Cnidium monnieri (L). Cussion is used as a tonic agent in traditional oriental medicine. However, the molecular mechanism of mast cell-mediated anti-inflammatory modulation has not been fully understood. The aim of the present study was to demonstrate the effects of Cnidium monnieri (L). Cussion eathyl acetate fraction on the expression of pro-inflammatory cytokines, as well as to elucidate its mechanism of action in the human mast cell line (HMC-1). Cells were stimulated with phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) plus A23187 in the presence or absence of Cnidium monnieri (L). Cussion eathyl acetate fraction. Cnidium monnieri (L). Cussion eathyl acetate fraction significantly inhibited the PMA plus A23187-induction of inflammatory cytokines such as tumor necrosis factor (TNF)-$\alpha$, interleukin (IL)-6 and IL-8. Moreover, EtOAc fraction attenuated cyclooxygenase (COX)-2 expression. In activated HMC-1 cells, phosphorylation of extra-signal response kinase (ERK) 1/2 decreased after treatment with EtOAc fraction. Moreover EtOAc fraction inhibited PMA plus A23187-induced nuclear factor (NF)-${\kappa}B$ activation, $I{\kappa}B$ degradation. EtOAc fraction suppressed the expression of TNF-$\alpha$, IL-6, IL-8 through a decrease in the ERK 1/2, as well as activation of NF-${\kappa}B$. These results indicated that Cnidium monnieri (L). Cussion EtOAc fraction exerted a regulatory effect on inflammatory reactions mediated by mast cells.
Im, Nam Kyung;Lee, Dong Sung;Yeo, Sun Jung;Kim, Youn-Chul;Jeong, Gil-Saeng
Korean Journal of Pharmacognosy
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v.43
no.4
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pp.316-322
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2012
Siegesbeckia Herba is known to have anti-oxidant, anti-inflammatory, anti-allergic and anti-tumor. The objective of this study is to explore the neuroprotective effect of Siegesbeckia Herba against glutamate-induced oxidative stress in mouse hippocampal HT22 cells. Siegesbeckia Herba 70% ethanol extract and solvent fractions have the potent neroprotective effects on glutamate-induced nerotoxicity by induced the expression of heme oxygenase (HO)-1 in the mouse hippocampal HT22 cells. Especially, ethyl acetate fraction showed higher protective effect. In HT22 cell, Siegesbeckia Herba ethyl acetate fraction makes the nuclear accumulation of Nrf2. Further, we found that treatment with c-JUN N-terminal kinase (JNK) inhibitor (SP600125) reduced Siegesbeckia Herba ethyl acetate fraction induced HO-1 expression and Siegesbeckia Herba ethyl acetate fraction also increased JNK phosphorylation. In conclusion, the ethyl acetate fraction of 70% ethanol extract of Siegesbeckia Herba significantly protect glutamate-induced oxidative damage by induction of HO-1 via Nrf2 and JNK pathway in mouse hippocampal HT22. Taken together these finding suggest that Siegesbeckia Herba ethyl acetate fraction good source for taking active compounds and may be a potential therapeutic for brain disorder by targeting the oxidative stress of neuronal cell.
We have developed a synthetic method for dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose with four enzyme system. We have used crude extracts from cultures of Escherichia coli BL21 strains harboring plasmids containing different sources. dTDP-4-keto-6-deoxy-D-glucose was synthesized by the combination of thymidine-monophosphate kinase, acetate kinase, dTDP-glucose synthase and dTDP-D-glucose 4,6-dehydratase in a batch system, starting the reaction with dTMP. The enzymatic synthesis strategy allowed a dTMP conversion with a 95%.
Glucose-1-phosphate uridylyltransferase from E. coli K12 was used to convert uridine-5'-triphosphate and glucose-1-phosphate to UDP-D-glucose. The conversion was efficient and completed within 5 minutes under the employed conditions. In addition, thymidine-5'-monophosphate kinase and acetate kinase were proven to be non-specific, converting udridine-5'-monophosphate to uridine-5'-triphosphate with 55% conversion after 6 h, which was much slower than the production of TTP under the same conditions (complete conversion within one hour). Since these two reactions could proceed under the same conditions, a one-pot synthesis of UDP-D-glucose with ATP regeneration was designed from easily available starting materials, and conversion up to 40% by HPLC peak integration was achieved given a reaction time of 4 h.
To understand the role of protein kinase C (PKC) in the regulation of chondrogenesis, we examined proteins which are phosphorylated by PKC. Stage 23/24 chick embryo wing mesenchymes were micromass-cultured to induce chondrogenesis and cell extracts were phosphorylated in a condition that activates PKC. Several proteins including 63 and 66 kDa proteins were phosphorylated. The 66 kDa protein was phosphorylated only in the presence of phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) and phosphatidylserine CPS), and the phosphorylation was almost completely diminished by bisindolylmaleimide, a PKC inhibitor. In addition, partially purified PKC increased the phosphorylation of the 66 kDa protein. Treatment of cultures with lysophosphatidylcholine (LPC) promoted chondrogenesis and phosphorylation of 66 kDa protein, while PMA and thymeleatoxin inhibited both of the two events. Our results suggest that the 66 kDa protein is a putative substrate of PKC, and phosphorylation of the 66 kDa protein, probably by $PKC\alpha$ is required for chondrogenesis.
The present study showed that receptor-mediated activation of rabbit kidney proximal tubule cells by angiotensin II, the $Ca^{2+}$ ionophore A23187, or the protein kinase C activator phorbol myristate acetate (PMA) all stimulated phospholipase D (PLD). This was demonstrated by the increased formation of phosphatidic acid, and in the presence of 0.5% ethanol, phosphatidylethanol (PEt) accumulation. Angiotensin II leads to a rapid increase in phosphatidic acid and diacylglycerol, and phosphatidic acid formation preceeded the formation of diacylglycerol. This result suggests that some phosphatidic acid seems to be formed directly from phosphatidylcholine hydrolyzed by Pill. On the other hand, EGTA substantially attenuated angiotensin II and A23187-induced PEt formation, and when the cells were pretreated with verapamil angiotensin II-induced Pill activation was completely abolished. These results provide the evidence that calcium ion influx is essential for the agonist-induced Pill activation. In addition, staurosporine, an inhibitor of protein kinase C, strongly inhibited PMA-induced PEt formation, but was ineffective on angiotensin II-induced PEt accumulation. $GTP{\gamma}S$ also stimulates PEt formation in digitonin-permeabilized cells, but pretreatment of the cells with pertussis toxin failed to suppress angiotensin II-induced PEt formation. From these results, we conclude that in the rabbit kidney proximal tubule cells the mechanisms of angiotensin II- and PMA-induced Pill activation are different from each other and mediated via a pertussis toxin-insensitive trimeric G protein.
In order to investigate the role of protein kinase C (PKC) in chondrogenic differentiation, we examined the localization of PKC isoforms in a limb bud micromass culture system. PKC$\alpha$ is specifically localized in the regions which would become cartilage nodules, while PKC$\lambda/l$ and $\zeta$ display widespread distribution in the whole culture. Distribution of PKC$\alpha$ change along with promotion or inhibition of chondrogenesis by lysophosphatidylcholine or phorbol 12-myristate 13-acetate. On the other hand, localization of PKC$\lambda/l$ or $\zeta$ a was not changed by the modulation of chondrogenesis. Peanut agglutinin binding protein which is associated with cell aggregation during chondrogenesis was present in the cell condensation regions and its expression in those regions was influenced by PKC activity. Expression of fibronectin and N-cadherin in the cell condensing area were also affected by modulation of PKC activity. These results suggest involvement of PKC$\alpha$ in the cell condensation, possibly through regulating expression of fibronectin and N-cadherin.
In this study, we aimed to enhance the accumulation of chorismate (CHR) and anthranilate (ANT), key intermediates in the shikimate pathway, by modifying a shikimate over-producing recombinant strain of Corynebacterium glutamicum [19]. To achieve this, we utilized a CRISPR-driven genome engineering approach to compensate for the deletion of shikimate kinase (AroK) as well as ANT synthases (TrpEG) and ANT phosphoribosyltransferase (TrpD). In addition, we inhibited the CHR metabolic pathway to induce CHR accumulation. Further, to optimize the shikimate pathway, we overexpressed feedback inhibition-resistant Escherichia coli AroG and AroH genes, as well as C. glutamicum AroF and AroB genes. We also overexpressed QsuC and substituted shikimate dehydrogenase (AroE). In parallel, we optimized the carbon metabolism pathway by deleting the gntR family transcriptional regulator (IolR) and overexpressing polyphosphate/ATP-dependent glucokinase (PpgK) and glucose kinase (Glk). Moreover, acetate kinase (Ack) and phosphotransacetylase (Pta) were eliminated. Through our CRISPR-driven genome re-design approach, we successfully generated C. glutamicum cell factories capable of producing up to 0.48 g/l and 0.9 g/l of CHR and ANT in 1.3 ml miniature culture systems, respectively. These findings highlight the efficacy of our rational cell factory design strategy in C. glutamicum, which provides a robust platform technology for developing high-producing strains that synthesize valuable aromatic compounds, particularly those derived from the shikimate pathway metabolites.
This study was done to classify the proteins involved in the specific phosphorylation using the rat peripheral blood lymphocytes (rPBL) stimulated with mitogens, phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) and concanavalin A (Con A). The lymphocytes were incubated with $^{32}P-orthophosphate$ before PMA or Con A stimulation. The migration patterns of the phosphorylated proteins of mitogen-treated rPBL in two dimensional electrophoretic fields were analyzed after autoradiography. The stimulation of the lymphocytes with PMA and Con A increased the phosphorylation of thirteen protein fractions. The phosphorylation intensities of the protein spots differ to the treatments of the cells with specific kinase inhibitors, H-7 and W-7. These protein fractions were grouped into 3 classes, namely, PKC-mediated, CaM kinase-mediated, and other kinase mediated proteins. The effect of the duration of the stimulation on the phosphorylated behaviors occurred concurrently, not sequentially, although each individual protein fraction had a different time for the peak phosphorylation during the stimulation period upto 30 minutes. The phosphoproteins found in the cytosolic soluble fraction were phosphorylated prior to those in the pellet, whose phosphorylations were sustained at a high level for over 10 minutes. The above results suggest that the early events in lymphocyte activation involve 3 different sets of proteins which are phosphorylated by CaM kinase, PKC and other kinases, and those kinases do not work sequentially, but rather, independently or cooperatively.
Aquaperin 4 (AQP4) is the mercurial water channel expressed abundantly in brain, especially the region related with cerebrospinal fluid reabsorption and osmoregulation. The primary structure of AQP4 water channel was elucidated but the molecular mechanism of AQP4 channel regulation is still unknown. To investigate the possible regulation of AQP4 water channel by phosphorylation via various protein kinases, osmotic water permeability of AQP4 expressed in Xenopus oocytes was measured by videomicroscopy technique. Forskolin (10 $\mu$M) did not affect osmotic water permeability of oocytes injected with AQP4 cRNA, excluding the regulation of AQP4 water cnannel by protein kinase A. Osmotic water permeability (P아래첨자) of AQP4-expressed oocytes was ingibited by the pretreatmeat of BAPTA/AM (up to 500$\mu$M), an intracellular Ca윗첨자 chelator, and calmidazolium (100$\mu$M), a specific Ca윗첨자/calmodulin antagonist, in a dose-dependent manner. The inhibition of osmotic water permeability (P아래첨자) by the calmidazolium treatment was completely reversed by the addition of calyculin A (0.1$\mu$M), a nonspecific phosphatase inhibitor. Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA), a protein kinase C activator, had biphasic effects on osmotic water permeability in AQP4 cRNA injected oocytes depending on its concentration; 21% increase by 100 nM PMA, 35% decrease by 1$\mu$M PMA. These effects were reversed with 2$\mu$M staurosporine, a nonspecific PKC inhibitor. These results suggest that phosphorylation of AQP4 water channel by Ca윗첨자/calmodulin kinase and protein kinase C might regulate the osmotic water permeability.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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