We have previously shown that 2,4,3',5'-tetramethoxystilbene (TMS), a trans-stilbene analogue, induces apoptosis in human cancer cells. However, the detailed mechanisms of mitochondria-dependent apoptosis induced by TMS are not fully understood. In the present study, the possible roles of annexin A5 in TMS-mediated apoptosis were investigated in MCF7 human breast cancer cells. Quantitative real-time PCR analysis and Western blot analysis showed that the expression of annexin A5 was strongly increased in TMS-treated cells. TMS caused a strong translocation of annexin A5 from cytosol into mitochondria. Confocal laser scanning microscopic analysis clearly showed that TMS induced translocation of annexin A5 into mitochondria. TMS increased the expression and oligomerization of voltage-dependent anion channel (VDAC) 1, which may promote mitochondria-dependent apoptosis through disruption of mitochondrial membrane potential. When cells were treated with TMS, the levels of Bax, and Bak as well as annexin A5 were strongly enhanced. Moreover, we found that the cytosolic release of apoptogenic factors such as cytochrome c, or apoptosis-inducing factor (AIF) in mitochondria was markedly increased. Annexin A5 depletion by siRNA led to decreased proapoptotic factors such as Bax, Bak, and annexin A5. Taken together, our results indicate that annexin A5 may play an important role in TMS-mediated mitochondrial apoptosis through the regulation of proapoptotic proteins and VDAC1 expression.
Annexin I is a member of the in family of calcium dependent phospholipid banding proteins and is an in vitro phospholipase $A_2$ (PLA$_2$) inhibitor. The mechanism of PLA$_2$ inhibition by annexin I is still ambiguous. The structure of annexin I was studied at the atomic level by using nuclear magnetic resonance (NMR), circular dichrotsm (CD) and fluorescence spectroscopy. Recombinant human annexin I and N-terminally truncated annexin I (1-31 deleted: d-annexin I) were purified and their NMR spectra were compared. The NMR spectra of the two were similar. When $Ca^{2+}$ ion added to annexin I ad d-annexin I, peak broadening occurred, but no significant spectroscopic change was observed. When porcine pancreatic PLA$_2$ was added to deuterium labeled annexin I, an interaction of annexin I with PLA$_2$ was observed as indicated by the disappearance and shift of several peaks in the NMR spectrum. This result supports a protein-protein interaction mechanism for PLA$_2$ inhibition by annexin I.I.
Annexin I is a 37 kDa member of the annexin family of calcium-dependent phospholipid binding proteins. Annexin I plays regulatory roles in various cellular processes including cell proliferation and differentiation. Recently we found that annexin I is a heat shock protein (HSP) and displays a chaperone-like function. In this paper we investigated the function of annexin I as an ATPase using 1 to 32 amino acids deleted annexin I (${\Delta}-annexin$ I). ${\Delta}-Annexin$ I hydrolyzed ATP as determined by thin layer chromatography. The ability of ATP hydrolysis was inhibited by ADP, GTP and GDP, but not by the AMP, GMP and cAMP. In view of the ATP hydrolyzing function of HSP, the results support the function of annexin I as a HSP.
Human annexin I is a member of annexin family of calcium dependent phospholipid binding proteins, which have been implicated in various physiological roles including phospholipase A$_2$ (PLA$_2$) inhibition, membrane fusion and calcium channel activity. In this work, the structure of N-terminally truncated human annexin I (Δ-annexin I) and its interactions with Ca$\^$2+/, ATP and cAMP were studied at atomic level by using $^1$H, $\^$15/N, $\^$l3/C NMR (nuclear magnetic resonance) spectroscopy. The effect of Ca$\^$2+/ binding on the structure of Δ-annexin I was investigated, and compared with that of Mg$\^$2+/ binding. The addition of Ca$\^$2+/ to Δ-annexin I caused some changes in the high field and low field regions of $^1$H NMR spectra. Whereas, upon addition of Mg$\^$2+/ to Δ-annexin I, almost no change could be observed. Also we found that the binding ratio of ATP to Δ-annexin I is 1. Because Δ-annexin I is a large protein with 35 kDa molecular weight, site-specific (carbonyl-$\^$l3/C, amide-$\^$15/N) labeling technique was used to determine the interaction sites of Δ-annexin I with Ca$\^$2+/ and ATP. Assignments of all the histidinyl carbonyl carbon resonances have been completed by using Δ-annexin I along with its specific 1,2-subdomain. The carbonyl carbon resonances originating from His52 and His246 of Δ-annexin I were significantly affected by Ca$\^$2+/ binding, and some Tyr and Phe resonances were also affected. The carbonyl carbon resonances originating from His52 is significantly affected by ATP binding, therefore His52 seems to be involved in the ATP binding site of Δ-annexin I.
Annexin I (also called lipocortin 1), a 37-kDa member of the annexin family of proteins, has been implicated in the mitogenic signal transduction by epidermal growth factor (EGF). Annexin I is phosphorylated by the EGF signal, however, the role of annexin I in the EGF signal transduction is still unknown. To transduce extracellular signals into the intracellular targets, selective translocation of the signaling molecules to their targets would be necessary. In this study, we examined the subcellular locations of annexin I during EGF signal transduction. Treatment of A549 cells with EGF resulted in the translocation of cytoplasmic annexin I to the nucleus and perinuclear region as determined by Western blot and immunofluorescent staining. The nuclear translocation of annexin I was inhibited by tyrphostin AG 1478 and genistein, the inhibitors of EGF receptor kinase and downstream tyrosine kineses, respectively. Pretreatment of cells with cyclohexamide did not inhibit the nuclear translocation. The results suggest that nuclear translocation of annexin I is controlled by a series of kinase dependent events in the EGF receptor signaling pathway and may be important in tranducing the signals by EGF.
Annexin A1 is a 37-kDa calcium- and phospholipid-binding protein of the annexin superfamily considered to play an important role in tumorigenesis. However, associations with clinicopathological features in pancreatic ductal adenocarcinoma (PDAC) cases have yet to be fully defined. We therefore investigated the prognostic value of annexin A1 protein as a PDAC biomarker in 83 tumor and matched non-cancerous tissues or normal pancreas tissues. Expression was analyzed using real-time RT-PCR, Western blotting and immunohistochemistry. In non-tumor tissue, myoepithelial cells showed no or weak expression of annexin A1 while expression was strong and sometimes even located in the nuclei of endothelial cells in tumor tissue. High expression was significantly associated with advanced stage (P <0.05) and a worse overall survival (P <0.05). These results provide new insights to better understand the role of annexin A1 in PDAC survival, and might be relevant to prediction of prognosis and development of more effective therapeutic strategies aimed at improving survival.
Human annexin I is a member of annexin family of calcium dependent phospholipid binding proteins, which have been implicated in various physiological roles including phospholipase A2(PLA2) inhibition, membrane fusion and calcium channel activity. In this work, the structure of N-terminally truncated human annexin I ({{{{ DELTA }}-annexin I) and its interactions with Ca2+, ATP and cAMP were studied at atomic level by using nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy. The effect of Ca2+ binding on the structure of {{{{ DELTA }}-annexin I was investigated. The addition of Ca2+ to {{{{ DELTA }}-annexin I caused some changes in 13C NMR spectra. Carbonyl carbon resonances of some histidines were significantly broadened by Ca2+ binding. However, in the case of methionine, phenylalanine, and tyrosin, small changes could be observed. We found that ATP and cAMP bind {{{{ DELTA }}-annexin I, and the binding ratio of ATP to {{{{ DELTA }}-annexin I is 1. These results are well consistent with the report that cAMP and ATP interact with annexin I, and affect the calcium channels formed by annexin I. Because {{{{ DELTA }}-annexin I is a large protein with 35 kDa molecular weight, site-specific (carbonyl-13C) labeling technique was used to study the interaction sites of {{{{ DELTA }}-annexin I with Ca2+. NMR study was focused on the carbonyl carbon resonances of tyrosine, phenylalanine, methionine and histidine residues of {{{{ DELTA }}-annexin I because the number of these amino acids is small in the amino acid sequence of {{{{ DELTA }}-annexin I.
Annexin I is a member of the annexin family of calcium dependent phospholipid binding proteins and has anti-inflammatory activity by inhibiting phospholipase A$_2$ (PLA$_2$). Recent X-ray crystallographic study of annexin I identified six Ca$\^$2+/ binding bites, which was different types (type II, III) from the well-known EF-hand motif (type I). In this work, the structure of annexin I was studied at atomic level by using $^1$H, $\^$15/N and $\^$l3/C NMR(nuclear magnetic resonance) spectroscopy, and the effect of Ca$\^$2+/ binding on the structure of annexin I was studied, and compared with that of Mg$\^$2+/ binding, When Ca$\^$2+/ was added to annexin I, NMR peak change was occured in high- and low-field regions of $^1$H-NMR spectra. NMR peak change by Ca$\^$2+/ binding was different from that by Mg$\^$2+/ binding. Because annexin I is a larger protein with 35 kDa molecular weight, site-specific (amide-$\^$15/N, carbonyl-$\^$l3/C) labeling technique was also used. We were able to detect methionine, tyrosine and phenylalanine peaks respectively in $\^$13/C-NMR spectra, and each residue was able to be assigned by the method of doubly labeling annexin I with [$\^$13/C] carbonyl-amino acid and [$\^$15/N] amide-amino acid. In $\^$l3/C-NMR spectra of [$\^$13/C] carbonyl-Met labeled annexin I, we observed that methionine residues spatially located near Ca$\^$2+/ binding Sites Were Significantly effected by Ca$\^$2+/ binding. From UV spectroscopic data on the effect of Ca$\^$2+/ binding, we knew that Ca$\^$2+/ binding sites of annexin I have cooperativity in Ca$\^$2+/ binding. The interaction of annexin I with PLA$_2$ also could be detected by using heteronuclear NMR spctroscopy. Consequently, we expect that the anti-inflammatory action mechanism of annexin I may be a specific protein-protein interaction. The residues involved in the interaction with PLA$_2$ can be identified as active site by assigning NMR peaks effected by PLA$_2$ binding.
Proteome analysis was performed to identify proteins differentially expressed in an Arabidopsis mutant, ntm1-D. In this mutant the NAC transcription factor NTM1 is constitutively expressed and the resultant phenotypic changes include dwarfism, serrated leaves, and altered floral structures, probably due to reduced cell division. Marked elevation of proteins mediating environmental stress responses, including annexin, vegetative storage proteins, beta-glucosidase homolog 1, and glutathione transferases was observed. Overexpression of annexin was confirmed by RT-PCR and Western blotting. These observations suggest that the reduced growth observed in the ntm1-D mutant is caused by enhancement of its stress responses, possibly resulting in a cost in fitness.
Adenocarcinoma of lung has high incidence and a poor prognosis, woith chemotherapy as the main therapeutic tool, most commonly with cisplatin. However, chemotherapy resistance develops in the majority of patients during clinic treatment. Mechanisms of resistance are complex and still unclear. Although annexin play important roles in various tumor resistance mechanisms, their actions in cisplatin-resistant lung adenocarcinoma remain unclear. Preliminary studies by our group found that in cisplatin-resistant lung cancer A549 cells and lung adenocarcinoma tissues, both mRNA and protein expression of annexins A1, A2 and A3 is increased. Using a library of annexin A1, A2 and A3 targeting combined molecules already established by ourselves we found that specific targeting decreased cisplatin-resistance. Taken together, the underlined effects of annexins A1, A2 and A3 on drug resistance and suggest molecular mechanisms in cisplatin-resistant A549 cells both in vivo and in vitro. Furthermore, the study points to improved research on occurrence and development of lung adenocarcinoma, with provision of effective targets and programmes for lung adenocarcinoma therapy in the clinic.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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