Keratinases are of particular interest because of their action on insoluble keratins and generally on a broad range of protein substrates. Alkalophilic and neutrophilic actinomycete strains isolated from different soil samples, rich in keratinaceous substances were screened for keratinolytic activity. An alkalophilic isolate, TBG-S13A5, was found to possess good keratinolytic activity and was able to utilize feather as the sole carbon and nitrogen source. TBG-S13A5 exhibited an off-white aerial mass color with a rectus-flexibilis type of spore chain. The morphological, microscopical and biochemical characters were comparable with that of Streptomyces albidoflavus. Fatty acid methyl ester profiling (FAME) and 16S rDNA sequence analysis confirmed its identity as a strain of S. albidoflavus. Under submerged fermentation conditions, maximum protease production was recorded on the $5^{th}$ day of incubation at $30^{\circ}C$, using basal broth of pH 9.0 with 0.25% (w/v) white chicken feather. This strain could affect feather degradation when the initial pH was 8 and above and maximum protease production was recorded when the initial pH was around 10.5. The effectiveness of the crude enzyme in destaining and leather dehairing were also demonstrated.
To elucidate a method of preventing dental caries, strains producing lytic enzymes were isolated and their characteristics were investigated. Among 5,00 alkalophilic strains isolated from soil, 22 strains showed lytic activity against Streptococcus mutans. Strain No. 4830, with the highest lytic activity, was selected for further study. Strain 4830 showed 94% sequence homology with the 16S rDNA sequence of Bacillus alcalophilus, but it was concluded to be different from Bacillus alcalophilus because of its biochemical characteristics. The strain was named Bacillus sp. 4830. The lytic enzyme from Bacillus sp. 4830 was purified by ethanol precipitation and CM-agarose column chromatography. The molecular weight of the lytic enzyme was determined to be 28 kDa by SDS-PAGE. The lytic enzyme was stable between pH 5.0 and pH 11 and up to $40^{\circ}C$. The optimal pH and temperature for the lytic activity was 9.0 and $50^{\circ}C$, respectively.
A strain of alkalophilic Bacillus sp. YS-309 has been isolated from domestic soil. It belongs to genus Bacillus from its morphological and biochemical characteristics. The strain grows better in the alkaline media rather than in the neutral media. The optimum pH and temperature for growth were observed at 8.5 and 4$0^{\circ}C$, respectively. Glucose, lactose and maltose were appeared as good carbon source but soluble starch and fructose were utilized uneffectively for growth. Concentrations of lactose had affected both the cellular growth and the enzyme productions. The maximum growth and the highest enzyme productions were obtained at 0.5%(w/e) of lactose added in the media. B-Galactosidase from Bacillus sp. YS-309 was produced inducibly into the cell and total enzyme activities per ml were gradually decreased when the concentration of glucose increased.
The study was performed to investigated the excellent microbial anticaries substance which is more effective than the chlorohexidine in the dental caries treatment. For the screening of alkaliphilic microorganism, more than 1200 bacterial strains were isolated from sea soil sample. A typ-ical strain which produced the most excellent antimicrobial substance was selected. The strain was identified novel alkalophilic Bacillus sp. through the results of morphological, biochemical and chemotaxonomical characteristics and 16S rDNA sequencing and designated as Bacillus alkalophilshaggy JY-827.
To investigate the role of induction on CGTase production for alkalophilic Bacillus firm us var. alkalophilus H609, the constitutive mutants that form a halo around its colonies at non-inducible AG agar media containing amylose and glucose were selected. The selected constitutive mutants could produce CGTase in the range of 18.9 to 28.8 units/ml $\cdot A_{600}$ in the alkaline basal medium, and finally a constitutive mutant Bacillus firmus var. alkalophilus CM46 was selected. The constitutive nature of CM46 was also confirmed in protein level using SDS-PAGE. The effects of induction and catabolite repression for both parent strain Bacillus firmus var. alkalophilus H609 and constitutive mutant CM46 were also compared by adding soluble starch and glucose during cultivation. The selected mutant CM46 was a non-inducible but a catabolite regulated type mutant. Even though inductive regulation was released, the specific CGTase activity defined as CGTase activity per cell concentration was not increased compared with that of parent strain. The cell growth and CGTase production patterns of constitutive mutant Bacillus firmus var. alkalophilus CM46 were compared with the parent strain to identify CGTase production characteristics.
The moderately alkalophilic bacterium, identified as Bacillus sp. S-1 , was isolated from soils and effectively secrete extracellular pullulanase. The isolate was moderately alkalophilic since enzyme production occurred at pHs from 6.0 to 10.0. Extracellular crude enzymes of the isolate gave maltotriose as the major product from soluble starch and pullulan hydrolysis. Compared to other alkalophilic microbes, this isolate secreted extremely high concentration(7.0 units/ml) of pullulanase. The purified pullulanase was moderately alkalophilic and thermoactive; optimal activity was detected at pH 8.0-10.0 and between 50-60$^{\circ}$C. Even at pH 12.0, 10% of S-1 pulluanase activity remained and the strain had broad pH ranges and moderate thermo-stability for their enzyme activities. These results indicate that the new isolate have potential as producer of pullulanase for use in the starch industry.
An alkalophilic microorganism, SH-8, was isolated from soil samples. It was a Grampositive, catalase-positive, spore-forming and motile rod which was capable of growth in aerobic condition at the initial pH 9.0 or above up to 11.0 and between 15 and $42^{\circ}C$ The characteristics of this strain resembled those of the Bacillus group of bacteria. The mutant, Bacillus sp. SH- 8M, was selected from Bacillus sp. SH-8 by U.V. mutagenesis and was able to grow at pH 6.9 up to 11.0. These two strains will be suitable for the comparative study on growth and enzyme production at various pH conditions.
An alkalophilic bacterium isolated from compost was selected, identified and tested for the production of glutamic acid from ammonium fumarate. The bacterium was closely related to Bacillus brevis. The conditions for glutamic acid production were pH 8.0, 2% fumaric acid, and 0.8% nutrient broth. The mechanism of glutamic acid formation in this strain was postulated as following scheme. (1) Ammonium fumarate longrightarrow Aspartic acid (2) Aspartic acid + $\alpha$-Ketoglutaric acid longrightarrow Glutamic acid + Oxaloacetic acid.
A strain of alkalophilic Bacillus sp. YC-335 has been isolated from soil. The strain was capable of producing large amount of cyclodextrin glycosyl transferase (CGTase) in the culture broth. The preferable medium composition has been determined to be as follows : 1.5% soluble starch, 5% corn steep liquor, 0.1% $K_2$HPO$_4$, 0.02%mgSO$_4$.7$H_2O$, 1% CaCO$_3$and 1% Na$_2$CO$_3$(pH 10.3). The highest enzyme production was observed after 48 hours of cultivation at 31$^{\circ}C$. The optimum pH and temperature for the activity of crude enzyme were 6.0 and 5$0^{\circ}C$, respectively. The enzyme was stable between pH 5 and 9, and upto 5$0^{\circ}C$. The enzyme converted starch into $\alpha$-, $\beta$- and ${\gamma}$-CD in the relative amounts of 1:10:1.5, respectively.
Twenty-four bacterial strains among alkalophillic bacteria isolated from soil samples were examined for the presence of type II restriction endonuclease in aerobic culture. One strain was found to contain specific enzyme to cleave lambda DNA. The characteristics of this microorganism is the ability to grow well in alkalophilic and high temperature condition, that is at pH 10.3 and $50^{\circ}C$. This strain was tentatively identified to Bacillus alkaloPhilus subsp. halodurans when morphological, physiological and biochemical characteristics were examined. The enzyme was purified from crude extract by streptomycin sulfate, ammonium sulfate precipitation, which was followed by DEAE-cellulose and phosphocellulose ion exchange column chromatography, and the subunit molecular weight was about, 32,000 daltons by polyacrylamide gel electrophoresis containing 0.1% SDS.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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