Recent developments in the application of molecular biology to food grade lactic acid bacteria (LAB) have shown that it could be feasible to engineer metabolic pathways to either enhance specific metabolic fluxes or to divert metabolites for the production of different or new end products. This engineering requires detailed knowledge of enzymes involved in metabolism and regulation within the targeted organism but little works have been done in this area. During biochemical and molecular characterisation of lactic bacterial enzymes, some of probiotic Lactobacillus and Bifidobacterium species were found to be very useful for food, nutraceutical and pharmaceutical industries. The enzymes are usually intracellular and the yields are very low to be useful for industrial applications. Among many enzymes and proteins of lactic bacteria studied, some of our gene cloning achievements have contributed to overproduction of lactic bacterial enzymes such as peptidases, esterases, lactases, bile salt hydrolases and linoleate isomerases for foods and nutraceuticals.
With the increasing demand for enzymes in industrial applications there is a growing need to easily produce industrially important microbial enzymes. This study was carried out to screen the indigenous refinery bacterial isolates for their production of two industrially important enzymes i.e. lipase and protease. A total of 15 bacterial strains were isolated using Soil Extract Agar media from the oil-contaminated environment and one was shown to produce high quality lipase and protease enzymes. The culture conditions (culture duration, temperature, source of nitrogen, carbon, and pH) were optimized to produce the optimum amount of both the lipase (37.6 ± 0.2 Uml-1) and the protease (41 ± 0.4 Uml-1) from this isolate. Productivity of both enzymes was shown to be maximized at pH 7.5 in a medium containing yeast extract and peptone as nitrogen sources and sucrose and galactose as carbon sources when incubated at 35 ± 1℃ for 48 h. Bacterial strain SAB06 was identified as Bacillus licheniformis (MT250345) based on biochemical, morphological, and molecular characteristics. Further studies are required to evaluate and optimize the purification and characterization of these enzymes before they can be recommended for industrial or environmental applications.
Ahmed Mohamed Ali;Tahany M.A. Abdel-Rahman;Mohamed G. Farahat
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.52
no.1
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pp.76-87
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2024
Halophilic bacteria are promising reservoirs for halotolerant enzymes that have gained much attention in biotechnological applications due to their remarkable activity and stability. In this study, 62 halophilic bacterial strains isolated from a solar saltern were screened for the production of various extracellular enzymes. The results revealed that 31 strains (50%) were positive for amylase production while 26 strains (41.9%) were positive for protease. Further, 22 strains (35.48%) exhibited β-glucosidase activity and only 17 (27.41%) demonstrated lipase activity. Of the investigated halophiles, ten strains growing in the presence of ≥15% NaCl (w/v) were selected and identified based on their 16S rRNA gene sequences as Halomonas meridiana, Salinivibrio costicola, Virgibacillus oceani, Virgibacillus marismortui, Marinobacter lipolyticus, Halobacillus karajensis, Salicola salis, Pseudoalteromonas shioyasakiensis, Salinicoccus amylolyticus, and Paracoccus salipaludis. Therefore, the present study highlights the diversity of the culturable halophilic bacteria in a Mediterranean solar saltern, harboring various valuable halotolerant enzymes.
This study was performed to investigate the influcence of various dietary fiber sources in Korea for activities of bacterial enzymes (${\beta}$-glucosidase, ${\beta}$-glucuronidase) and amounts of putrefactive product (indole) in aged rats. ${\beta}$-Glucosidase activity in the intestinal content was significantly lower in the seamustard 15% group than in other groups whereas the activity of ${\beta}$-glucuronidase was higher in the mugwort 15% group than other experimental groups. The amount of indole and pH in the intestinal content of aged rats were significantly lower in mugwort groups than in other groups.
Soils amended for long-term with high levels of compost demonstrated greater abundance of bacterial members of the phylum Bacteroidetes whereas a decreasing trend in the relative abundance of phylum Acidobacteria was noted with increasing levels of compost. Metabolic profiles predicted by PICRUSt demonstrated differences in functional responses of the bacterial community according to the treatments. Soils amended with lower compost levels were characterized by abundance of genes encoding enzymes contributing to membrane transport and cell growth whereas genes encoding enzymes related to protein folding and transcription were enriched in soils amended with high levels of compost. Thus, the results of the current study provide extensive evidence of the influence of different compost levels on bacterial diversity and community structure in paddy soils.
Kim, In-Jung;Ko, Kyong-Cheol;Nam, Tae-Sik;Kim, Yu-Wang;Chung, Won-Il;Kim, Chan-Shick
Journal of Microbiology
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v.41
no.3
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pp.212-218
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2003
Citrus phytoene synthase (CitPsy) and ${\beta}$-carotene hydroxylase (CitChx), which are involved in caroteinoid biosynthesis, are distantly related to the corresponding bacterial enzymes from the point of view of amino acid sequence similarity. We investigated these enzyme activities using Pantoea ananatis carotenoid biosynthetic genes and Escherichia coli as a host cell. The genes were cloned into two vector systems controlled by the T7 promoter. SDS-polyacrylamide gel electrophoresis showed that CitPsy and CitChx proteins are normally expressed in E. coli in both soluble and insoluble forms. In vivo complementation using the Pantoea ananatis enzymes and HPLC analysis showed that ${\beta}$-carotene and zeaxanthin were produced in recombinant E. coli, which indicated that the citrus enzymes were functionally expressed in E. coli and assembled into a functional multi-enzyme complex with Pantoea ananatis enzymes. These observed activities well matched the results of other researchers on tomato phytoene synthase and Arabidopsis and pepper ${\beta}$-carotene hydroxylases. Thus, our results suggest that plant carotenoid biosynthetic enzymes can generally complement the bacterial enzymes and could be a means of carotenoid production by molecular breeding and fermentation in bacterial and plant systems.
The potential of three plants extracts, to protect potato plants against bacterial wilt caused by Ralstonia solanacearum was determined under greenhouse and field conditions. All soil drenching treatments of aqueous plant extracts of Hibsicus sabdariffa, Punica granatum and Eucalyptus globulus significantly reduced the disease severity compared with inoculated control. Although the applications of all three plant extracts resulted in similar reductions of disease severity in field up 63.23 to 68.39%, treatment of E. globulus leaf extract was found greater in restricting the symptom development than other the two plant extracts in the greenhouse. More than 94% reduction in the bacterial wilt symptom was observed in potato plants. All tested plant extracts were effective in inhibiting the growth of bacterial pathogen, not only in vitro, but also in stem of potato plants as compared with the inoculated control Potato plants treated with extract of H. sabdariffa reduced bacterial growth more effectively than treatment with P. granatum and E. globulus. Activity of defence-related enzymes, including peroxidase, polyphenoloxidase and phenylalanine ammonia lyase, were significantly increased in plants treated with the plant extracts compared to the control during the experimental period. In general, the higher enzymes activities were determined in both inoculated and non-inoculated treated potato plants after 8 days from plant extracts treatment. These results suggested that these plant extracts may be play an important role in controlling the potato bacterial wilt disease, through they have antimicrobial activity and induction of systemic resistance in potato plants.
Hwang, Il Hwan;Lee, Chan Hee;Kim, Seon Woo;Sung, Ha Guyn;Lee, Se Young;Lee, Sung Sill;Hong, Hee Ok;Kwak, Yong-Chul;Ha, Jong K.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.21
no.11
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pp.1604-1609
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2008
A series of in vitro and in vivo experiments were conducted to investigate the effects of the mixture of Tween 80 and cellulolytic enzymes (xylanase and cellulase) on total tract nutrient digestibility and rumen cellulolytic bacterial adhesion rates in Holstein steers. Ground timothy hay sprayed with various levels of Tween 80 and cellulolytic enzymes was used as substrates in an in vitro experiment to find out the best combinations for DM degradation. The application level of 2.5% (v/w) Tween 80 and the combination of 5 U xylanase and 2.5 U cellulase per gram of ground timothy hay (DM basis) resulted in the highest in vitro dry matter degradation rate (p<0.05). Feeding the same timothy hay to Holstein steers also improved in vivo nutrient (DM, CP, CF, NDF and ADF) digesibilities compared to non-treated hay (p<0.05). Moreover, Tween 80 and enzyme combination treatment increased total ruminal VFA and concentrations of propionic acid and isovaleric acid with decreased acetate to propionate ratio (p<0.001). However, adhesion rates of Fibrobacter succinogenes and Ruminococcus flavefaciens determined by Real Time PCR were not influenced by the treatment while that of Ruminococcus albus was decreased (p<0.05). The present results indicate that a mixture of Tween 80 and cellulolytic enzymes can improve rumen environment and feed digestibility with variable influence on cellulolytic bacterial adhesion on feed.
Identification of the biochemical metabolic pathway for lignin decomposition and the responsible degradative enzymes is needed for the effective biotechnological valorization of lignin to renewable chemical products. In this study, we investigated the decomposition of kraft lignin by the soil bacterium Pseudomonas kribbensis CHA-19, a strain that can utilize kraft lignin and its main degradation metabolite, vanillic acid, as growth substrates. Gel permeation chromatography revealed that CHA-19 decomposed polymeric lignin and degraded dehydrodivanillin (a representative lignin model compound); however, the degradative enzyme(s) and mechanism were not identified. Quantitative polymerase chain reaction with mRNAs from CHA-19 cells induced in the presence of lignin showed that the putative genes coding for two laccase-like multicopper oxidases (LMCOs) and three dye-decolorizing peroxidases (DyPs) were upregulated by 2.0- to 7.9-fold compared with glucose-induced cells, which indicates possible cooperation with multiple enzymes for lignin decomposition. Computational homology analysis of the protein sequences of LMCOs and DyPs also predicted their roles in lignin decomposition. Based on the above data, CHA-19 appears to initiate oxidative lignin decomposition using multifunctional LMCOs and DyPs, producing smaller metabolites such as vanillic acid, which is further degraded via ortho- and meta-ring cleavage pathways. This study not only helps to better understand the role of bacteria in lignin decomposition and thus in terrestrial ecosystems, but also expands the biocatalytic toolbox with new bacterial cells and their degradative enzymes for lignin valorization.
Chemical production by anaerobic bacterial fermentations was an important microbiological topic in the past due to both fundamental and applied aspects related to acetone-butanol production prior to its replacement by chemical synthetic routes from petroleum. Presently, the depletion and price-escalation of petroleum has regenerated a great interest in the potential of anaerobic bacteria to transform the renewable resouces such as biomass and wastes into chemical feed-stocks and fuels.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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