Recombinant plasmids harboring a heterologous gene coding for the enhanced green fluorescent protein (EGFP) were transfected and expressed in Drosophila melanogaster S2 cells. A stable transformation of polyclonal cell populations expressing EGFP were isolated after 4 weeks of selection with hygromycin B. The recombinant EFGP expressed in transformed S2 cells consisted of a molecular weight of 27 kDa. EGFP expression was also confirmed by fluorometric measurement. The maximum EGFP concentration was about 9.3 mg/I. The present findings demonstrate not only the successful stable expression of EGFP in Drosophuila was about 9.3 mgI. The present findings demonstrate not only the successful stable expression of EGFP in Drosophila S2 cells, but also the use of EGFP as a reporter to analyze gene expression, with its potential of a Drosophila cell expression system for recombinant protein production being an alternative to a baculovirus-insect cell expression system.
For the practical use of nuecin protein, we tried to overexpress nuecin using Bm5 insect cell and Bombyx mori. We inserted nuecin cDNA into pBm10po1-Xa vector derived from B. mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV), and expressed in Bm5 cells and B. mori respectively. SDS-PAGE and Northern blot analysis showed an expressed of the protein when baculovirus expression vector system (BEVS) was used. The amount of intracellular protein is abundant, but the amount of extracellular protein is poor. The results suggest that the biologically active nuecin protein produced by using BEVS is poor because incresed level of misfolded nuecin by the strong promoter, polyhedrin and p 10 of BEVS, decrease the level of free chaperons and foldases by binding with them.
The Herpes simplex virus type 1 (HSV-1) glycoprotein B (gB) gene in the pHLA-21 plasmid was inserted into a baculovirus (Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus) expression vector (lacZ-HcNPV) to construct a recombinant virus gB-HcNPV expressing gB. Spodoptera frugiperda cells infected with this recombinant virus synthesized and processed gB of approximately 120 kDa, which cross-reacted with the monoclonal antibody to gB. The recombinant gB was identified on the membrane of the insect cells using an immunofluorescence assay. Antibodies to this recombinant raised in mice recognize the viral gB and neutralized the infectivity of the HSV-1 in vitro. These results show that the gB gene has the potential to be expressed in insect cells. They also demonstrate that it is possible to produce a mature protein by gene transfer in eukaryotic cells, and indicate the utility of the lacZ-HcNPV-insect cell system for producing and characterizing eukaryotic proteins. Furthermore, the neutralizing antibodies would appear to protect mice against HSV. Accordingly, this particular recombinant protein may be useful in the development of a subunit vaccine.
Kim, Iksoo;Lee, Kwang-Sik;Ryu, Kang-Sun;Kim, Jin-Woo;Ahn, Mi-Young;Lee, Heui-Sam;Sohn, Hung-Dea;Jin, Byung-Rae
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.6
no.1
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pp.87-92
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2003
We describe here the cloning, expression and characterization of a cDNA encoding a putative chemosensory protein (CSP) from the mole cricket, Gryllotalpa orientalis. The G. orientalis chemosensory protein cDNA sequences comprised of 384 bp with 128 amino acid residues. The G. orientalis chemosensory protein showed 75.4% protein sequence identity to the Locusta migratoria CSP, Northern blot analysis revealed that signal was stronger in head than leg and cuticle, indicating that the head part containing antennae is a main site for G. orientalis chemosensory protein synthesis. The cDNA encoding G. orientalis chemosensory protein was expressed as approximately 12 kDa polypeptide in baculovirus-infected insect cells.
Proceedings of the Korean Society of Sericultural Science Conference
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2003.04a
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pp.82-83
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2003
In previous experiment, we reported when the heterologous protein is expressed by using baculovirus expression vector system (BEVS), although the amount of intracellular protein is abundant, the amount of extracellular Protein is poor. As the link in the chain of the research, we investigated the secretory pathway, important in case of the secretory protein, of the protein expressed in insect cells using BEVS. (omitted)
The Glycoprotein D (gD) gene of the HSV-1 strain F was cloned, sequenced, recombinated into the HcNPV (Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus) expression vector and expressed in insect cells. The gD gene was located in the 6.43 kb BamHI fragment of the strainF. The open reading frame (ORF) of the gD gene was 1,185 by and codes 394 amino acid residues. Recombinant baculoviruses, GD-HcNPVs, expressing the gD protein were constructed. Spodoptera frugiperda cells, infected with the recombinant virus, synthesized a matured gX-gD fusion protein with an approximate molecular weight of 54 kDa and secreted the gD proteins into the culture media by an immunoprecipitation assay The fusion gD protein was localized on the membrane of the insect cells, seen by using an immunofluorescence assay The deduced amino acid sequence presents additional characteristics compatible with the structure of a viral glycoprotein: signal peptide, putative glycosylation sites and a long C-terminal transmembrane sequence. These results indicate the utility of the HcNPV-insect cell system for producing and characterizing eukaryotic proteins.
The insect baculovirus expression vector system (BEVS) is useful for producing biologically active recombinant proteins. However, the overexpressions of foreign proteins using this system often results in misfolded proteins and the formation of protein aggregates. To overcome this limitation, we developed a versatile baculovirus expression and secretion system using Bombyx mori protein disulfide isomerase (bPDI) as a fusion partner. bPDI gene fusion was found to improve the secretions and antibacterial activities of recombinant nuecin proteins. Thus, we conclude that bPDI gene fusion is a useful addition to BEVS for the large-scale production of bioactive recombinant proteins.
The Flavin-containing monooxygenase (FMOs) (EC1.14.13.8) are NADPH-dependent flavoenzymes that catalyze oxidation of soft nucleophilic heteroatom centers in a range of structurally diverse compounds, including foods, drugs, pesticides, and other xenobiotics. In humans, FMO3 is quantitatively a major human liver monooxygenase. In the present study, the baculovirus expression vector system was used to overexpress human FMO3 in insect cells for catalytic studies. Six commercially available organic selenium compounds were examined for substrate activity with microsomes isolated from Spodoptera frugiperda (Sf)9 cells infected with human FMO3 recombinant baculovirus. While none of the aromatic heterocyclic selenides tested showed detectable activity, all dialkyl- and alkylaryl-selenides free from ionic groups catalyzed the NADPH- and O$_2$-dependent oxidation. Kinetic constants demonstrate that (based on Km) dialkyl-and alkylaryl- selenides are better substrates for human FMO3 than analogous nitrogen or sulfur compounds .
The flavin-containing monooxygenases(FMOs) (EC1.14.13.8) are NADPH0dependent flavoenzymes that catalyze oxidation of soft nucleophilic heteroatom centers in a range of structurally diverse compounds, including foods, drugs, pesticides, and other xenobiotics. In humans, FMO3 is quantitatively a major human liver monooxygenase. In the present study, the baculovirus expression vector system was used to overexpress human FMO3 in sect cells for stalytic studies. Microsomes isolated from Spodoptera frugiperda(Sf)9 cells infected with human FMO3 recombinant baculovirus catalyzed the NADPH-and O$_2$-dependent oxidation of methimazole, thiourea, and phenylthiourea. However there was no detectable activity with 1, 3-diphenylthiourea or larger thiocarbamides. Microsomes from control Sf9 cells were devoid of methimazole or thiourea S-oxygenase activity. 1, 3-diphenylthiourea is apparently completely excluded from the catalytic site, these amines drugs are probably approaching the upper size limits of xenobiotics accepted by human FMO3. The substrate specificity of this iosform in humans appears considerably more restriceted than that of pig, guinea pig, rat or rabbit FMO3.
Fe65, a neuron-specific adaptor protein, has two phosphotyrosine binding (PTB) domains. The second PTB (PTB2) domain interacts with intracellular domain fragment (AICD) of amyloid beta precursor protein (APP). Recent studies suggested that tile complex is composed of AICD and Fe65 transactivates genes that are responsible for neuronal cell death in Alzheimer's disease (AD). Therefore, a compound inhibiting the interaction between Fe65 and AICD can be a drug candidate to treat AD. However, it remains unclear how Fe65 recognizes AICD at a molecular level. Here, we report high-level production of the PTB2 domain of Fe65 in the baculovirus system. We found that the baculovirus system is an efficient method to obtain the Fe65 PTB2 domain, compared with the bacterial and mammalian expression systems. The purified recombinant protein was used for crystallization to determine its crystal structure helping to understand the molecular mechanism of Fe65-dependent signaling and to design its inhibitors.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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