To clarify the effect of extracellular ATP in cultured C6 glioma cells, ATP-induced cytosolic free calcium ($[Ca^{2+}]_i$) mobilization and cell proliferation were investigated. ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increased in a dose-dependent manner $(10^{-7}\;M{\sim}10^{-3}\;M)$. ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increases were slightly slowed in extracellular calcium-free conditions especially in sustained phase. ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increment was also inhibited by the pretreatment of U73122, a phospholipase C (PLC) inhibitor, in a time-dependent manner. Suramin, a putative $P_{2Y}$ receptor antagonist, dose-dependently weakened ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ mobilization. Significant increases in cell proliferation were observed at 2, 3, and 4 days after ATP was added. Stimulated cell proliferation was also observed with adenosine at days 2 and 3. This cell proliferation was significantly inhibited by the treatment with suramin. Ionomycin also stimulated cell proliferation in a concentration-dependent manner. In conclusion, we suggest that extracellular ATP stimulates C6 glioma cell proliferation via intracellular free calcium mobilization mediated by purinoceptor.
Annexin I is a 37 kDa member of the annexin family of calcium-dependent phospholipid binding proteins. Annexin I plays regulatory roles in various cellular processes including cell proliferation and differentiation. Recently we found that annexin I is a heat shock protein (HSP) and displays a chaperone-like function. In this paper we investigated the function of annexin I as an ATPase using 1 to 32 amino acids deleted annexin I (${\Delta}-annexin$ I). ${\Delta}-Annexin$ I hydrolyzed ATP as determined by thin layer chromatography. The ability of ATP hydrolysis was inhibited by ADP, GTP and GDP, but not by the AMP, GMP and cAMP. In view of the ATP hydrolyzing function of HSP, the results support the function of annexin I as a HSP.
Perveen, Shazia;Yang, Ji Seon;Ha, Tae Joung;Yoon, Shin Hee
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.18
no.4
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pp.297-305
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2014
Flavonoids have an ability to suppress various ion channels. We determined whether one of flavonoids, cyanidin-3-glucoside, affects adenosine 5'-triphosphate (ATP)-induced calcium signaling using digital imaging methods for intracellular free $Ca^{2+}$ concentration ([$Ca^{2+}$]i), reactive oxygen species (ROS) and mitochondrial membrane potential in PC12 cells. Treatment with ATP ($100{\mu}M$) for 90 sec induced [$Ca^{2+}$]i increases in PC12 cells. Pretreatment with cyanidin-3-glucoside ($1{\mu}g/ml$ to $100{\mu}g/ml$) for 30 min inhibited the ATP-induced [$Ca^{2+}$]i increases in a concentration-dependent manner ($IC_{50}=15.3{\mu}g/ml$). Pretreatment with cyanidin-3-glucoside ($15{\mu}g/ml$) for 30 min significantly inhibited the ATP-induced [$Ca^{2+}$]i responses following removal of extracellular $Ca^{2+}$ or depletion of intracellular [$Ca^{2+}$]i stores. Cyanidin-3-glucoside also significantly inhibited the relatively specific P2X2 receptor agonist 2-MeSATP-induced [$Ca^{2+}$]i responses. Cyanidin-3-glucoside significantly inhibited the thapsigargin or ATP-induced store-operated calcium entry. Cyanidin-3-glucoside significantly inhibited the ATP-induced [$Ca^{2+}$]i responses in the presence of nimodipine and ${\omega}$-conotoxin. Cyanidin-3-glucoside also significantly inhibited KCl (50 mM)-induced [$Ca^{2+}$]i increases. Cyanidin-3-glucoside significantly inhibited ATP-induced mitochondrial depolarization. The intracellular $Ca^{2+}$ chelator BAPTA-AM or the mitochondrial $Ca^{2+}$ uniporter inhibitor RU360 blocked the ATP-induced mitochondrial depolarization in the presence of cyanidin-3-glucoside. Cyanidin-3-glucoside blocked ATP-induced formation of ROS. BAPTA-AM further decreased the formation of ROS in the presence of cyanidin-3-glucoside. All these results suggest that cyanidin-3-glucoside inhibits ATP-induced calcium signaling in PC12 cells by inhibiting multiple pathways which are the influx of extracellular $Ca^{2+}$ through the nimodipine and ${\omega}$-conotoxin-sensitive and -insensitive pathways and the release of $Ca^{2+}$ from intracellular stores. In addition, cyanidin-3-glucoside inhibits ATP-induced formation of ROS by inhibiting $Ca^{2+}$-induced mitochondrial depolarization.
Extracellular ATP elicits various biological responses and plays a significant role in physiological regulation. Recently, ATP-induced growth inhibitions were reported in some tumor cell lines, but these effects and mechanisms are not well hewn. This study was conducted to investigate ATP-induced growth inhibition in mouse $leukemic(P388D_1)$ cells. ATP inhibited cell growth in a dose-dependent manner as analyzed by MTS assay$(IC_{50}: 33.1\;{\mu}M)$. Nucleotides other than ATP, such as ADP$(37.5;{\mu}M)$ and AMP$(33.2;{\mu}M)$ had the same effects as ATP but adenosine$(57.8;{\mu}M)$ showed less effect than ATP. ATP attenuated the cells in $G_0/G_l\;and\;G_2/M$ phases but increased those in S phase in flow cytometric analysis. Hypodiploid cells$(A_0)$, the presumptive findings of apoptosis, were found among the ATP-treated cells. ATP induced DNA fragmentation into $180{\mu}200\;bps $as measured by electrophoresis. some apoptotic cells were stained by TUNEL method. ATP increased the intracellular free $Ca^{++}$concentration$([Ca^{++}]_i)$ and the increment of $([Ca^{++}]_i)$ was caused by influx from the extracellular space. These results suggest that extracellular ATP induces growth inhibition through apoptosis.
This paper includes ATP(Automatic Train Protection) simulator development and ATP algorithm verification to allocate wayside and train-borne and verify ATP functions of communications based train control system. The train control system has some characteristics such as simple structure and high safety when wireless communication technology is applied to the train control system. Especially, vital functions can be performed with in wayside and train-borne ATP. However, different system can be realized because I/F contents vary in accordance with vital functional allocation of ATP. Drawing characteristics in accordance with wayside and train-borne functional allocation and drawing I/F details affected by such characteristics are needed accordingly. This paper includes ATP simulator development creating train location information by direct activation of an electric motor, verifies train safety distance control algorithm of ATP by functional allocation such as train movement authority and train speed limit to ATP, and draws any supplementation needed. Appropriate simulated environment for verify ATP algorithm and main factors that affect to the ATP function were confirmed.
Fluoxetine, a widely used anti-depressant compound, has several additional effects, including blockade of voltage-gated ion channels. We examined whether fluoxetine affects ATP-induced calcium signaling in PC12 cells by using fura-2-based digital calcium imaging and assay for $[^3H]-inositol$ phosphates (IPs). Treatment with ATP $(100\;{\mu}M)$ for 2 min induced $[Ca^{2+}]_i$ increases. The ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increases were significantly decreased by removal of extracellular $Ca^{2+}$ and treatment with the inhibitor of endoplasmic reticulum $Ca^{2+}$ ATPase thapsigargin $(1\;{\mu}M)$. Treatment with fluoxetine for 5 min blocked the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase concentration-dependently. Treatment with fluoxetine $(30\;{\mu}M)$ for 5 min blocked the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase following removal of extracellular $Ca^{2+}$ and depletion of intracellular $Ca^{2+}$ stores. While treatment with the L-type $Ca^{2+}$ channel antagonist nimodipine for 10 min inhibited the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increases significantly, treatment with fluoxetine alone blocked the ATP-induced responses. Treatment with fluoxetine also inhibited the 50 mM $K^+-induced$$[Ca^{2+}]_i$ increases completely. However, treatment with fluoxetine did not inhibit the ATP-induced $[^3H]-IPs$ formation. Collectively, we conclude that fluoxetine inhibits ATP-indueed $[Ca^{2+}]_i$ increases in PC12 cells by inhibiting both an influx of extracellular $Ca^{2+}$ and a release of $Ca^{2+}$ from intracellular stores without affecting IPs formation.
High concentrations of ATP induce membrane blebbing. However, the underlying mechanism involved in epithelial cells remains unclear. In this study, we investigated the role of the P2X7 receptor (P2X7R) in membrane blebbing using Par C5 cells. We stimulated the cells with 5 mM of ATP for 1${\sim}$2 hrs and found the characteristics of membrane blebbing, a hallmark of apoptotic cell death. In addition, 500 ${\mu}M$ Bz-ATP, a specific P2X7R agonist, induced membrane blebbing. However, 300 ${\mu}M$ of Ox-ATP, a P2X7R antagonist, inhibited ATP-induced membrane blebbing, suggesting that ATP-induced membrane blebbing is mediated by P2X7R. We found that ATP-induced membrane blebbing was mediated by ROCK I activation and MLC phosphorylation, but not by caspase-3. Five mM of ATP evoked a biphasic $[Ca^{2+}]_i$ response; a transient $[Ca^{2+}]_i$ peak and sustained $[Ca^{2+}]_i$ increase secondary to ATP-stimulated $Ca^{2+}$ influx. These results suggest that P2X7R plays a role in membrane blebbing of the salivary gland epithelial cells.
Contribution of prostaglandins $D_2,\;E_2\;and\;I_2\;(PGD_2,\;PGE_2\;and\;PGI_2)$ on the regulation of ATP-sensitive $K^+$ channel $(K_{ATP}\;channel)$ was investigated in isolated single rat ventricular cardiac myocytes using the patch clamp technique. $PGD_2,\;PGE_2\;and\; PGI_2$ did not affect $K_{ATP}$ channel activity in the inside-out patch, but increased channel activity in a dose-dependent manner when the channel activities were attenuated by the administration of 100 ${\mu}M$ ATP to the internal solution in the inside-out patch. Channel activations by the prostaglandins were abolished by 50 ${\mu}M$ glibenclamide, a $K_{ATP}$ channel blocker. Dose-response curves of relative channel activity against the ATP concentrations of internal solution in the inside-out patch were shifted to the right in the presence of those three prostaglandins. The rank order of the channel stimulatory potencies $(as\;IC_{50}\;for\;ATP)$ calculated from the dose-response curves were $PGI_2\;>\;PGD_2\;>\;PGE_2.$ Conductance of the channel was not changed by those three prostaglandins. In conclusion, we suggest that prostaglandins $D_2,\;E_2\;and\;I_2$ are involved in the regulation of $K_{ATP}$ channel activity in certain circumstances, and that those three prostaglandins may cause myocardial relaxation by opening $K_{ATP}$ channels, thus protecting the heart from ischema.
We isolated a cDNA clone, BLSC1, encoding 5' exon of ATP synthase CF0 subunit I from broccoli. BLSC1 is 285 nucleotides long which consists of a 5' noncoding region of 34 nucleotides, a 5' exon of 145 nucleotides and an intron of 106 nucleotides. The 5' exon codes for 48 amino acids which reveals mostly hydrophobic. The amino acid sequence deduced from BLSC1 shares 83%, 83% and 91% identities with the genes coding for atpF from wheat, rice and spinach, respectively. Genomic Southern blot analysis for BLSC1 showed a typically strong signal for a gene located in the chloroplast genome. Northern blot analysis identified three major classes of transcripts showing strong positive signals in the leaves, but only trace amounts of the transcripts were identified in the other organs like stems, flowr buds and roots.
Phenolic compounds affect intracellular free $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) signaling. The study examined whether the simple phenolic compound octyl gallate affects ATP-induced $Ca^{2+}$ signaling in PC12 cells using fura-2-based digital $Ca^{2+}$ imaging and whole-cell patch clamping. Treatment with ATP ($100\;{\mu}M$) for 90 s induced increases in $[Ca^{2+}]_i$ in PC12 cells. Pretreatment with octyl gallate (100 nM to $20\;{\mu}M$) for 10 min inhibited the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ response in a concentration-dependent manner ($IC_{50}=2.84\;{\mu}M$). Treatment with octyl gallate ($3\;{\mu}M$) for 10 min significantly inhibited the ATP-induced response following the removal of extracellular $Ca^{2+}$ with nominally $Ca^{2+}$-free HEPES HBSS or depletion of intracellular $Ca^{2+}$ stores with thapsigargin ($1\;{\mu}M$). Treatment for 10 min with the L-type $Ca^{2+}$ channel antagonist nimodipine ($1\;{\mu}M$) significantly inhibited the ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase, and treatment with octyl gallate further inhibited the ATP-induced response. Treatment with octyl gallate significantly inhibited the $[Ca^{2+}]_i$ increase induced by 50 mM KCI. Pretreatment with protein kinase C inhibitors staurosporin (100 nM) and GF109203X (300 nM), or the tyrosine kinase inhibitor genistein ($50\;{\mu}M$) did not significantly affect the inhibitory effects of octyl gallate on the ATP-induced response. Treatment with octyl gallate markedly inhibited the ATP-induced currents. Therefore, we conclude that octyl gallate inhibits ATP-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in PC12 cells by inhibiting both non-selective P2X receptor-mediated influx of $Ca^{2+}$ from extracellular space and P2Y receptor-induced release of $Ca^{2+}$ from intracellular stores in protein kinase-independent manner. In addition, octyl gallate inhibits the ATP-induced $Ca^{2+}$ responses by inhibiting the secondary activation of voltage-gated $Ca^{2+}$ channels.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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