우리나라 전남의 전통 발효식품인 토하젓(salt-fer-mented Toha shrimp)은 주 원료인 토하(Toha: Caridina denticulata denticulata $D_{E}$$H_{AAN}$)를 살아 있는 생토하의 껍질(갑각)이 붙어 있는 채로 소금에 절여서 제조하였다. 토하 껍질을 구성하는 토하 chitin이 토하젓의 숙성과정 중 발효에 의해 저분자량의 chitin oligosaccharides 생성이 예상되므로 본 연구에서는 토하젓 숙성과정의 기간별로 토하 chitin 분자량의 감소와 점도 변화 그리고 chitin 분자량 분포를 측정하였다. 토하젓 숙성과정 중 chitin의 점도와 평균 분자량은 숙성기간이 길어짐에 따라 뚜렷히 감소하였다. $10^3의$ 저분자량인 chitin oligosaccharides는 숙성 60일까지는 거의 나타나지 않았으나 숙성 75일 이후부터 6.85% 이상의 많은 양을 보였으며 $10^2의$ 분자량은 숙성 75일 이후부터 생성되기 시작하였다. 이 결과로부터 토하젓의 숙성과정 중 $10^{7}$ 이상 고분자량인 chitin이 가수분해됨에 따라 $10^2과$$10^3의$ chitin oligosaccharides가 생성됨이 확인되었다.다.
Chitin, a linked polysaccharide composed of 2-acetamido-2-deoxy-$\beta$-D-glucopytanose residues, is distributed widely in nature. It has been utilized on various application field due to the development of chitin derivatives such as chitosan, partial deacetylated chitin, carboxylmethyl chitin, sulfated chitin, and so on. Chitin and chitosan have been recently interested in antitumor and antimicrobial activities, because of a powerful tumor inhibitory effect against experimental mouse tumors. Especially, the oligosaccharides obtained by partial degradation of them exhibited a remarkable antitumor effect against sarcoma 180, MM 48 and Meth Asolid tumors and antimetastatic effect against Lewis lung carcinoma in mice. This review describes on antitumor effects of chitin, chitosan and their oligosaccharides by their mechanism of action involving enhancement of immunological system.
Park, Bock-Hee;Park, Won-Ki;Kim, Hee-Kyung;Park, Young-Hee
Preventive Nutrition and Food Science
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제3권3호
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pp.221-224
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1998
Toha-jeot, salt-fermented Toha shirmp(caridina denticulata denticulata DeHAAN) is a traditional fermented food in Korea. Samples of Toha-jeot used in the present study were a low-salt group of 15% sodium chloride(L), a high-salt group of 23% sodium chloride(H), a 50% conventional soybean sauce group(S), a low-salt group contraining 2% wheat bran (W2%-L) , a high -salt group containing 2% wheat bran(W2%-H), a low-salt group containing 4% wheat bran(W4%-L)and a high-salt group containing 4% wheat bran (W4%-H). These seven groups were refrigerated at 4 $\pm$1$^{\circ}C$ and then taken out for analysis at theree month intervals. We investigated the functional components of Toha-jeot during fermentation . Long fermentation of Toha-jeot lowered the viscosity of chitin and tended to reduce the distribution of molecular weight. THe formation of chitin oligosaccharides on the other hand, increased significantly. After nine months of fermenttion, chitin oligosaccharides(M.W. 823~1789) constituting 24.75% of Toha chitin were produced in the sample of W2%-H. During the same period, chitin oligosaccharides(M.W.1436-1879) constituting 66.30% of Toha chitin were produced in the samples of S. However, chitin oligosaccharides were not produced in Jeotsaeu-jeot made of sea-water shrimp when fermented for six months.
Chitin, a poly $\beta$-(1longrightarrow14)-N-acetyl-D-glucosamine, is best known as a cell wall component of fungi and as a skeletal materials of invertebrates. Chitosan is derived from chitin by deacetylation in the presence of alkali. Chitosan has been developed as new physiological materials since it possesses antibacterial activity, hypocholesterolemic activity and antihypertensive action. However, the actions of chitosan in vivo still remain ambiguous as the physiological functional properties because most animal intestines, especially the human gastrointestinal tract, do not possess enzyme such as chitosanase which directly degrade the $\beta$-glucosidic linkage in chitosan, and consequently the unbroken polymers may be poorly absorbed into the human intestine. Therefore, recent studies as chitosan have attracted interest for chitosan oligosaccharides, because the oligosaccharides process not only water-soluble property but also versatile functional properties such as antitumor activity, immune-enhancing effects, enhancement of protective effects against infection with some pathogens in mice and antimicrobial activity (Kingsnorth et al., 1983, Mori et al., 1997). (omitted)
An antimicrobial chitinase was purified from grapefruit extract and its properties were characterized. The chitinase was purified with a single step chromatography on regenerated chitin affinity gel column. The molecular weight of the purified chitinase was 29 kDa. The grapefruit extract contained the chitinase protein more than 50% of its total soluble proteins measured by coomassie stained protein bands. When the purified chitinase was incubated with polymers of N-acetylglucosamine (NAG), such as mycelia of Fusarium oxysproum and swollen chitin, they were degraded to oligosaccharides, and the oligosaccharides were then further hydrolyzed by the same enzyme to monomer and dimer of NAG. This result suggests that the chitinase contained both endo- and exo- chitinase activities. The chitinase was stable to heat and pH treatment; its activity was not diminished by the heat treatment upto 7$0^{\circ}C$ for 1 hr, and it showed a pH stability in the range of pH 4.0 to 12.0.
Chitosan is a natural biopolymer of N-acetylglucosamine (-1,4 linked 2-acetamido-D-glucose), which is obtained after alkaline deacetylation of the chitin derived from the cell walls of lower plants and in the skeletal tissues of lower animals including arthropods and mollusks. In the recent studies, chitin and chitosan have attracted interest for converting them to oligosaccharides because the oligosaccharides are not only water-soluble but also possess versatile functional properties such as antimicobial activity (Jeon and Kim, 2000; Jeon et al., 2001). (omitted)
Chitosan, a deacetylated derivative of chitin, is one of the abundant resources, and its biological properties such as antibactierial activity, hypocholesterolemic activity, and hypertensive action are remarked. However, increasing attention has recently been yen to converting chitosan to its oligosaccharides because they possess various functional properties like antitumor activity, immune-enhancing effects, enhancing protective effects against infection with some pathogens in mice, antifungal activity, and antimicrobial activity (Jeon et al., 2001). (omitted)
Chinin is the second most plentiful natural polymer. Currently, chitin and chitosan are manufactured commercially in large scale from crab and shrimp shell as fish processing waste. They is being used in many commercial application because of their various functional properties. Chitosan, in particular, is being evaluated as biomedical materials in a number of food and pharmaceutical industries. Despite their potential abilities, the perfect safety had been demonstrated until now. However, the long-term feeding with chitin was not any negative effect the body weights and serum enzymatic activities in mice. And, in rats supplied with $5\%$ of chitosan diet for 450 days, there was no changes of Ca concentration in blood, bone and other organs except for in muscle. Consequently, there was no direct toxicity of chitin and chitosan against some animals such as rat and mouse by recently reports.
Chitin, a polymer of N-acetylglucosamine ($\beta$-1,4 linked 2-acetamido-D-glucose), is a cellulose-like biopolymer present richly in the exoskeleton of crustaceans and in cell walls of fungi, insects and yeast. Chitosan is derived from chitin by deacetylation, to different degrees, in the presence of alkali. [l]. Recent studies for chitin and chitosan have been concentrated in bioactivities such as antitumor activity, immuno-enhancing effects, enhancing protective effects against infection with some pathogens in mice, and antimicrobial activeity [2]. (omitted)
We investigated the production of chitin oligosaccharides using food grade papain. A solution of commercial food grade papain (FGP) was dialyzed for 12 h before measuring its chitinolytic activity. The effects of enzyme concentration, reaction temperature, and pH on the endochitinase and $\beta$-N-acetylglucosaminidase activities and the thermostability of these enzymes were investigated. In adddition, the reaction products were analyzed with gel filtration on a Bio-Gel P2. The endochitinase activity was twentyfold higher than that of $\beta$-N-acetylglucosaminidase. The optimal endochitinase activity was at pH 3.0, while the maximal $\beta$-N-acetylglucosaminidase activity was at pH 6.0. The reaction product consisted mainly of the dimer of N -acetylglucosamine, with a small amount of its trimer. Under the experimental conditions, $120{\mu}g$ of chitin oligomers were obtained with 1 mg of FGP protein after an incubation of 2 h.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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