A bacterial strain producing a large amount of EPS was isolated from marine sediment sample collected from the Cheju Island, Republic of Korea. In the present study, the isolation and identification of this isolate, which is named Hahella chejuensis gen. nov., sp. nov., the effects of nutrients on the production of EPS, and some properties of this EPS are reported.
Kim Jong-Hyun;Cho Seung-Hak;Jang Hyun-Chul;Lee Hee-Cheul;Kim Young-Il;Kang Yeon-Ho;Lee Bok-Kwon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.8
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pp.1180-1184
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2006
The capsule that surrounds Yersinia pestis cells is composed of a protein-polysacchride complex; the purified protein component is fraction I (F1) antigen. We report the cloning of the cafl gene and its expression in Escherichia coli using the vector pETl02/D-TOPO and the F1-specific monoclonal antibody. The recombinant F1 (rF1) antigen had a molecular size of 17.5 kDa, which was identical to that of the F1 antigen produced by Y. pestis. Recombinant F1 protein was found to react to polyclonal antiserum to Y. pestis Fl. Recombinant F1 was purified by ProBond purification system and induced a protective immune response in BALB/c mice challenged with up to 10$^5$ virulent Y. pestis. Purified rF1 protein was used in an ELISA to evaluate the ability of a method to detect antibodies to Y. pestis in animal sera. These results strongly indicated that the rF1 protein is a suitable species-specific immunodiagnostic antigen and vaccine candidate.
This study aimed to investigate the biofilm formation, bacterial regrowth, and bacterial community structure in the granular-activated carbon (GAC) filter adsorbers (FAs) used in water treatment plants. In 2005 and 2006, raw water, settled water, GAC FA by depth, and filtered water were collected twice a year from water treatment plants (WTPs) B and S. The number of heterotrophic bacteria, including mesophilic and psychrophilic bacteria, in such collected waters was investigated along with the total number of coliforms therein. Heterotrophic bacteria were detected in most samples, mainly at the surface layers of the GAC FAs, and fewer such bacteria were found in the lower and bottom layers. An increase in the bacterial number, however, was observed in the samples from various depths of the GAC FAs in WTPs B and S compared with the surface layers. An increase in the bacterial number was also detected in the filtered water. This may indicate that there is a regrowth of the bacteria in the GAC FA. Considering, however, that heterotrophic bacteria were not found in the filtered water, it can be deduced that most bacteria are removed in the chlorination process. Coliforms were detected at the surface layer of the GAC FAs, but their regrowth was not observed. MicroLog systems were used to identify the bacteria community distribution. Eight genera and 14 species, including Pseudomonas spp., were detected in WTP B, and 8 genera and 9 species, including Aeromonas spp., in WTP S. Further studies are required to elucidate their role in the biofilms in water treatment processes.
The Burkholderia cepacia complex isolates causing bacterial fruit rot of apricot were characterized by speciesspecific PCR tests, recA-HaeIII restriction fragment length polymorphism (RFLP) assays, rep-PCR genomic fingerprinting, recA gene sequencing, and multilocus sequence typing (MLST) analysis. Results indicated that the isolates Bca 0901 and Bca 0902 gave positive amplifications with primers specific for B. vietnamiensis while the two bacterial isolates showed different recA-RFLP and rep-PCR profiles from those of B. vietnamiensis strains. In addition, the two bacterial isolates had a higher proteolytic activity compared with that of the non-pathogenic B. vietnamiensis strains while no cblA and esmR marker genes were detected for the two bacterial isolates and B. vietnamiensis strains. The two bacterial isolates were identified as Burkholderia seminalis based on recA gene sequence analysis and MLST analysis. Overall, this is the first characterization of B. seminalis that cause bacterial fruit rot of apricot.
In 2004, bacterial spot-causing xanthomonads (BSX) were reclassified into 4 species-Xanthomonas euvesicatoria, X. vesicatoria, X. perforans, and X. gardneri. Bacterial spot disease on pepper plant in Korea is known to be caused by both X. axonopodis pv. vesicatoria and X. vesicatoria. Here, we reidentified the pathogen causing bacterial spots on pepper plant based on the new classification. Accordingly, 72 pathogenic isolates were obtained from the lesions on pepper plants at 42 different locations. All isolates were negative for pectolytic activity. Five isolates were positive for amylolytic activity. All of the Korean pepper isolates had a 32 kDa-protein unique to X. euvesicatoria and had the same band pattern of the rpoB gene as that of X. euvesicatoria and X. perforans as indicated by PCR-restriction fragment length polymorphism analysis. A phylogenetic tree of 16S rDNA sequences showed that all of the Korean pepper plant isolates fit into the same group as did all the reference strains of X. euvesicatoria and X. perforans. A phylogenetic tree of the nucleotide sequences of 3 housekeeping genes-gapA, gyrB, and lepA showed that all of the Korean pepper plant isolates fit into the same group as did all of the references strains of X. euvesicatoria. Based on the phenotypic and genotypic characteristics, we identified the pathogen as X. euvesicatoria. Neither X. vesicatoria, the known pathogen of pepper bacterial spot, nor X. perforans, the known pathogen of tomato plant, was isolated. Thus, we suggest that the pathogen causing bacterial spot disease of pepper plants in Korea is X. euvesicatoria.
Dental professionals are repeatedly exposed to many microorganisms present in both blood and saliva. Thus, dental professionals are at a greater risk of acquiring and spreading infections, and the implementation of infections control guidelines is necessary. Cellular phones have become a necessary device for communicating in hospitals. Cellular phones contaminated with bacteria may serve as a fomite in the transmission of pathogens by the hands of medical personnel. Nevertheless, studies about rate and levels of bacterial contamination of cellular phones have been extremely limited with regards to dental personnel. The purpose of this study was to identify bacterial flora on the cellular phones of dentists by a molecular biological method using the 16S rRNA cloning and sequencing method. We acquired total 200 clones from dentists' cell phones and identified the bacterial species. Pseudomonas (34.6%), Lactobacillus (18.5%), Azomonas (11.5%), and Janthinobacterium (6%) were the dominant genera on dentists' cell phones. The oral bacteria identified were Anaerococcus lactolyticus, Gibbsiella dentisursi, Lactobacills leiae, Streptococcus mitis, Streptococcus oligofermentans, and Streptococcus sanguinis. Pathogenic bacteria and opportunistic pathogens such as Carnobacterium funditum, Raoultella planticola, Shigella flexneri, Lactobacillus iners, Staphylococcus aureus, and Staphylococcus epidermidis were also identified.
Park, Sait-Byul;Lee, In-Ae;Suh, Joo-Won;Kim, Jeong-Gu;Lee, Choong-Hwan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.21
no.12
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pp.1236-1242
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2011
Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Xoo) is the most devastating pathogen to Oryza sativa and has been shown to cause bacterial blight. Two bioactive compounds showing antimicrobial activities against Xoo strain KACC 10331 were isolated from a Streptomyces bottropensis strain. The ethyl acetate extract was fractionated on a Sephadex LH-20 column, and then purified by preparative HPLC. The purified compounds were identified as bottromycin A2 and dunaimycin D3S by HR/MS and $^1H$ NMR analyses. The MIC value against Xoo and the lowest concentration still capable of suppressing rice bacterial blight were 2 ${\mu}g$/ml and 16 ${\mu}g$/ml for bottromycin A2, and 64 ${\mu}g$/ml and 0.06 ${\mu}g$/ml for dunaimycin D3S, respectively. These two compounds were shown to exert different bioactivities in vitro and in rice leaf explants.
The bacterial communities in the intestinal tracts of earthworm were investigated by culture-dependent and -independent approaches. In total, 72 and 55 pure cultures were isolated from the intestinal tracts of earthworms under aerobic and anaerobic conditions, respectively. Aerobic bacteria were classified as Aeromonas (40%), Bacillus (37%), Photobacterium (10%), Pseudomonas (7%), and Shewanella (6%). Anaerobic bacteria were classified as Aeromonas (52%), Bacillus (27%), Shewanella (12%), Paenibacillus (5%), Clostridium (2%), and Cellulosimicrobium (2%). The dominant microorganisms were Aeromonas and Bacillus species under both aerobic and anaerobic conditions. In all, 39 DNA fragments were identified by polymerase chain reaction-denaturing gradient gel electrophoresis (PCR-DGGE) analysis. Aeromonas sp. was the dominant microorganism in feeds, intestinal tracts, and casts of earthworms. The DGGE band intensity of Aeromonas from feeds, intestinal tracts, and casts of earthworms was 12.8%, 14.7%, and 15.1%, respectively. The other strains identified were Bacillus, Clostridium, Enterobacter, Photobacterium, Pseudomonas, Shewanella, Streptomyces, uncultured Chloroflexi bacterium, and uncultured bacterium. These results suggest that PCR-DGGE analysis was more efficient than the culturedependent approach for the investigation of bacterial diversity and the identification of unculturable microorganisms.
Gut symbionts play crucial roles in host development by producing nutrients and defending against pathogens. Phloem-feeding insects in particular lack essential nutrients in their diets, and thus, gut symbionts are required for their development. Gram-negative Pantoea spp. are known to be symbiotic to the western flower thrips (Frankliniella occidentalis). However, their bacterial characteristics have not been thoroughly investigated. In this study, we isolated three different bacteria (BFoK1, BFiK1, and BTtK1) from F. occidentalis, F. intonsa, and T. tabaci. The bacterial isolates of all three species contained Pantoea spp. Their 16S rRNA sequences indicated that BFoK1 and BTtK1 were similar to P. agglomerans, while BFiK1 was similar to P. dispersa. These predictions were supported by the biochemical characteristics assessed by fatty acid composition and organic carbon utilization. In the bacterial morphological analysis, BFoK1 and BTtK1 were distinct from BFiK1. All these bacteria were relatively resistant to tetracycline compared to ampicillin and kanamycin, in which BFoK1 and BTtK1 were different from BFiK1. Feeding ampicillin (100,000 ppm) reduced the bacterial density in thrips and retarded the development of F. occidentalis. The addition of BFoK1 bacteria, however, rescued the retarded development. These findings indicate that Pantoea bacteria are symbionts to different species of thrips.
Proceedings of the Korean Society for Bioinformatics Conference
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2005.09a
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pp.91-95
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2005
In the multidimensional protein identification technology of high-throughput proteomics, we use one-dimensional gel electrophoresis and after the separation by two-dimensional liquid chromatography, the sample is analyzed by tandem mass spectrometry. In this study, we have analyzed the Pseudomonas Putida KT2440 protein. From the protein identification, the protein database was combined with its reversed sequence database. From the peptide selection whose error rate is less than 1%, the SEQUEST database search for the tandem mass spectral data identified 2,045 proteins. For each protein, we compared the molecular weight calibrated from 1D-gel band position with the theoretical molecular weight computed from the amino acid sequence, by defining a variable MW$_{corr}$ Since the bacterial proteome is simpler than human proteome considering the complexity and modifications, the proteome analysis result for the Pseudomonas Putida KT2440 could suggest a guideline to build the protocol to analyze human proteome data.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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