects of cilostazol and whether cilostazol may prevent cell proliferation and reactive oxygen species (ROS) production by activating AMPK in VSMC. In the present study, we investigated VSMC with various concentrations of cilostazol. Treatment with cilostazol increased HO-1 expression and phosphorylation of AMPK in a dose- and time-dependent manner. Cilostazol also significantly decreased platelet-derived growth factor (PDGF)-induced VSMC proliferation and ROS production by activating AMPK induced by HO-1. Pharmacological and genetic inhibition of HO-1 and AMPK blocked the cilostazol-induced inhibition of cell proliferation and ROS production.These data suggest that cilostazol-induced HO-1 expression and AMPK activation might attenuate PDGF-induced VSMC proliferation and ROS production.
Park, So-Youn;Bae, Jin-Ung;Hong, Ki-Whan;Kim, Chi-Dae
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.15
no.2
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pp.83-88
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2011
A large body of evidence has indicated that induction of endogenous antioxidative proteins seems to be a reasonable strategy for delaying the progression of cell injury. In our previous study, cilostazol was found to increase the expression of the antioxidant enzyme heme oxygenase-1 (HO-1) in synovial cells. Thus, the present study was undertaken to examine whether cilostazol is able to counteract tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$)-induced cell death in endothelial cells via the induction of HO-1 expression. We exposed human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) to TNF-${\alpha}$ (50 ng/ml), with or without cilostazol ($10{\mu}M$). Pretreatment with cilostazol markedly reduced TNF-${\alpha}$-induced viability loss in the HUVECs, which was reversed by zinc protoporphyrine IX (ZnPP), an inhibitor of HO-1. Moreover, cilostazol increased HO-1 protein and mRNA expression. Cilostazol-induced HO-1 induction was markedly attenuated not only by ZnPP but also by copper-protoporphyrin IX (CuPP). In an assay measuring peroxisome proliferator-activated receptor-${\gamma}$ (PPAR-${\gamma}$) transcription activity, cilostazol directly increased PPAR-${\gamma}$ transcriptional activity which was completely abolished by HO-1 inhibitor. Furthermore, increased PPAR-${\gamma}$ activity by cilostazol and rosiglitazone was completely abolished in cells transfected with HO-1 siRNA. Taken together, these results indicate that cilostazol up-regulates HO-1 and protects cells against TNF-${\alpha}$-induced endothelial cytotoxicity via a PPAR-${\gamma}$-dependent pathway.
Park, Young-Seop;Jin, Zhen;Jeong, Eun Ae;Yi, Chin-ok;Lee, Jong Youl;Park, In Sung;Roh, Gu Seob
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.22
no.1
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pp.63-70
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2018
Cilostazol is a selective inhibitor of type 3 phosphodiesterase (PDE3) and has been widely used as an antiplatelet agent. Cilostazol mediates this activity through effects on the cyclic adenosine monophosphate (cAMP) signaling cascade. Recently, it has attracted attention as a neuroprotective agent. However, little is known about cilostazol's effect on excitotoxicity induced neuronal cell death. Therefore, this study evaluated the neuroprotective effect of cilostazol treatment against hippocampal neuronal damage in a mouse model of kainic acid (KA)-induced neuronal loss. Cilostazol pretreatment reduced KA-induced seizure scores and hippocampal neuron death. In addition, cilostazol pretreatment increased cAMP response element-binding protein (CREB) phosphorylation and decreased neuroinflammation. These observations suggest that cilostazol may have beneficial therapeutic effects on seizure activity and other neurological diseases associated with excitotoxicity.
Park, Sun-Haeng;Kim, Ji-Hyun;Bae, Sun-Sik;Hong, Ki-Whan;Choi, Byung-Tae;Shin, Hwa-Kyoung
Journal of Life Science
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v.21
no.5
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pp.647-655
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2011
The neurotoxicity of aggregated amyloid ${\beta}$ ($A{\beta}$) has been implicated as a critical cause in the pathogenesis of Alzheimer's disease (AD). It can cause neurotoxicity in AD by evoking a cascade of apoptosis to neuron. Here, we investigated the neuroprotective effects of cilostazol, which acts as a phosphodiesterase III inhibitor, on $A{\beta}_{25-35}$-induced cytotoxicity in mouse neuronal cells and cognitive decline in the C57BL/6J AD mouse model via peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR)-${\gamma}$ activation. $A{\beta}_{25-35}$ significantly reduced cell viability and increased the number of apoptotic-like cells. Cilostazol treatment recovered cells from $A{\beta}$-induced cell death as well as rosiglitazone, a PPAR-${\gamma}$ activator. These effects were suppressed by GW9662, an antagonist of PPAR-${\gamma}$ activity, indicative of a PPAR-${\gamma}$-mediated signaling. In addition, cilostazol and rosiglitazone also restored PPAR-${\gamma}$ activity levels that had been altered as a result of $A{\beta}_{25-35}$ treatment, which were antagonized by GW9662. Furthermore, cilostazol also markedly decreased the number of apoptotic-like cells and decreased the Bax/Bcl-2 ratio. Intracerebroventricular injection of $A{\beta}_{25-35}$ in C57BL/6J mice resulted in impaired cognitive function. Oral administration of cilostazol (20 mg/kg) for 2 weeks before $A{\beta}_{25-35}$ injection and once a day for 4 weeks post-surgery almost completely prevented the $A{\beta}_{25-35}$-induced cognitive deficits, as did rosiglitazone. Taken together, our findings suggest that cilostazol could attenuate $A{\beta}_{25-35}$-induced neuronal cell injury and apoptosis as well as promote the survival of neuronal cells, subsequently improving cognitive decline in AD, partly because of PPAR-${\gamma}$ activation. The phosphodiesterase III inhibitor cilostazol may be the basis of a novel strategy for the therapy of AD.
Park, So-Youn;Lee, Jeong-Hyun;Shin, Hwa-Kyoung;Kim, Chi-Dae;Lee, Won-Suk;Rhim, Byung-Yong;Shin, Yung-Woo;Hong, Ki-Whan
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.12
no.4
/
pp.165-170
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2008
In the present study, we aimed to identify the synergistic effects of concurrent treatment of low concentrations of cilostazol and probucol to inhibit the oxidative stress with suppression of inflammatory markers in the cultured human coronary artery endothelial cells (HCAECs). Combination of cilostazol (0.3${\sim}3{\mu}$M) with probucol (0.03${\sim}0.3{\mu}$M) significantly suppressed TNF-${\alpha}$-stimulated NAD(P)H-dependent superoxide, lipopolysaccharide (LPS)-induced intracellular reactive oxygen species (ROS) production and TNF-${\alpha}$ release in comparison with probucol or cilostazol alone. The combination of cilostazol (0.3${\sim}3{\mu}$M) with probucol (0.1${\sim}0.3{\mu}$M) inhibited the expression of vascular cell adhesion molecule-1 (VCAM-1) and monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1) more significantly than did the monotherapy with either probucol or cilostazol. In line with these results, combination therapy significantly suppressed monocyte adhesion to endothelial cells. Taken together, it is suggested that the synergistic effectiveness of the combination therapy with cilostazol and probucol may provide a beneficial therapeutic window in preventing atherosclerosis and protecting from cerebral ischemic injury.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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