Fusarium moniliforme으로부터 순모세포벽 분해효소를 생산하고 분리, 정제하여 효소특성 및 protoplast 제조실험을 하였다. Ammonium nitrate를 0.2% 첨가한 Baker's yeast 배지에서 7일간 진탕배양으로 효소를 생산한 후 Ammonium sulfate로 분획하고 Sephadex(G-100) column chromatography하여 세개의 peak를 얻었다 첫 번째 peak는 proteolytic, lytic activity 및 laminarin 분해력가를 보였으며, 두 번째 Peak는 lytic activity와 laminarin 분해력가를 동시에 가지고 있었으며, 세 번째 peak는 lytic activity만을 가지고 있었다. 분리된 세개의 peak를 혼합하였을때 개개의 peak보다 훨씬 높은 역가을 나타내어 상승효과를 보였고 또한 환원제에 의한 효소력가의 상승효과도 있었다. protoplast 수율은 99.2%정도였다
The strain YCH-37, which produces yeast cell wall lytlc enzyme, was isolated from soil. From the microscopic observation, morphological and cultural characteristics, this strain was identified to fungus, Dicyma sp. So, we named this strain as Dicyma sp. YCH-37. The lytic enzyme effectively lysed Salmonella typhimurium among intact living bacteria and Torulopsis, Hansenula, Zygosaccharomyces among intact living yeast, as well as autoclaved yeast strains. The yeast cell wall lytic enzyme was succesively purified to 204 folds with 13% yields through yeast glucan affinity adsorption and DEAE-cellulose column chromatography. The enzyme was identified to monomeric protein with molecular weight of 25,000 daltons from the results of SDS-PAGE and gel filtration. The optimum pH and temperature for the yeast lytic activity were 8.0 and 50$\circ$C, respectively. The enzyme was stable up to 40$\circ$C, and between pH 4.0-pH 10.0.
Thousand actinomycetes and 50 soil samples were used for the isolation of microorganisms producing yeast cell wall lytic enzymes. Among 493 strains producing large clear zones on autolysed washed yeast (AWY), 117 strains were selected on living yeast cell agar plates. With the method of lytic activity, one strain (St-1702) was selected, which was temporarily identified as Streptomyces eurythermus. The optimal condition for enzyme production of this strain was partially determined as follows: incubation of the strain for 3 days at 30$\circ$C in the medium containing 2% freeze dried yeast cell, 1% glucose, 1% K$_{2}$HPO$_{4}$, 0.01% MgSO$_{4}$'7H$_{2}$O, 0.5% peptone, and 0.2% (NH$_{4}$)$_{2}$CO$_{3}$ with pH 7.0. The protoplast formation of yeast by using the enzyme produced by this strain was compared with commercial enzymes.
Dicyma sp. YCH-37이 생산하는 효모세포벽 용해효소의 성질을 검토한 결과, 각종 환원제와 금속이온에 대체로 안정하였고, guanidine-HCl을 제외한 여러 화학수식제에 대해서도 안정하였다. 배양시간, 전처리 및 배양조건에 따른 영향을 검토한 결과, 정지기 및 사멸기에 있는 효모보다는 대수증식기의 효모, 그리고 생효모에 비해 열처리된 효모가 더 잘 용균되었다. Butanol, acetone 등의 유기용매로 처리된 효모가 그렇지 않은 효모보다 용균도가 좋았으며, 0.5 M ammonium sulfate가 함유된 Yeast extract-Malt extract 배지에서 생육한 효모, 그리고 진탕배양한 효모보다 정치배양한 효모가 용균효소에 의해 더 잘 용균되었다. SDS, Triton X-100, ${\beta}-mercaptoethanol$, potassium chloride, sodium sulfite 등의 화학수식제를 효소반응액에 첨가하였을 때 기질 효모는 더 잘 용균되었다.
Cell lytic enzyme, 5'-phosphodiesterase, and AMP-deaminase were used to produce yeast extract as a natural seasoning from beer yeast cells. Prior to the addition of cell lytic enzyme, heat treatment was performed to increase the cell wall degradation` the optimum condition of the cell lytic enzyme was 50C at pH 7.0. The production yields by the enzymatic method and conventional autolysis method were 42% and 35%, respectively. The total quantity of 5'-nucleotides, GMP and IMP, produced by enzymatic method was increased by 45% than that by the conventional method. Futhermore, the operation time of enzymatic method was only 6.5 hrs, significantly reduced from 24 hrs of the conventional method.
Streptococcus mutans has the capacity of inducing dental caries. Thus, to develop a novel way of preventing dental caries, a cell wall hydrolase-producing strain was isolated and its characteristics were investigated. Among 200 alkalophilic strains isolated from soil, 8 strains exhibited lytic activities against Streptococcus mutans. However, strain YU5215 with the highest cell wall hydrolase activity was selected for further study. Strain YU5215 was identified as a novel strain of Bacillus based on analyzing its 16S rDNA sequence and Bergey's Manual of Systematic Bacteriology, and thus designated as Bacillus mutanolyticus YU5215. The optimal conditions for the production of the cell wall hydrolase from Bacillus mutanolyticus YU5215 consisted of glucose ($0.8\%$), yeast extract ($1.2\%$), polypeptone ($0.5\%$), $K_{2}HPO_{4}\;(0.1\%$), $MgSO_{4}{\cdot}7H_{2}O$ ($0.02\%$), and $Na_{2}CO_{3}\;(1.0\%$) at pH 10.0. Bacillus mutanolyticus YU5215 was cultured at 30^{circ}C for 72 h to produce the cell wall hydrolase, which was then purified by acetone precipitation and CM-agarose column chromatography. The molecular weight of the lytic enzyme was determined as 22,700 Da by SDS-PAGE. When the cell wall peptidoglycan of Streptococcus mutans was digested with the lytic enzyme, no increase in the reducing sugars was observed, while the free amino acids increased, indicating that the lytic enzyme had an endopeptidase-like property. The amino terminus of the cell wall peptidoglycan digested by the lytic enzyme was determined as a glutamic acid, while the lytic site of the lytic enzyme in the Streptococcus mutans peptidoglycan was identified as the peptide linkage of L-Ala and D-Glu.
1) 효모세포벽(酵母細胞壁) 용해활성(溶解活性)이 큰 미생물을 얻기 위하여 baker's yeast-peptone-bouillon agar 평판(平板)배지에서 투명하게 용해된 부위를 형성하는 균주(菌株)를 서울 및 경기지방의 토양 및 하수(下水)시료에서 156개 분리하였고 이들중 활성(活性)이 가장 큰 균주(菌株)로 K-42를 선발하여 Bacillus circulans로 동정(同定)하였다. 2) 균주(菌株) K-42에 의한 효모세포벽 용해효소의 생산을 보면 당류 첨가의 경우 배양 2일째에는 maltose>glucan>xylose>control의 순으로, 3일째에는 lactose>galactose>glucan>control의 순으로 나타났다. 무기 질소원의 경우는 배양2일째 ammonium acetat>sodium nitrate>control의 순으로, 3일째는 ammonium chloride>ammonium oxalate>control의 순으로 나타났으며 milk casein을 제외한 거의 모든 유기질소원은 배양 2일째 활성(活性)의 증가를 보였으나 3일째는 모두 감소하였다. 당류와 질소원의 배합첨가는 상승효과가 없었다. 3) 효소생산에 미치는 당류와 질소원의 첨가 효과는 배양기간 중 pH의 변화와 깊은 관계가 있었는 바 배양중 $pH\;7{\sim}8$을 계속 유지시켜 주면서 당류 또는 질소원을 첨가하면 높은 활성(活性)을 상당기간 계속 유지할 수 있었다. 4) K-42균주(菌株)가 분비(分泌)하는 세포벽(細胞壁) 용해효소의 작용최적(作用最適) 조건은 $pH\;7{\sim}8$, $60^{\circ}C$이었고 열처리(熱處理) 효모세포벽의 용해율은 65%이었다.
아가리쿠스(Agaricus blazei)버섯의 균사체 배양조건을 최적화하여 유효성분인 $\beta$-glucan의 생성을 극대화시키고자 하였다. 아가리쿠스 균사체 배양시 탄소원과 질소원의 농도 및 종류별 배지를 검토한 결과 배지조성은 glucose 5% (w/v), yeast extract 0.5% (w/v), malt extract 0.5% (w/v), $KH_2PO_4$ 0.1% (w/v), $MgSO_4{\cdot}7H_2O$ 0.05% (w/v)가 최적이었다. 30L 발효조에서의 배양 조건은 pH 5.0, $28^{\circ}C$, 1 vvm, 300 rpm에서 균사체의 생육과 $\beta$-glucan의 생성이 가장 효과적이었다. 위 조건 중에서 세포 외 $\beta$-glucan의 생성을 증가시 키기 위해 초기 glucose의 첨가량을 4%로 낮추어 glucose에 의한 균사체 성장 저해작용을 최소화하는 한편, 배양 70시간 시점에 glucose 3%, yeast extract 0.1%, malt extract 0.1%의 추가 배지를 첨가하여 배양함으로써 batch 배양에 의한 2.8 g/L에 비해 2배 정도 증가한 5.2 g/L의 세포 외 $\beta$-glucan을 얻을 수 있었다. 또한 균사체 내의 세포벽 $\beta$-glucan을 효과적으로 추출하기 위해 세포벽분해효소인 lytic enzyme과 단백분해효소인 bromelain의 연속적인 효소반응으로 추출량이 3.5 g/L로 증가하여 균사체의 단순 열수추출에 비해 약 4배의 추출 수율이 향상되었다.
Protoplast releasing mechanisms from Trichoderma koningii, fine structures of the released protoplsts, and their regeneration mode were studied by scanning and transmission electron microscopy. Two types of protoplast releasing mechanisms were observed. In one mechanism, cytoplasm emerged through a cell wall pore developed by cell lytic enzymes and formed a spherical protoplast. In the other mechanism, as the cell wall became progressively thinner, the inner cytoplasm partially rounded to form nonspherical bodies which became spherical protoplasts after being released into the enzyme solution. But, these two types of protoplast releasing mechanisms did not seem to be. mutually exclusive but could occur on the same mycelium simultaneously. And it appeared that cytoplasm which did not become a protoplast by the first mechanism could from a protoplast by the second mechanism. The preparations contained two types of protoplasts, released from different sites of the mycelia. Those released from younger mycelia had dense cytoplasm and small vesicles. Those released from the older mycelia had less dense cytoplasm and larger vacuoles. In the case of regeneration, before producing normal mycelia, most of the protoplasts assumed aberrant tube and yeast-like-forms. Normal mycelia were produced at the end of the yeastlike-forms and sometimes in the middle of the aberrant tube.
적색효모 세포벽 용해효소의 기질특이성을 밝히기 위해 기질로 사용가능한 다당을 screening하여 Rh.glutinis IFO 0695가 생산하는 mannan을 얻었다. 이 mannan의 구조는 $\beta$-1,3과 $\beta$-1,4 결합이 교대로 연결된 직쇄상의, 중합도 약 650인 수용성의 다당으로 밝혀졌다. 이 다당을 기질로하여 양 효소의 기질특이성을 조사한 결과, Bacillus생산효소는 $\beta$-1. 3, $\beta$-1. 4 mannan을 4당 또는 6당 단위로 가수분해하는 효소로서 그 절단점은 $\beta$-1, 4결합 이었다. 이 $\beta$-1,4 결합을 가수분해하기 위해서는 인접 결합이 $\beta$-1,3결합이어야만 하는 새로운 type의 $\beta$-1,4 mannauase이었다. 한편, Penicillium생산효소는 $\beta$-1, 3, $\beta$-1, 4 mannan의 $\beta$-1, 3결합을 2당 또는 4당의 단위로 가수분해하여 최종적으로는 2당을 생성하는 $\beta$-1, 3 mannanase의 일종이었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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