Successful techniques of in vitro fertilization(IVF) are valuable for studying the process of fertilization and for developing economical procedures for gene and nuclear transfer in farm animals. To date, bovine IVF system has been developed with oocytes in vitro or vitro, but the resulting zygotes exhibit limited embryonic development after in vitro culture. Even though in vitro matured oocytes achieved high fertilization and cleavage rates, these embryos appear extremly low rate of pregnancies when transferred to synchronized recipients. Development of early bovine embryos in vitro is generally arrested at the 8-to 16-cell stage. However, recent use of somatic cells such as trophoblastic vesicle, granulosa and oviduct epithelial cell for co-culture with early bovine embryos has proven effective for development of embryos, matured and fertilized in vitro, past the in vitro cell blocks. These factors clearly indicate the value of the co-culture system in promoting development of bovine oocytes matured and fertilized in vitro to morula or blastocyst stage in vitro. In addition, co-culture system may beome a tool for evaluation of viability of ova that have been manipulated by procedures such as splitting, microinjection and nuclear transfer.
Bovine follicular oocytes were matured in two different conditions, TCM 199+10% FBS with or without hormones (0.01 unit/ml ovine follicle stimulating hormone, 0.01 unit/ml ovine luteinizing hormone and 1$\mu\textrm{g}$/ml $\beta$-estradiol). There was no significant difference in maturation and fertilization rates of the oocytes between two groups. The result indicates that hormonal treatment does not have beneficial effect on in vitro maturation and fertilization of follicular oocytes. IVF-derived cone-cell bovine embryos were injected with foreign DNA (CChcLf) by microinjection method and then co-cultrued with bovine oviductal epithelial cells. Developmental rate of microinjected embryos to blastocyst stage (21%) was similar to that of non-injected embryos(29%). This result represents that microinjected bovine embryos produced in vitro have a potential of development to normal blastocysts.
This study was conducted to investigate the developmental ability of caprine embryos after somatic cell interspecies nuclear transfer. Donor cells were obtained from an ear-skin biopsy of a caprine, digested with 0.25% trypsin-EDTA in PBS, and primary fibroblast cultures were established in TCM-199 with 10% FBS. After maturation, expanded cumulus cells were removed by vigorous pipetting in the presence of 0.3% hyaluronidase. The matured oocytes were dipped in D-PBS plus 10% FBS+7.5 $\mu\textrm{g}$/ml cytochalasin B and 0.05 M sucrose. The reconstructed oocytes were electrically fused with donor cells in 0.3 M mannitol fusion medium. After the electofusion, embryos were activated by electric stimulation. Interspecies nuclear transfer embryos with bovine cytoplasts were cultured in TCM-199 medium supplemented with 10% FBS including bovine oviduct epithelial cells for 7∼9 day. On the other hand, the NT embryos with porcine cytoplasts were cultured in NCSU-23 medium supplemented with 10% FBS for 6∼8 day at $39^{\circ}C, 5% CO_2$ in air. In caprine-bovine NT embryos, the cleavage(2-cell) rate was 36.8% in confluence and 43.8% in serum starvation. The developmental rate of morula- and blastocyst-stage embryos was 0.0% in confluence and 18.8% in serum starvation. In caprine-porcine NT embryos, the cleavage(2-cell) rate was 76.7% in confluence and 66.7% in serum starvation. The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos was 3.3% in confluence and 3.0% in serum starvation, and no significant difference was observed in synchronization treatment between donor cells. In caprine-bovine NT embryos, the cleavage(2-cell) rate of cultured donor cells was 30.8% and 17.6% in 5∼9 and 10∼14 passage(P<0.05). The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos were significantly higher(P<0.05) in 5∼9 passage(23.1%) than in 10∼14 passage(0.0%) of cultured donor cells. In caprine-porcine NT embryos, the cleavage rate was significantly higher(P<0.05) in 5∼9 passage(86.7%) than in 10∼14 passage(50.0%) of cultured donor cells. The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos were 3.3 and 0.0% in 5∼9 and 10∼14와 passage of cultured donor cells. In caprine-bovine NT embryos, the developmental rate of morula and blastocyst stage embryos were 22.6% in interspecies nuclear transfer, 33.9% in in vitro fertilization and 28.1% in parthenotes, which was no significant differed. The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos with caprine-porcine NT embryos were lower(P<0.05) in interspecies nuclear transfer(5.1%) than in vitro fertiltzation(26.9%) and parthenotes(37.4%).
This study was conducted to investigate the survival and hatching rates after refrozen-thawed bovine IVF blastocysts. The survival rates after refrozen-thawed bovine IVF blastocysts produced on day 7, day 8 and day 9, were 66.6%(16/24), 62.5%(15/24) and 65.3%(17/26), respectively. The survival and hatching rates after the first frozen-thawed bovine JVF blastocysts were 90.0%(27 /30) and 70.0%(21 /30), but in refrozen-thawed bovine IVF blastocysts were 66.2%(49 /74) and 45.9%(34 /74), respectively. The results of this study were suggest that refrozen-thawed bovine IVF embryos had survival ability.
This stduy was carried out in order to investigate the effects of concentration and equilibration time of cryoprotective agents on survival rate of slow and ultrarapidly frozen in vitro fertilized bovine embryos. In vitro fertilized bovine embryos, following dehydration by cryoprotective agents and sucrose, were slowly freezed(from 2$0^{\circ}C$ to -7$^{\circ}C$/-1$^{\circ}C$/min., from -7$^{\circ}C$ -35$^{\circ}C$/-0.2$^{\circ}C$/min. from -35$^{\circ}C$ to -38$^{\circ}C$/-0.3$^{\circ}C$/min.) by cell freezer and directly plunged into liquid nitrogen and thawed in 38$^{\circ}C$ water. Survival rate was defined by development rate to the morula and blastocyst stage after in vitro cultured and FDA test. The results are summarized as follows : 1. The survival rates of in vitro fertilized bovine embryos after slow frozen-thawing in the freezing medium of 0.25M sucrose added 2.5M glycerol, 3.0M DMSO, 2.0M propanediol and 2.5M glycerol+2.0M propanediol were 84.3%, 85.9%, 77.8%, 74.3%, respectively. 2. The survival rates of in vitro fertilized bovine embryos after slow frozen-thawing in the freezing of 0.50M sucrose added 2.5M glycerol, 3.0M DMSO, 2.0M propanediol and 2.5M glycerol+2.0M propanediol were 83.8%, 85.1%, 71.4%, 74.6%, respectively. 3. The survival rates of in vitro fertilized bovine embryos after ultrarapid frozen-thawing in the freezing of 0.25M sucrose added 2.5M glycerol, 3.0M DMSO, 2.0M propanediol and 2.5M glycerol+3.0M propanediol were 69.3%, 70.8%, 63.2%, 67.1%, respectively. 4. The survival rates of in vitro fertilized bovine embryos after ultrarapid frozen-thawing in the freezing of 0.25M sucrose added 2.5M glycerol, 3.0M DMSO, 2.0M propanediol and 2.5M glycerol+2.0M propanediol were 69.4%, 70.1%, 62.3%, 63.5%, respectively. 5. The survival rates of in vitro fertilized bovine embryos after slow and ultrarapid fromthawing in the freezing medium of sucrose added cryoprotective agents were not significant difference between 5min. and 10min. of equilibration time.
The present study was examined the expression patterns of cdx2 gone, n lineage marker, in the mouse and bovine developmental stage embryos and whether one blastomere of two- and/or four-cell bovine embryos develop to specific lineage (ICM or TE) of blastocyst by injection of Texas red conjugated dextran as a lineage tracer. It was also investigated the allocation of ICM and n cells in bovine blastocysts derived from one blastomere of two-and/or four-cell stage embryos. Firstly, it was observed that expression of cdx2 appeared symmetric and asymmetric distribution at the two-cell stage mouse embryos. from four-cell to morula stage mouse embryos, the expression of cdx2 gene was observed in almost all blastomeres. In case of bovine embryos, localization of cdx2 was similar to pattern of mouse embryos. The Dextran-labeled blastomere of two- and/or four-cell embryos contributed to both ICM and TE cells in bovine blastocysts. And also, it was confirmed that a single blastomere derived from two-cell stage bovine embryos could develop to the normal blastocyst with both ICM and TE cells. These results show that two-and/or four-cell stage is not the specific stage to determine the cell rate for ICM and TE, and which is not correlated with the expression of cdx2 gene.
Somatic cells such as oviduct epithelial cell, uterine epithelial cell, cumulus-granulosa cell and buffalo rat river cell has been used to establish an effective culture system for bovine embryos produced in in vitro. But nitric oxide (NO) metabolites secreted from somatic cells were largely arrested the development of bovine in vitro matured/ in vitro fertilized (IVM/IVF) embryos, suggesting that NO was induced the embryonic toxic substance into culture medium. The objective of this study was to investigate whether BOEC co-culture system can ameliorate the NO-mediated oxidative stress in the culture of bovine IVM/IVF embryos. Therefore, we evaluated the developmental rate of bovine IVM/IVF embryos under BOEC co-culture system in the presence or absence of sodium nitroprusside (SNP), as a NO donor, and also detected the expression of growth factor (TGF-$\beta$, EGF and IGFBP) and apoptosis (Caspase-3, Bax and Bcl-2) genes. The supplement of SNP over 5 uM was strongly inhibited blastocyst development of bovine IVM/IVF embryos than in control and 1 uM SNP group (Table 2). The developmental rates beyond morulae stages of bovine IVM/IVF embryos co-cultured with BOEC regardless of SNP supplement (40.4% in 5 uM SNP+ BOEC group and 65.1% in BOEC group) were significantly increased than those of control (35.0%) and SNP single treatment group (23.3%, p<0.05: Table 3). The transcripts of Bax and Caspase-3 genes were detected in all experiment groups (1:Isolated fresh cell (IFC), 2:Primary culture cell (PCC), 3:PCC after using the embryo culture, 4: PCC containing 5 uM SNP and 5: PCC containing 5 uM SNP after using the embryo culture), but Bcl-2 gene was not detected in IFC and PCC (Fig. 1). In the expression of growth factor genes, TGF-$\beta$ gene was found in all experimental groups, and EGF and IGFBP genes were not found in IFC and PCC (Fig. 2). These results indicate that BOEC co-culture system can increase the development beyond morula stages of bovine IVM/IVF embryos, possibly suggesting the alleviation of embryonic toxic substance like nitric oxide.
This experiment was carried out to investigate the morphology of bovine embryos thawed after deep freezing at -196$^{\circ}C$ and the development of frozen-thawed embryos after in vitro culture in Ham's F-10 medium with 10% NBCS. The results obtained were summarized as follows: 1. The propotion of embryos which a, pp.ared mophologically normal was averaged 77.5% (79/102). 2. The morphologically normal rate of frozen-thawed blastocyst (78.6%) was higher than that of morula (76.7%), but there was no significant difference. 3. Normal development was observed in 20 of 68 embryos cultured for 24-72hr in medium and overall survival rate was 29.4%. 4. Survival rate fo blastocyst (33.3%) was higher than that of morula (25.7%).
It was carried out to investigate the effect of the kind of medium, the concentration of serum added and the temperature of storage on the survival of mouse and bovine embryos preserved In vitro. The survival of frozen-thawed mouse embryos after cooling at 4$^{\circ}C$ was also investigated. It was possible to preserve the embryos of mouse until 4 days and of cattle in a day without significant decrease of the survival rates. The survival rates of frozen-thawed mouse embryos after cooling at 4$^{\circ}C$ over 3 days were below 20%.
Park, Sang-Hyun;Park, Sang-Wook;Yun, Ji-Yung;Jun, Soon-Hong;Kim, Nam-Hyung
Proceedings of the KSAR Conference
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2002.06a
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pp.11-11
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2002
Interspecies nuclear transfer has been interested to determine ability of oocyte cytoplasm to support reprogramming of somatic cell nuclei of different species. In this study, we investigated developmental ability and mRNA expression patterns of developmentally important genes in bovine reconstructed embryos using a mouse fibroblast cell nucleus. While 20% nuclear transferred embryos with bovine fibroblast developed to morulae/blastocysts, a few(2-5%) nuclear transferred bovine embryos with mouse fibroblast developed to morula. (omitted)
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[게시일 2004년 10월 1일]
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