목적: Guinea pig heart의 ATP sensitive $K^{+}$ channel xenopus oocyte에 발현시켜 연구하고져 본 실험을 행하였다. 실험방법: 기니픽 심장으로부터 ,RNA를 분리하여 50ng/$\mu$l의 농도로 50nl를 xenopusdp 주입하였다. Xenpus oocyte에서 conventional electrode를 이용 막전휘를 측정하였고, pH selective 미세전극으로 세포내 pH를 측정하였다. 막전위에 미치는 potassium channel opener, blocker, KCN의 작용을 관찰하였다. 결과: 기니픽 심장 mRNA를 주입하거나 주입하지 않은 xenopus oocyte에서 $K^{+}$channel opener인 cromakalin, RP49356등은 과분극을 일으키지 못하였다. 그러나 세포내 ATP 감소제인 KCN은 농도 의존적으로 과분극을 일으켰으나 ,glibenclamide에 의해 차단되는 않았다. mRNA를 주입한 oocyte에서 Na-H 자극제인 NH$_4$Cl은 pH 변동을 일으켜 NA-H exchange를 expression 시켰다. 결론: Xenopus oocyte는 cromakalin등에 의해 open되는 $K^{+}$channel 은 없었고, 기니픽 심근의 ATP sensitive $K^{+}$channel로 expression 되지 않았으나 Na-H exchange 는 expression 됨을 알 수 있었다. KCN으로 open 되는 $K^{+}$channel이 있었으나 glibenclamide에는 차단되지 않는 channel이였다.
Xenopus oocyte을 이용하여 식물 aquaporin 단백질의 물 흡수 활성을 측정하기 위한 최적의 조건을 확립하기 위하여 애기장대의 AtPIP2-1유전자를 클로닝하여 cRNA 제작용 vector, buffer osmolarity, hypoosmotic shock 처리시간, 발현 단백질의 localization등을 검토한 결과, Xenopus ${\beta}$-globin 유전자의 5'과 3' UTR(untranlation region)'염기서열을 갖고 있는 pGEMHE vector가 단백질 생산에 더욱 효과적이며, 이 vector를 시용하였을 경우 hypoosomotic stress는 1/2ND buffer에서 6분간 처리시 가장 큰 차이를 볼 수 있었으며, 애기장대 AtPIP2-1단백질과 GFP를 결합시켜 발현시킬 경우 GFP가 plasmamembrane에 위치하는 것을 보아 올바른 subcelluar localization이 이루어지는 것을 확인할 수 있었다.
We have previously shown that oocyte maturation is induced by an immobilized progesterone, progesterone-3-carboxymethyloxime - bovine serum albumin conjugate (P-BSA) in Rana dybowskii. In this study, we confirmed the maturation inducing activity of P-BSA on Xenopus oocyte and examined the binding character of the immobilized progesterone on the surface of Xenopus oocytes after removal of the vitelline layer. P-BSA induced maturation of Xenopus oocytes but E-BSA failed to do so as observed in Rana. Binding of the immobilized progesterone, fluorescein isothiocyanate-labeled progesterone-3-0-carboxymethyloxime-BSA (P-BSA-FITC) on the devitellined oocytes surface was examined by fluorescence confocal microscopy. The binding affinity of P-BSA-FITC to the devitellined oocyte was higher than that of estrogen-BSA-FITC (E-BSA-FITC) or testosterone-BSA-FITC (T-BSA-FITC). The binding disappeared in the presence of excess free progesterone but not in the presence of free estrogen. Maximum binding occurred after two-hours of incubation with P-BSA-FITC at pH 7.5. Stronger binding occurred in oocytes at stage Vl than stage IV, and in vitro treatment of hCG enhanced the binding. Taken together, these results suggest that a specific receptor for progesterone exists on the plasma membrane of Xenopus oocytes and that progesterone acts initially on this putative receptors and triggers generation of membrane-mediated second messengers during the early stage of oocyte maturation In amphibians.
The effects of dimethyl sulfoxide (DMSO) were studied in two groups of Xenopus oocytes, one expressing ATP sensitive $K^+\;(K_{ATP})$ channel comprised of sulfonylurea receptor SUR1 and inwardly rectifying $K^+$ channel subunit Kir6.2, and the other expressing renal $K_{ATP}$ channel ROMK2. At concentrations of $0.3{\sim}10%$ (vol/vol) DMSO inhibited whole cell Kir6.2/SUR1 currents elicited by bath application of sodium azide (3 mM) in a concentration-dependent manner. The inhibition constant and Hill coefficient were 2.93% and 1.62, respectively. ROMK2 currents, however, was not affected significantly by DMSO. The results support the idea that DMSO inhibits $K_{ATP}$ channel expressed in Xenopus oocyte through a protein-specific mechanism(s) that remains to be further elucidated.
Xenopus oocyte is one of the widely used heterologous expression systems of ion channels for electrophysiological studies. Here we describe a new method in which cRNA produced by polymerase chain reaction (PCR) and in vitro transcription is injected to express ion channels in oocytes. This method enables us (1) to eliminate all or a part of the untranslated region of the cDNA and to replace it with a known sequence which helps increase the expression level in oocytes, and (2) to use the PCR product for in vitro transcription without subcloning. Using this method, the expression level of one of the neuronal nicotinic acetylcholine receptors (nAChRs) $\alpha$$_{6}$ subtype in oocytes was systematically increased by more than 100-fold, which was confirmed both by the $\alpha$-Bungarotoxin ($\alpha$,/TEX>Bgt) binding assay and the current measurement.t.
Intra-cellular drug uptake in Xenopus laevis oocyte has been elucidated using localized MR spectroscopy (MRS) and PFG NMR techniques at a 600 $MH_z$(Bruker, 14.1 T) NMR spectrometer. The localized MRS has been done with a homemade probe, and shows the intra-cellular uptake of nicotinamide. The self-diffusion of the molecule in Xenopus oocyte was obtained by PFG NMR technique. The measured data are well fitted with a linear combination of two exponential functions, which shows that there are two types of drug molecules, intra-and extra-cellular molecules. Diffusion coefficients of intra- and extra-cellular drug molecules are 3.7 $\times$$10^{-11}$$\m^{2}/s$and 6.4 $\times$$10^{-10}$$\m^{2}/s$, respectively. In the weighting factors there is shown that about 5% of drug molecule is inside the cells. These techniques can be used for drug screening in molecule-, cell-, and tissue-based preclinical test.
TRPV2 is a non-specific cation channel expressed in sensory neurons, and activated by noxious heat. Particularly, TRPV2 has six transmembrane domains and three ankyrin repeats. TRPV2 has been cloned from various species such as human, rat, and mouse. Oocytes of Xenopus laevis - an African clawed frog have been widely used for decades in characterization of various receptors and ion channels. The functional property of rat TRPV2 was also identified by this oocyte expression system. However, no TRPV2 orthologue of Xenopus laevis has been reported so far. Hence, we have focused to clone a TRPV2 orthologue of Xenopus laevis with the aid of bioinformatic tools. Because the genome sequence of Xenopus laevis is not available until now, a genome sequence of Xenopus tropicalis - a close relative species of Xenopus laevis - was used. After a number of bioinformatic searches in silico, a predicted full-length sequence of TRPV2 orthologue of Xenopus tropicalis was found. Based on this predicted sequence, various approaches such as RT-PCR and 5' -RACE technique were applied to clone a full length of Xenopus laevis TRV2. Consequently, a full-length Xenopus laevis TRPV2 was cloned from heart cDNA.
Recently, we have provided evidence that ginsenosides, the active components of Panax ginseng, utilize pertussis toxin (PTX)-insensitive $G{\alpha}_{q/11}-phospholipase\;C-{\beta}3(PLC-{\beta}3)$ signal transduction pathway for the enhancement of $Ca^{2+}-activated\;Cl^{-}$ current in the Xenopus oocyte (British J. Pharmacol. 132, 641-647, 2001; JBC 276, 48797-48802, 2001). Other investigators have shown that stimulation of receptors linked to $G{\alpha}-PLC$ pathway inhibits the activity of G proteincoupled inwardly rectifying $K^+$ (GIRK) channel. In the present study, we sought to determine whether ginsenosides influenced the activity of GIRK 1 and GIRK 4 (GIRK 1/4) channels expressed in the Xenopus oocyte, and if so, the underlying signal transduction mechanism. In oocyte injected with GIRK 1/4 channel cRNAs, bath-applied ginsenosides inhibited high potassium (HK) solution-elicited GIRK current $(EC_{50}:4.9{\pm}4.3\;{\mu}g/ml).$ Pretreatment of the oocyte with PTX reduced the HK solution-elicited GIRK current by $49\%,$ but it did not alter the inhibitory ginsenoside effect on GIRK current. Prior intraoocyte injection of cRNA(s) coding $G{\alpha}_q,\;G{\alpha}_{11}\;or\;G{\alpha}_q/G{\alpha}_{11},\;but\;not\;G{\alpha}_{i2}\;or\;G{\alpha}_{oA}$ attenuated the inhibitory ginsenoside effect. Injection of cRNAs coding $G{\beta}_{1{\gamma}2}$ also attenuated the ginsenoside effect. Similarly, injection of the cRNAs coding regulators of G protein signaling 1, 2 and 4 (RGS1, RGS2 and RGS4), which interact with $G{\alpha}_i\;and/or\;G{\alpha}_{q/11}$ and stimulates the hydrolysis of GTP to GDP in active GTP-bound $G{\alpha}$ subunit, resulted in a significant reduction of ginsenoside effect on GIRK current. Preincubation of GIRK channel-expressing oocyte in PLC inhibitor (U73122) or protein kinase C (PKC) inhibitor (staurosporine or chelerythrine) blocked the inhibitory ginsenoside effect on GIRK current. On the other hand, intraoocyte injection of BAPTA, a free $Ca^{2+}$ chelator, had no significant effect on the ginsenoside action. Taken together, these results suggest that ginsenosides inhibit the activity of GIRK 1/4 channel expressed in the Xenopus oocyte through a PTX-insensitive and $G{\alpha}_{q/11}$-,PLC-and PKC-mediated signal transduction pathway.
The effect of Korean Ginseng saponins (total saponin, PD saponin and PT saponin) on the serotonin type 3 receptor, which is known to be involved in nausea and vomiting following anticancer chemotherapy or the general anesthesia, was investigated. after in vitro transcribed recombinant serotonin type 3 receptor in the Xenopus laevis oocyte, classic two electrodes voltage clamp technique was used. All of ginseng saponins inhibited the response of the agonist, serotonin, on the serotonin type 3 receptor in a dose-dependent manner. PT saponin showed to have the inhibitory effect more than 2 times as potent as PD saponin. Total saponin shifted the serotonin dose response plot to the right (EC$\_$50/, 0.70$\pm$0.17 $\mu$M into 3.57$\pm$1.42 $\mu$M, and Hill coefficient, 2.14$\pm$0.60 into 1.52$\pm$1.00). Ginseng saponin did not change the reversal potential (∼0 mV) of serotonin type 3 receptor. These results suggest that Korean ginseng saponin may have the inhibitory effect on serotonin type 3 receptor.
The acid-bible subunit (ALS) associates with the insulinlike growth factor (IGF)-I or II, and the IGF binding protein-3 (IGFBP-3) in order to form a 150-kD complex in the circulation. This complex may regulate the serum IGFs by restricting them in the vascular system and promoting their endocrine actions. Little is known about how ALS binds to IGFBP3, which connects the IGFs to ALS. Xenopus oocyte was utilized to study the function of ALS in assembling IGFs into the ternary complexes. Xenopus oocyte was shown to correctly translate in vitro transcribed mRNAs of ALS and IGFBP3. IGFBP3 and ALS mRNAs were injected in a mixture, and their products were immunoprecipitated by antisera against ALS and IGFBP3. Contrary to traditional reports that ALS interacts only with IGF-bound IGFBP3, this study shows that ALS is capable of forming a binary complex with IGFBP3 in the absence of IGF When cross-linked by disuccinimidyl suberate, the band that represents the ALS-IGFBP3 complex was evident on the PAGE. IGFBP3 movement was monitored according to the distribution between the hemispheres. Following a localized translation in the vegetal hemisphere, IGFBP3 remained in the vegetal half in the presence of ALS. However, the mutant IGFBP3 freely diffused into the animal half, despite the presence of ALS, which is different from the wild type IGFBP3. This study, therefore, suggests that ALS may play an important role in sequestering IGFBP3 polypeptides via the intermolecular aggregation. Studies using this heterologous model will lead to a better understanding of the IGFBP3 and ALS that assemble into the ternary structure and circulate the IGF system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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