Objective: The aim of this study is to investigate the effect of Injin butanol fractions with Thin Layer Chromatography on Fas-mediated Apoptosis. Method: Injin-butanol fraction separated by TLC. MIT assay, cell cycle analysis, Caspase-3 protease assay, DNA fragmentation assay and quantitative RT-PCR were performed to evaluate the effects of TLC extraction of lnjin-butanol fraction on cell viability, cell cycle progression and apoptosis. Results: Scopoletin, luteolin, apigenin and unknown powder was isolated by TLC. Fas-mediated apoptosis analysis shows that scopoletin has inhibiting function on apoptosis. Caspase- 3 protease assay analysis shows that scopoletin inhibits activity of caspase-3. Quantitative RT-PCR analysis shows that no activity on caspase-3, but apoptosis inhibition cytokine -Bcl-2- is activated, and apoptosis activating cytokine -Bax- is unactivated. Conclusion: These results show that each fraction of Injin-butanol TLC extraction, especially scopoletin, acts as a protective function on liver cell viability, and inhibitory function on apoptosis. (J Korean Oriental Moo 2002;23(2):57-69)
Biological methods are described for the assay of certain substances and preparations whose potency cannot be adequately assured by chemical or physical analysis. The principle applied through these assays is of a comparison with a standard preparation to determine how much of the examined substance produces the same biological effects as a given quantity (the Unit) of the standard preparation. In these dilution assays, to estimate the relative potencies of the unknown preparations to the standard preparations, it is necessary to compare dose-response relationships of standard and unknown preparations. The dose-response relationship in the dilution assay is non-linear and sigmoid when a wide range of doses is applied. The parallel line model (applied to the dose region with the steepest slope) is used to estimate the relative potency. In this paper, the statistical theory in the parallel line model is explained with an application to a dilution assay data. The parallel line method is implemented in a SAS program and is available at the author's homepage(http://cafe.daum.net/go.analysis).
In vivo bioassays for biological medicines have been considered final resort to unequivocally assess the biological activities for them because there are some cases in which the biological activities obtained from in vivo bioassay and in vitro bioassay quite differ each other. The in vivo biological activity of EPO depends on its sialic acid contents which confer microheterogeneity-isoforms to this protein. We have devise a method which consists of a in vitro bioassay using BaF3 cell line and a capillary zone electrophoresis (CZE) for the measurement of the EPO isoform distribution. The biological activity of EPO obtained using in vitro bioassay with BaF3 cell line showed good correlation (C.V.(%) 7.34, 5.85, 8,16, 8.08, 8.8) to EPO content measured either spectrophotometric assay (A280 0.1 % =0.743) or radio immunoassay. The assay validation results of in vitro bioassay with 3 lot of in house EPO showed good results to EPO content measured either in vivo assay or radio immunoassay. and also showed good results the robustness of our method in terms of precision, accuracy, repeatability. The isoform distribution for EPO-BRP (1 : 1 mixture of epoetin-${\alpha}$ and epoetin-${\beta}$, European Pharmacopoeia) by CZE method resulted in isoform 2 through isoform 8. The major peaks in electrophoregram were composed of isoform 3 through 7. Our recombinant EPO (epoetin-${\alpha}$) having equivalent in vivo biological activity showed the isoform distribution of isoform 3 through 9. The major peaks consisted of isoform 4 through 8. The peak area of isoform 4 was always smaller than that of isoform 5. The preparations of recombinant epoetin-${\alpha}$ with lower in vivo biological activity than EPO-BRP showed the isoform 2 through 8 in their electrophoregrams whose major peaks consisted of the isoform 3 through 7. The peak area of isoform 4 was larger than that of isoform 5.
A rapid radicle assay for prescreening antagonistic bacteria to Phytophthora capsic4 causal agent of Phytophthora blight of pepper was developed. Sixty-four bacterial strains with in vitro antifungal activity selected out of 1,400 strains isolated from soils of Ansung, Chunan, Koyang, and Paju, Korea in 1998 were used for development of the bioassay. Uniformly germinated pepper seeds dipped in bacterial cells for 3 hours were placed near the edges of growing mycelia of P. capsici on water agar containing 0.02% glucose. Five-week-old pepper plants(cv. Nockwang) were inoculated to compare with results of the radicle assay developed in this study. For plant inoculation, pepper seeds were sown in potting mixtures incorporated with the bacterial strains, then transplanted into steam-sterilized soils 3 weeks later. Plants were hole-inoculated with zoospores of P. capsici 2 weeks after transplanting. Disease incidence and severity were determined in radicle and plant assessments, respectively. In radicle assay, six strains, GK-B15, GK-B25, OA-B26, OA-B36, PK-B09, and VK-B14 consistently showed the significant(P=0.05) disease reduction against radicle infection by the fungus, four of which also did in plant assessments. Strains OA-B36 and GK-B15 consistently reduced the fungal infection in both the radicle assay and the plant assessment. Therefore, prescreening strains using the radicle assay developed in this study followed by plant assay could reduce time and labor, and improved the possibility of selecting antagonistic bacteria for control of Phytophthora blight of peppers.
A one-step real-time quantitative RT-PCR assay in combination with automated RNA extraction was evaluated for routine testing of HCV RNA in the laboratory. Specific primers and probes were developed to detect 302 bp on 5'-UTR of HCV RNA. The assay was able to quantitate a dynamic linear range of $10^7-10^1$ HCV RNA copies/reaction ($R^2=0.997$). The synthetic HCV RNA standard of $1.84{\pm}0.1\;(mean{\pm}SD)$ copies developed in this study corresponded to 1 international unit (IU) of WHO International Standard for HCV RNA (96/790 I). The detection limit of the assay was 3 RNA copies/reaction (81 IU/ml) in plasma samples. The assay was comparable to the Amplicor HCV Monitor (Monitor) assay with correlation coefficient r=0.985, but was more sensitive than the Monitor assay. The assay could be completed within 3 h from RNA extraction to detection and data analysis for up to 32 samples. It allowed rapid RNA extraction, detection, and quantitation of HCV RNA in plasma samples. The method provided sufficient sensitivity and reproducibility and proved to be fast and labor-saving, so that it was suitable for high throughput HCV RNA test.
Cymbidium mosaic virus (CymMV) is one of economically important viruses that cause significant losses of orchids in the world. In the present study, a reverse transcription recombinase polymerase amplification (RT-RPA) assay combined with a lateral flow immunostrip (LFI) assay was developed for the detection of CymMV in orchid plants. A pair of primers containing fluorescent probes at each terminus that amplifies highly specifically a part of the coat protein gene of CymMV was determined for RT-RPA assay. The RT-RPA assay involved incubation at an isothermal temperature (39℃) and could be performed rapidly within 30 min. In addition, no cross-reactivity was observed to occur with odontoglossum ringspot virus and cymbidium chlorotic mosaic virus. The RT-RPA with LFI assay (RT-RPA-LFI) for CymMV showed 100 times more sensitivity than conventional reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). Furthermore, the RT-PCR-LFI assay demonstrated the simplicity and the rapidity of CymMV detection since the assay did not require any equipment, by comparing results with those of conventional RT-PCR. On-site application of the RT-RPA-LFI assay was validated for the detection of CymMV in field-collected orchids, indicating a simple, rapid, sensitive, and reliable method for detecting CymMV in orchids.
An immunoassay method was developed to quantitatively detect phosphinothricin-N-acetyltransferase (PAT) encoded by the Bialaphos resistance (bar) gene in genetically modified (GM) pepper. The histidine-tagged PAT was overexpressed in Escherichia coli M15 (pQE3l-bar) and efficiently purified by $Ni^{2+}$ affinity chromatography. A developed sandwich enzyme-linked immunosorbent assay (S-ELISA) method (detection limit: $0.01{\mu}g/ml$) was 100-fold more sensitive than a competitive indirect ELISA (CI-ELISA) method or Western blot analysis in detecting the recombinant PAT. In real sample tests, PAT in genetically modified herbicide-tolerant (GMHT) peppers was successfully quantified [$4.9{\pm}0.4{\mu}g/g$ of sample (n=6)] by the S-ELISA method. The S-ELISA method developed here could be applied to other GMHT crops and vegetables producing PAT.
Prolonged release micro particles of clarithromycin (CL) were prepared using Eudragit RL 100 and RS 100 by spray-drying and casting-drying techniques. For the characterization of those microparticles, preparation yield, particle size distribution, X-ray diffraction, thermal behavior, active agent content and in vitro dissolution from the microparticles were performed. HPLC was used for the assay of clarithromycin and the assay method was validated. All the formulations obtained showed prolonged release when compared to pure clarithromycin. Microparticles prepared by spray-drying method had a slower release compared to those of casting drying method. Spray-drying method seems to be a more suitable method to prepare microparticles for prolongation in release.
Park, Chul;Kim, So-Jung;Shin, Wan-Chul;Kim, Hae-Gyoung;Choe, Suck-Young
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.33
no.9
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pp.1486-1491
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2004
The estrogenicities of six heavy metal compounds, which contaminate frequently in foods, were assayed using a combination of in vitro and in vivo assays. The assays were 1) estrogen receptor dependent transcriptional expression assay, 2) E-screen assay and, 3) the uterotropic assay in mice. The chemicals studied were 17$\beta$ -estradiol, diethylstilbestrol (DES), arsenic oxide, bis(tri-n-butyltin), cadmium chloride, chromium chloride, lead acetate, and mercuric chloride. Using the estrogen receptor dependent transcriptional expression assay, the following estrogenicity ranking was measured: bis(tri-n-butyltin) > cadmium chloride > chromium chloride >> mercuric chloride >lead acetate = arsenic oxide. Using E-screen test, the following estrogenicity ranking was measured: bis(tri-n-butyltin) > cadmium chloride > chromium chloride >> mercuric chloride > lead acetate = arsenic oxide. Results from the uterotropic assay showed that bis(tri-n-butyltin), cadmium chloride, chromium chloride caused an increase in uterine wet weight, while lead acetate, mercuric chloride, and arsenic oxide failed to do so. Bis(tri-n-butyltin), cadmium chloride and chromium chloride showed the highest estrogenicity in three assay systems. Recent studies suggesting that bis(tri-n-butyltin), cadmium chloride have estrogenicities are compatible with the present finding. Furthermore, our study is suggesting that chromium chloride may be estrogenic. The results demonstrate that this three level-assay combination (transcriptional activation, cell proliferation, and an in vivo effect in an estrogen-responsive tissue) could serve as a useful method to assess the estrogenicity of heavy metals.
Park, Eun-Jeong;Lim, Ji-Huen;Lee, Sung-Mo;Im, Jeong-Soo;Oh, Dae-Kyu
Korean Journal of Veterinary Service
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v.31
no.3
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pp.385-395
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2008
This study was carried out to investigate the residue level of fluoroquinolones in hen's general eggs and specific eggs by microbiological assay method and high performance liquid chromatography (HPLC) method. HPLC separation was carried out by reversed phase chromatography on a Symmetry $C_{18}$ (250${\times}$4.6 mm, $5{\mu}m$ particle size) with a phase composed of distilled water (containing 0.4% triethylamine and phosphoric acid) : Methanol (780 : 220, v/v), pumped isocratically at a flow rate of 1.0ml/min. A fluorescence detector was utilized with an excitation wavelength of 278nm and an emission wavelength of 456nm. The calibration curves were linear $({\gamma}^2{\geq}0.999)$ over a concentration range of $0.025{\sim}0.4{\mu}g/ml$. Average recoveries of the five fluoroquinolones in whole eggs at fortified levels of $0.05{\sim}0.2{\mu}g/g$ were ranged mean $78.1{\sim}91.7%$ and low coefficient of variation was less than 10% for all analysed samples. The limits of detection and limits of quantification for whole eggs were $1.2{\sim}6.0ng/g$ and $2.3{\sim}9.1ng/g$, respectively. Only one hen's general eggfrom chicken farm in Incheon was detected with the residual fluoroquinolones (Microbiological assay method; 1 of 47 general eggs) ; the range of residual concentration enrofloxacin was 0.12ppm. Those in food stores were detected with the residual fluoroquinolones (Microbiological assay method; 4 of 88 general eggs) ; the ranges of residual concentration enrofloxacin were $0.15{\sim}2.2 ppm$, ciprofloxacin $0.01{\sim}0.06ppm$, and hen's specific eggs (40) in food stores were not detected. For the microbiological assay method of fluoroquinolones in hen's eggs, as the results of comparative analysis, the disc diffusion method with E coli may be a little highly detected for the residual fluoroquinolones.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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