Park, Seojin;Kang, Minji;Heo, Ryeon;Mun, Seo-Yeong;Park, Minju;Han, Eun-Taek;Han, Jin-Hee;Chun, Wanjoo;Park, Hongzoo;Park, Won Sun
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.26
no.5
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pp.397-404
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2022
Fesoterodine, an antimuscarinic drug, is widely used to treat overactive bladder syndrome. However, there is little information about its effects on vascular K+ channels. In this study, voltage-dependent K+ (Kv) channel inhibition by fesoterodine was investigated using the patch-clamp technique in rabbit coronary artery. In whole-cell patches, the addition of fesoterodine to the bath inhibited the Kv currents in a concentration-dependent manner, with an IC50 value of 3.19 ± 0.91 μM and a Hill coefficient of 0.56 ± 0.03. Although the drug did not alter the voltage-dependence of steady-state activation, it shifted the steady-state inactivation curve to a more negative potential, suggesting that fesoterodine affects the voltage-sensor of the Kv channel. Inhibition by fesoterodine was significantly enhanced by repetitive train pulses (1 or 2 Hz). Furthermore, it significantly increased the recovery time constant from inactivation, suggesting that the Kv channel inhibition by fesoterodine is use (state)-dependent. Its inhibitory effect disappeared by pretreatment with a Kv 1.5 inhibitor. However, pretreatment with Kv2.1 or Kv7 inhibitors did not affect the inhibitory effects on Kv channels. Based on these results, we conclude that fesoterodine inhibits vascular Kv channels (mainly the Kv1.5 subtype) in a concentration- and use (state)-dependent manner, independent of muscarinic receptor antagonism.
Tramadol is an opioid analog used to treat chronic and acute pain. Intradermal injections of tramadol at hundreds of millimoles have been shown to produce a local anesthetic effect. We used the whole-cell patch-clamp technique in this study to investigate whether tramadol blocks the sodium current in HEK293 cells, which stably express the pain threshold sodium channel Nav1.7 or the cardiac sodium channel Nav1.5. The half-maximal inhibitory concentration of tramadol was 0.73 mM for Nav1.7 and 0.43 mM for Nav1.5 at a holding potential of -100 mV. The blocking effects of tramadol were completely reversible. Tramadol shifted the steady-state inactivation curves of Nav1.7 and Nav1.5 toward hyperpolarization. Tramadol also slowed the recovery rate from the inactivation of Nav1.7 and Nav1.5 and induced stronger use-dependent inhibition. Because the mean plasma concentration of tramadol upon oral administration is lower than its mean blocking concentration of sodium channels in this study, it is unlikely that tramadol in plasma will have an analgesic effect by blocking Nav1.7 or show cardiotoxicity by blocking Nav1.5. However, tramadol could act as a local anesthetic when used at a concentration of several hundred millimoles by intradermal injection and as an antiarrhythmic when injected intravenously at a similar dose, as does lidocaine.
Seon Ah Park;Thao Thi Phuong Nguyen;Soo Joung Park;Seong Kyu Han
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.28
no.1
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pp.73-81
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2024
The substantia gelatinosa (SG) within the trigeminal subnucleus caudalis (Vc) is recognized as a pivotal site of integrating and modulating afferent fibers carrying orofacial nociceptive information. Although naringenin (4',5,7-thrihydroxyflavanone), a natural bioflavonoid, has been proven to possess various biological effects in the central nervous system (CNS), the activity of naringenin at the orofacial nociceptive site has not been reported yet. In this study, we explored the influence of naringenin on GABA response in SG neurons of Vc using whole-cell patch-clamp technique. The application of GABA in a bath induced two forms of GABA responses: slow and fast. Naringenin enhanced both amplitude and area under curve (AUC) of GABA-mediated responses in 57% (12/21) of tested neurons while decreasing both parameters in 33% (7/21) of neurons. The enhancing or suppressing effect of naringenin on GABA response have been observed, with enhancement occurring when the GABA response was slow, and suppression when it was fast. Furthermore, both the enhancement of slower GABA responses and the suppression of faster GABA responses by naringenin were concentration dependent. Interestingly, the nature of GABA response was also found to be sex-dependent. A majority of SG neurons from juvenile female mice exhibited slower GABA responses, whereas those from juvenile males predominantly displayed faster GABA responses. Taken together, this study indicates that naringenin plays a partial role in modulating orofacial nociception and may hold promise as a therapeutic target for treating orofacial pain, with effects that vary according to sex.
Park, Choon-Ok;Kang, Young-Jin;Lee, Hoi-Young;Chang, Ki-Churl
The Korean Journal of Pharmacology
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v.31
no.3
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pp.279-284
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1995
The aim of the present study was to know whether exogenously administered nitric oxide (NO) may differently modulate muscle mechanics between heart and aorta. We used PIANO method to generate NO. In isolated rat atrial tissues, neither heart rate nor contractility was affected by PIANO $(STZ,\;30{\sim}100\;{\mu}M)$. Only high concentration $(100\;{\mu}M)$ of 8-bromo cyclic GMP slightly depressed cardiac contractility. However, the same concentrations of 8-Br cGMP and PIANO significantly relaxed the rat thoracic aorta contracted with phenylephrine $(0.1\;{\mu}M)$. In isolated rabbit cardiac atrial myocytes, the amplitude of calcium currents were decreased in the whole voltage range by the presence of streptozotocin, which was further potentiated by UV light. Calcium currents were also decreased in those preparations treated with bradykinin, nitroprusside and 8-Br cGMP. These findings suggest that exogenous NO may modulate calcium current in cardiac myocyte. However, it remains why this does not affect myocardial contractility and heart rate. We concluded that NO may differently regulate calcium signal between aorta and heart muscle.
The interstitial cells of Cajal (ICCs) are the pacemaker cells in gastrointestinal tract and generate electrical rhythmicity in gastrointestinal muscles. Therefore, ICC may be modulated by endogenous agents such as neurotransmitter, hormones, and prostaglandins (PGs). In the present study, we investigated the effects of prostaglandins, especially $PGE_2$, on pacemaker currents in cultured ICCs from murine small intestine by using whole-cell patch clamp techniques. ICCs generated spontaneous slow waves under voltage-clamp conditions and showed a mean amplitude of $-452{\pm}39\;pA$ and frequency of $18{\pm}2$ cycles/min (n=6). Treatments of the cells with $PGE_2$$(1\;{\mu}M)$ decreased both the frequency and amplitude of the pacemaker currents and increased the resting currents in the outward direction. $PGE_2$ had only inhibitory effects on pacemaker currents and this inhibitory effect was dose-dependent. For characterization of specific membrane EP receptor subtypes, involved in the effects of $PGE_2$ on pacemaker currents in ICCs, EP receptor agonists were used: Butaprost $(1\;{\mu}M)$, $EP_2$ receptor agonist, reduced the spontaneous inward current frequency and amplitude in cultured ICCs (n=5). However sulprostone $(1\;{\mu}M)$, a mixed $EP_1$ and $EP_3$ agonist, had no effects on the frequency, amplitude and resting currents of pacemaker currents (n=5). SQ-22536 (an inhibitor of adenylate cyclase; $100\;{\mu}M$) and ODQ (an inhibitor of guanylate cyclase; $100\;{\mu}M$) had no effects on $PGE_2$ actions of pacemaker currents. These observations indicate that $PGE_2$ alter directly the pacemaker currents in ICCs, and that the $PGE_2$ receptor subtypes involved are the $EP_2$ receptor, independent of cyclic AMP- and GMP-dependent pathway.
In this study we determined whether or not 5-hydroxytryptamine (5-HT) has an effect on the pacemaker activities of interstitial cells of Cajal (ICC) from the mouse small intestine. The actions of 5-HT on pacemaker activities were investigated using a whole-cell patch-clamp technique, intracellular $Ca^{2+}$ ($[Ca^{2+}]_i$) analysis, and RT-PCR in ICC. Exogenously-treated 5-HT showed tonic inward currents on pacemaker currents in ICC under the voltage-clamp mode in a dose-dependent manner. Based on RT-PCR results, we found the existence of 5-$HT_{2B,\;3,\;4,\;and\;7}$ receptors in ICC. However, SDZ 205557 (a 5-$HT_4$ receptor antagonist), SB 269970 (a 5-$HT_7$ receptor antagonist), 3-tropanylindole - 3 - carboxylate methiodide (3-TCM; a 5-$HT_3$ antagonist) blocked the 5-HT-induced action on pacemaker activity, but not SB 204741 (a 5-$HT_{2B}$ receptor antagonist). Based on $[Ca^{2+}]_i$ analysis, we found that 5-HT increased the intensity of $[Ca^{2+}]_i$. The treatment of PD 98059 or JNK II inhibitor blocked the 5-HT-induced action on pacemaker activity of ICC, but not SB 203580. In summary, these results suggest that 5-HT can modulate pacemaker activity through 5-$HT_{3,\;4,\;and\;7}$ receptors via $[Ca^{2+}]_i$ mobilization and regulation of mitogen-activated protein kinases.
Interstitial cells of Cajal (ICCs) are the pacemaking cells in the gastrointestinal (GI) muscles that generate the rhythmic oscillation in membrane potentials known as slow waves. In the present study, we investigated the effects of mirtazapine, a noradrenergic and serotonergic antidepressant, on pacemaking potential in cultured ICCs from the murine small intestine. The whole-cell patch-clamp configuration was used to record pacemaker potential in cultured ICCs. Mirtazapine induced pacemaker potential depolarizations in a concentration-dependent manner in the current clamp mode. Y25130 (a 5-HT3 receptor antagonist), RS39604 (a 5-HT4 receptor antagonist), and SB269970 (a 5-HT7 receptor antagonist) had no effects on mirtazapine-induced pacemaker potential depolarizations. Also, methoctramine, a muscarinic M2 receptor antagonist, had no effect on mirtazapine-induced pacemaker potential depolarizations, whereas 4-diphenylacetoxy-N-methyl-piperidine methiodide (4-DAMP), a muscarinic M3 receptor antagonist, inhibited the depolarizations. When guanosine 5'-[β-thio] diphosphate (GDP-β-S; 1 mM) was in the pipette solution, mirtazapine-induced pacemaker potential depolarization was blocked. When an external Ca2+ free solution or thapsigargin, a Ca2+-ATPase inhibitor of the endoplasmic reticulum, was applied, the generation of pacemaker potentials disappeared, and under these conditions, mirtazapine induced pacemaker potential depolarizations. In addition, protein kinase C (PKC) inhibitor, calphostin C, and chelerythrine inhibited mirtazapine-induced pacemaker potential depolarizations. These results suggest that mirtazapine regulates pacemaker potentials through muscarinic M3 receptor activation via a G protein-dependent and an external or internal Ca2+-independent PKC pathway in the ICCs. Therefore, mirtazapine can control GI motility through ICCs.
The interstitial cells of Cajal (ICCs) are the pacemaker cells in the gastrointestinal (GI) tract. In the present study, the effects of olanzapine, an atypical antipsychotic agent, on pacemaker potentials in cultured ICCs from the small intestine of the mouse were investigated. The whole-cell patch-clamp configuration was used to record pacemaker potentials from cultured ICCs. Olanzapine produced pacemaker depolarizations in a concentration-dependent manner in current clamp mode. Methoctramine, a muscarinic $M_2$ receptor antagonist, did not inhibit olanzapine-induced pacemaker depolarizations, whereas 4-diphenylacetoxy-N-methylpiperidine methiodide (4-DAMP) muscarinic $M_3$ receptor antagonist did inhibit it. When guanosine 5'-[${\beta}$-thio] diphosphate (GDP-${\beta}$-S; 1 mM) was in the pipette solution, olanzapine-induced pacemaker depolarization was blocked. Also, low $Na^+$ solution externally eliminated the generation of pacemaker potentials and inhibited the olanzapine-induced pacemaker depolarizations. Additionally, the nonselective cation channel blocker, flufenamic acid, inhibited the olanzapine-induced pacemaker depolarizations. Pretreatment with U-73122, an active phospholipase C (PLC) inhibitor, also eliminated the generation of pacemaker potentials and suppressed the olanzapine-induced pacemaker depolarizations. These results suggested that olanzapine modulates the pacemaker potentials through muscarinic $M_3$ receptor activation by G protein-dependent external $Na^+$ and PLC pathway in the ICCs. Therefore, olanzapine could affect intestinal motility through ICCs.
Kim, Kyung-Soo;Shin, Dong-Hoon;Nam, Joo-Hyun;Park, Kyung-Sun;Zhang, Yin-Hua;Kim, Woo-Kyung;Kim, Sung-Joon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.14
no.6
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pp.419-425
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2010
Mast cells are activated by specific allergens and also by various nonspecific stimuli, which might induce physical urticaria. This study investigated the functional expression of temperature sensitive transient receptor potential vanilloid (TRPV) subfamily in the human mast cell line (HMC-1) using whole-cell patch clamp techniques. The temperature of perfusate was raised from room temperature (RT, $23{\sim}25^{\circ}C$) to a moderately high temperature (MHT, $37{\sim}39^{\circ}C$) to activate TRPV3/4, a high temperature (HT, $44{\sim}46^{\circ}C$) to activate TRPV1, or a very high temperature (VHT, $53{\sim}55^{\circ}C$) to activate TRPV2. The membrane conductance of HMC-1 was increased by MHT and HT in about 50% (21 of 40) of the tested cells, and the I/V curves showed weak outward rectification. VHT-induced current was 10-fold larger than those induced by MHT and HT. The application of the TRPV 4 activator $3{\alpha}$-phorbol 12,13-didecanoate ($4{\alpha}$ PDD, $1\;{\mu}M$) induced weakly outward rectifying currents similar to those induced by MHT. However, the TRPV3 agonist camphor or TRPV1 agonist capsaicin had no effect. RT-PCR analysis of HMC-1 demonstrated the expression of TRPV4 as well as potent expression of TRPV2. The $[Ca^{2+}]_c$ of HMC-1 cells was also increased by MHT or by $4{\alpha}$ PDD. In summary, our present study indicates that HMC-1 cells express $Ca^{2+}$-permeable TRPV4 channels in addition to the previously reported expression of TRPV2 with a higher threshold of activating temperature.
Human cardiac fibroblasts (HCFs) have various voltage-dependent $K^+$ channels (VDKCs) that can induce apoptosis. Hydrogen peroxide ($H_2O_2$) modulates VDKCs and induces oxidative stress, which is the main contributor to cardiac injury and cardiac remodeling. We investigated whether $H_2O_2$ could modulate VDKCs in HCFs and induce cell injury through this process. In whole-cell mode patch-clamp recordings, application of $H_2O_2$ stimulated $Ca^{2+}-activated$$K^+$ ($K_{Ca}$) currents but not delayed rectifier $K^+$ or transient outward $K^+$ currents, all of which are VDKCs. $H_2O_2-stimulated$$K_{Ca}$ currents were blocked by iberiotoxin (IbTX, a large conductance $K_{Ca}$ blocker). The $H_2O_2-stimulating$ effect on large-conductance $K_{Ca}$ ($BK_{Ca}$) currents was also blocked by KT5823 (a protein kinase G inhibitor) and 1 H-[1, 2, 4] oxadiazolo-[4, 3-a] quinoxalin-1-one (ODQ, a soluble guanylate cyclase inhibitor). In addition, 8-bromo-cyclic guanosine 3', 5'-monophosphate (8-Br-cGMP) stimulated $BK_{Ca}$ currents. In contrast, KT5720 and H-89 (protein kinase A inhibitors) did not block the $H_2O_2-stimulating$ effect on $BK_{Ca}$ currents. Using RT-PCR and western blot analysis, three subtypes of $K_{Ca}$ channels were detected in HCFs: $BK_{Ca}$ channels, small-conductance $K_{Ca}$ ($SK_{Ca}$) channels, and intermediate-conductance $K_{Ca}$ ($IK_{Ca}$) channels. In the annexin V/propidium iodide assay, apoptotic changes in HCFs increased in response to $H_2O_2$, but IbTX decreased $H_2O_2$-induced apoptosis. These data suggest that among the VDKCs of HCFs, $H_2O_2$ only enhances $BK_{Ca}$ currents through the protein kinase G pathway but not the protein kinase A pathway, and is involved in cell injury through $BK_{Ca}$ channels.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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