Ca movements during the late plateau phase in rabbit atrium implicate Na-Ca exchange. In single atrial cells isolated from the rabbit the properties of the inward current of Na-Ca exchange were investigated using the whole cell voltage clamp technique. The inward currents were recorded during repolarization following brief 2 ms depolarizing pulse to +40 mV from a holding potential of -70 mV. Followings are the results obtained: 1) When stimulated every 30 sec, the inward currents were activated and reached peak values $6{\sim}12\;ms$ after the beginning of depolarizing pulse. The mean current amplitude was 342 pA/cell. 2) The current decayed spontaneously from the peak activation and the timecourse of the relaxation showed two different phases: fast and slow phase. 3) The recovery of the inward current was tested by paired pulse of various interval. The peak current recovered exponentialy with a time course similar to that of Ca current recovery. 4) Relaxation timecourse was also affected by pulse interval and time constant was reduced almost linearly according to the decrease of pulse interval between 30 sec and 1 sec. 5) The peak inward current was increased by long prepulse stimulation, Bay K, isoprenaline or c-AMP. 6) The relaxation time constant of the inward current was prolonged by Bay K or c-AMP, and shortened by isoprenaline. From the above results, it could be concluded that increase of the calcium current potentiates and prolongs intracellular calcium transients, while shortening of the timecourse by isoprenaline or short interval stimulations might be due to the facilitation of Ca uptake by SR.
The spinal dorsal horn is the area where primary afferent fibers terminate and cutaneous sensory information is Processed. A number of putative neurotransmitter substances, including excitatory and inhibitory amino acids and peptides, are present in this region and sites and cellular mechanisms of their actions have been a target of numerous studies. In this study, single neurons were acutely isolated and the properties of whole cell current and responses to excitatory and inhibitory neurotransmitters were studied by the patch clamp method. Young rats (7-14 days) were anesthetized with diethyl-ether, and the lumbar spinal cord was excised and cut transversely at a thickness of 30$\mu\textrm{m}$ by Vibroslicer. The treatment of spinal slices with low concentration of proteases (pronase and thermolysin 0.75 mg/$m\ell$) and mechanical dissociation yielded isolated neurons with near intact morphology. Multipolar, ellipsoidal and bipolar, and pyramidal cells were shown. By applying step voltage pulses to neurons held at -70 mV, two types of inward currents and one outward currents observed. The fast activating and inactivating inward current was the Na$\^$+/ current because of its fast kinetics and blocking by 0.5${\mu}$M TTX, a specific blocker of Na$\^$+/ channel. The second type of inward currents were sustained. Based on their kinetics and current-voltage relations, it was likely that the second type of inward current was the voltage-dependent Ca$\^$2+/ current. In the presence of TTX, the steady-state currents mainly represented outward K$\^$+/ current which looked like the delayed rectifier K$\^$+/ current. In addition, the membrane currents produced by agonist of excitatory amino acid (EAA) receptor and the endogenous transmitter candidate L-glutamate were recorded in isolated whole-cell voltage clamped neurons as well as responses to inhibitory amino acids (${\gamma}$-amino butyric acid, glycine). Drugs were applied by a method that allows complete exchange of the solution within 1 sec; an infinite number of solutions can be applied to a single cell.
Photovoltaic module consists of serially connected solar cell which has low voltage characteristics. But, the other way, the whole current flow of PV module is restricted by lowest current of one solar cell. For the experiment, we make PV module composing the solar cells that have short circuit current difference of 0%, 1%, 3% and 5%. Using Light I-V and Dark I-V measurements, electrical characteristic parameters like Isc(short-circuit current), Voc(open-circuit voltage), Rs(series resistance), Rsh(shunt resistance) are analyzed. PV module of low current characteristics has electrical stress from other modules. And, such a module has a tendency of hot-spot suffering which leads degradation.
Park, Choon-Ok;So, In-Suk;Ho, Won-Kyung;Kim, Woo-Gyeum;Earm, Yung-E
The Korean Journal of Physiology
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제26권1호
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pp.27-35
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1992
We used the whole cell patch clamp technique to examine the ionic basis for the tail current after depolarizing pulse in single atrial myocytes of the rabbit. We recorded the tail currents during various repolarizations after short depolarizing pulse from a holding potential of -70 mV. The potassium currents were blocked by external 4-aminopyridine and replacement of internal potassium with cesium. The current was reversed to the outward direction above +10 mV. High concentrations of intracellular calcium buffer inhibited the activation of the current. Diltiazem and ryanodine blocked it too. These data suggest that the current is activated by intracellular calcium released from sarcoplasmic reticulumn. When the internal chloride concentration was increased, the inward tail current was increased. The current was partially blocked by the anion transport blocker niflumic acid. The current voltage curve of the niflumic acid sensitive current component shows outward rectification and is well fitted to the current voltage curve of the theoretically predicted chloride current calculated from the constant field equation. The currents recorded in rabbit atrial myocytes, with the method showing isolated outward Na Ca exchange current in ventricular cells of the guinea pig, suggested that chloride conductance could be activated with the activation of Na/ca exchange current. From the above results it is concluded that a chloride sensitive component which is activated by intracellular calcium contributes to tail currents in rabbit atrial cells.
In order to elucidate the properties of the background current whole cell patch clamp studies were performed in rabbit ventricular cells. Ramp pulses of ${\pm}80\;mV$ from holding potential of 40 mV(or 20 mV) at the speed of 0.8 V/sec were given every 30 sec(or 10 sec) and current-voltage diagrams(I-V curve) were obtained. For the activation of the background current isoprenaline, adenosine 3',5'-cyclic monophosphate(dBcAMP), guanosine 3',5'-cyclic monophosphate(cGMP), and $N^6$-2'-o-dibutyryladenosine 3',5'-cyclic monophosphate(dBcAMP) were applied after all known current systems were blocked with 2mM Ba, 1 mM Cd ,5 mM Ni, 10 ${\mu}M$ diltiazem, 10 ${\mu}m$ ouabain, and 20 mM tetraethylammonium(TEA). The conductance of background current in control was $0.65{\pm}0.69$ nS at 0 mV, its I-V curves was almost linear and reversed near 50 mV. When there was no taurine in pipette solution, isoprenaline hardly activated the background current but when taurine existed in pipette solution, isoprenaline activated the larger background current. Cyclic AMP or cyclic GMP alone had little effect on the activation of the background current, while cGMP potentiated cGMP effect. When the background current was activated with cGMP and cAMP, isoprenaline could not further increased the background current. The background current activated by isoprenaline depended on extracellular $Cl^-$ concentration and its reversal potential was shifted according to chloride equilibrium potential. The change of extracellular $Na+$ concentration had little effect on reversal potential of the background current activated by isoprenaline.
Most of voltage operated $Ca^{2+}$ channels can be divided into three types (T-, N-, and L-type), according to the electrical and pharmacological properties. Their distribution is closely related to cell specific functions. Properties of the voltage activated $Ca^{2+}$ current in mouse eggs were examined to classify channel types and to deduce the function by using whole cell voltage clamp technique. $Ca^{2+}$ currents appeared below -40 mV and reached a maximum at -15 mV (half maximum was -31 mV), then decayed rapidly (inactivation time constant ${\tau}=28.2{\pm}9.59$ ms at -10 mV within 50 ms after the onset of step depolarization. Activation and inactivation of the $Ca^{2+}$ channel was steeply dependent on voltage, in a relatively low range of $-70\;mV{\sim}-10 mV,$ half maximum of activation was -31 mV and that of inactivation was -39 mV, respectively. This current was not decreased significantly by nifedipine, a specific dihydropyridine $Ca^{2+}$ channel blocker in the range of $1\;{\mu}M\;to\;100{\mu}M.$ The inhibitory effect of $Ni^{2+}\;on\;Ca^{2+}$ current was greater than that of $Cd^{2+}.$ The conductance of $Ba^{2+}$ through the channel was equal to or lower than that of $Ca^{2+}$ These results implied that $Ca^{2+}$ current activated at a lower voltage in the mouse egg is carried via a $Ca^{2+}$ channel with similar properties that of the T-type channel.
In order to investigate the effect of intracellular cyclic GMP on calcium current the whole-cell patch clamp technique with internal perfusion method was used in isolated ventricular myocytes of the rabbit. Cyclic GMP, 8-bromo-cyclic GMP, cyclic AMP, isoprenaline and forskolin were perfused into cells and their effects on calcium current were analysed by applying depolarizing step pulses of + 10 mV in amplitude far 300 msec from holding potential of - 40 mV. Not only cyclic AMP $(100\;{\mu}M)$ but also cyclic GMF $(100\;{\mu}M)$ increased the basal calcium current. 8-Bromo-cyclic GMP $(100\;{\mu}M)$, a good stimulator of the cyclic GMP-dependent protein kinase, also increased the basal calcium current and its peak amplitude of calcium current was larger than that in the presence of cyclic AMP or cyclic GMP alone. In the presence of $100\;{\mu}M$ cyclic GMP or $100\;{\mu}M$ 8-bromo-cyclic GMP, already augmented calcium current was potentiated by intracellular application of $100\;{\mu}M$ cyclic AMP or $1\;{\mu}M$ isoprenaline or $1\;{\mu}M$ forskolin. In the presence of cyclic GMP, acetylcholine reduced the calcium current only when the calcium current was increased by isoprenaline. From the above results it could be concluded that intracellular perfusion with cyclic GMP increases the basal calcium current via a mechanism involving a cyclic GMP-dependent protein kinase.
In order to investigate the effect of intracellular cyclic GMP on the calcium channel, whole cell patch clamp technique with internal perfusion method was used in the single ventricular myocytes of the rabbit. Cyclic GMP, cGMP analogues, cAMP, isopernaline and forskolin were perfused into cells and their effects on the calcium current were analysed by applying depolarizing step pulse of 10 mV in amplitude for 200 msec from holding potential of -40 mV. Calcium currents usually activated from -30 mV and then reached a peak at +10 mV. Amplitude of the calcium current was standardized with membrane capacitance, 50 pF. Peak amplitude at +10 mV in control was -0.15 nA/50pF. When 100 mM cAMP was applied from the pipette, peak amplitude of calcium current increased to -0.32 nA and addition of 1 mM isoprenaline further increased its amplitude. In the presence of cGMP it alone also produced an increase of the calcium current to -0.52 nA/50pF and addition of isoprenaline or forskolin increased its magnitude to -[0.55~0.95] nA/50pF. Simultaneous application of cGMP and cAMP increased the calcium current to -0.67 nA/50pF. Among the cGMP analogues, 8-Br-cGMP was the most potent stimulant for the calcium current activation. From the above results it could be concluded tlat cGMP increases the calcium current not through cAMP dependent protein kinase nor cAMP dependent phosphodiesterase pathway, but through independent phosphorylation pathway, possibly cGMP dependent protein kinase pathway.
The effects of the novel compound GS-386 on the calcium current were investigated in rabbit atrial myocytes. The calcium current was recorded during various depolarizations of 200 ms duration from a holding potential of -40 mV using the whole cell patch clamp technique. The calcium current was activated from -30 mV, reached maximum amplitude at +10 mV and almost disappeared at +50 mV. Superfusion of GS-386 led to a reduction of the calcium current amplitude dose-dependently and $ED_{50}$ was $2.5{\times}10^{-7}M$. But the dependence of the calcium current on the membrane potential was not altered by GS-386. The inactivation of the calcium currents showed single exponential curves in both before and after application of GS-386. The inactivation time constants before and after application of GS-386 were almost the same(35 ms and 32.5 ms). The steady-state inactivation curve of the calcium current was not shifted by GS-386. The calcium currents both before and after application of GS-386 recovered completely in 1 sec and the recovery time constants were about 200 ms in both cases. From the above results it is concluded that the novel compound GS-386 has calcium antagonistic property decreasing the calcium current.
Bifidobacteria have been previously shown to stimulate the immune functions and cytokine production in macrophages and T-lymphocytes. Accordingly, the RAW 264.7 murine macrophage cell line was used to assess the effects of Bifidobacterium on the proliferation and cytoskeleton reorganization of the cells. Cytokine production after exposure to Bifidobacterium was also monitored in both whole cells and cell-free extracts. When RAW 264.7 cells were cultured for 24 h in the presence of heat-killed Bifidobacterium bifidum BGN4, the proliferation of macrophages was slowed down in a dose-dependent manner and cell differentiation was observed by staining with the actin-specific fluorescent dye, rhodamin-conjugated phalloidin. Although EL-4 cells, a T-cell line, stimulated RAW 264.7 cells to produce TNF-${\alpha}$ and IL-6, the stimulatory activity of B. bifidum BGN4 decreased as the EL-4 cell number increased. When disrupted and fractionated BGN4 was used, the whole cell fraction was more effective than the other fractions for the TNF-${\alpha}$ production. In contrast, the cell-free extract exhibited the highest IL-6 production level among the fractions, which was evident even at a $1{\mu}g/ml$ concentration. The current results demonstrate that Bifidobacterium induced differentiation of the macrophages from the fast proliferative stage and that the cytokine production was differentially induced by the whole cells and cell-free extracts. The in vitro approaches employed herein are expected to be useful in further characterization of the effects of bifidobacteria with regards to gastrointestinal and systemic immunity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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