Several bacterial strains producing biosurfactants were isolated from polluted marine and soil by oil. One of the strains named LSC11 showed strong production activity of biosurfactants. This strain was identified as a Bacillus sp. LSC11 based on the morphological, biochemical, and physiological characteristics. The biosurfactant, produced by the strain, emulsified crude oil, vegetable oil, and hydrocarbons. The surface tension of the culture broth of Bacillus sp. LSC11 decreased to 32 mN/m. The crude biosurfactant was obtained from the culture broth by acid precipitation, freeze drying, solvent extraction, and evaporation. The emulsifying activity of the biosurfactant showed better than the chemically synthesized surfactant (SDS, Span40, Span 85). The biosurfactants had strong properties as an emulsifying agent and as an emulsion-stabilizing agent.
With the population growth and industrialization, the characteristics of discharged waste water and sewage have become more diverse. The removal of phosphorus (P) in the wastewater is essential for the prevention of eutrophication in the river and stream. This study was performed in order to estimate the field application of the Bacillus sp. 3434 BRRJ. Bacillus sp. 3434 BRRJ was cultured in the raw wastewater and synthetic medium at the 5 L reactor. The best optimum conditions for P removal by Bacillus sp. 3434BRRJ in the synthetic medium at the 5 L reactor were as follows: temperature, $30^{\circ}C$; P concentration, 20 mg/L; carbon sources, glucose + acetate (1:1); oxygen concentration, alternatively anaerobic and aerobic conditions. P removal efficiency under the optimum condition was 89.4%. In case of wastewater, P removal efficiency was 95.5% under controlled at $30^{\circ}C$. Through this study we confirmed that P removal by Bacillus sp. 3434BRRJ in case of wastewater was as effective as the synthetic medium. It is considered that Bacillus sp. 3434 BRRJ can be applied to the treatment of wastewater in order to biologically remove P from the wastewater on a large scale.
So, Jai-Hyun;Kim, Duk-Jin;Shin, Jae-Ho;Yu, Choon-Bal;Rhee, In-Koo
Korean Journal of Environmental Agriculture
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v.28
no.4
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pp.447-452
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2009
A bacterium, which was named to be Bacillus cereus A-139, secreting auxin was isolated from the east coast sand dunes in Korea. The secretion of auxin was confirmed by HPLC. When cultured in LB broth, Bacillus cereus A-139 produced $16.12\;{\mu}$g/mL auxin after 8 days in LB broth. Bacillus cereus A-139 produced $49\;{\mu}$g/mL auxin and $162.6\;{\mu}$g/mL by the addition of 2% tryptone and 0.1% tryptophan, respectively. The root growth of Arabidopsis thaliana was retarded by Bacillus cereus A-139 culture broth up to 57% but the formation of lateral roots was increased up to almost twice after 4 days incubation. Also the formation of lateral roots of mung bean was increased up to 57% after 10 days incubation.
The study has been carried out to acquire some basic informations about Bacillus thuringiensis for developing the microbial pesticide. Pathogenicity tests on three of B.thuringiensis var. aizawai, kurstaki, and dendrolimus were determined in two species of insects, H. cunea and B. moris. The pathogencity in varieties of B. thuringiensis against H. cunea and B. mori was depended on instar age of tested larvae. Bacillus thuringiensis var. dendrolimus, kurstaki, aizawai are arranged in order of pathogenicity against H. cunea and B. mori. In result Bacillus thuringiensis var. kurstaki was shown the most stable toxicity with respect to each instar of tested larvae.
Lytic activities of the egg white lysozyme from Korea-native Ogol fowl against the alkalophilic and thermophilic Bacillus sp. TA-11 were investigated and compared. Lytic activity of the Ogol fowl lysozyme for Bacillus sp. TA-11 was the highest for the cell of post-logarithm phase and optimum concentration of the lysozyme was 0.25%, Optimum reaction pH and temperature were 4.5 and 35$^{\circ}C$, respectively. Lytic activity of egg white lysozyme from fowl for Bacillus sp. TA-11 was the highest for the cell of stationary phase and optimum concentration of the lysozyme was 0.5%. Optimum reaction pH and temperature were 5.5 and 4$0^{\circ}C$, respectively.
To investigate the role of induction on CGTase production for alkalophilic Bacillus firm us var. alkalophilus H609, the constitutive mutants that form a halo around its colonies at non-inducible AG agar media containing amylose and glucose were selected. The selected constitutive mutants could produce CGTase in the range of 18.9 to 28.8 units/ml $\cdot A_{600}$ in the alkaline basal medium, and finally a constitutive mutant Bacillus firmus var. alkalophilus CM46 was selected. The constitutive nature of CM46 was also confirmed in protein level using SDS-PAGE. The effects of induction and catabolite repression for both parent strain Bacillus firmus var. alkalophilus H609 and constitutive mutant CM46 were also compared by adding soluble starch and glucose during cultivation. The selected mutant CM46 was a non-inducible but a catabolite regulated type mutant. Even though inductive regulation was released, the specific CGTase activity defined as CGTase activity per cell concentration was not increased compared with that of parent strain. The cell growth and CGTase production patterns of constitutive mutant Bacillus firmus var. alkalophilus CM46 were compared with the parent strain to identify CGTase production characteristics.
Using the alkalophillic Bacillus sp. SH-8 and its mutant Bacillus sp. SH-8M capable of growing at the neutral pH, the amino acid compositions of the cell wall and cell membrane were studied at varying cultivation pH's. The pattem of protein electrophoresis was also tested. It was elucidated that the amino acids consisting of the cell wall were alanine, glutamic acid, lysine, aspartic acid, and meso-diaminopimelic acid. There was not any significant difference in the amino acid compositqon betweeo`two straqns regardless of the culture pH. As the results of HPLC ssay, glutamic acid and aspartic aciu accounted for more than 50% in the amqno acid composytqon of the cell wall. By the isolatqon of the crude cell membrane and the SDS-PAGE analysis, it was found that there was a considerable difference qn the protein pattern when the straqns were cultured at the neutral pH. In addition, by the two dimensional gel electrophoresis, it was confirmed that there was a difference in the protein patterns between two strains cultivated at the neutral pH medium but no difference at the alkaline medium.
Kim, Chang-Sup;Han, Nam-Soo;Kweon, Dae-Hyuk;Seo, Jin-Ho
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.9
no.2
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pp.230-233
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1999
A plasmid vector was constructed for the expression and secretion of Bacillus macerans cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) in Bacillus subtilis. The vector, pUBACGT, was composed of the ribosome-binding sequence, signal sequence, and cgt gene from B. macerans under the control of amyR2, the promoter of amyE gene coding for $\alpha$-amylase from B. subtilis var. natto. Bacillus subtilis LKS88, a mutant strain lacking genes for an amylase and two proteases, was used as a host for the transformation of the plasmid vector. The transformants were selected on kanamycin-containing Luria-Bertani plates. The starch hydrolyzing activity was observed on the starch-containing plates by the iodine method and cyclodextrin-forming activity was detected in the culture medium. A SDS-PAGE analysis showed that most of the expressed CGTase in the recombinant B. subtilis was secreted into the medium at a high expression level.
A 5.7Kb EcoRI fragment containing alkaline amylase gene of Bacillus sp. AL-8 obtained in the previons experiment (10) was transformed in B. subtilis via plasmid pUB110. The enzymatic proper-ties of the amylase produced by the transformants were Identical to those of the donor strain. Thus, the alkaline amylase activity from the transformant was maximum at pH 10 and 5$0^{\circ}C$. And the enzyme was very stable over the ranges of alkaline pH. In order to determine the location of the alkaline amylase gene within the 5.7Kb DNA fragment, the fragment was subcloned in E. coli. It was found that the alkaline amylase gene was located k EcoRI fragment of 3.7Kb.
Regulation of invertase biosynthesis was studied with alkalophilic and thermophilic Bacillus cereus TA-11. Biosynthesis of invertase in Bacillus cereus TA-11 was effectively induced in the presence of 10 mM of sucrose for 180 min and 25 mM of raffinose for 90 min, respectively. Glucose repressed the invertase induction by sucrose and as late addition time of glucose, invertase formation was increased, indicating that glucose repression was occurred by inducer exclusion. Catabolite repression was not reduced by the addition of cAMP for 180 min of induction.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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