There is evidence that noradrenaline enhances spontaneous contractions dose-dependently in guinea-pig antral circular muscle. To investigate the mechanism of this excitatory action, slow waves and membrane currents were recorded using conventional microelectrode techniques in muscle strips and the whole cell patch clamp technique in isolated gastric myocytes. On recording slow waves, noradrenaline $(10^{-5}\;M)$ induced the hyperpolarization of the membrane potential, although the shape of the slow waves became tall and steep. Also, spike potentiaIs occurred at the peaks of slow waves. These changes were completely reversed by administration of phentolamine $(10^{-5}\;M),\;an\;{\alpha}-adrenoceptor$ blocker. Noradrenaline-induced hyperpolarization was blocked by apamin $(10^{-7}\;M)$, a blocker of a class of $Ca^{2+}\;-dependent\;K^+$ channels. To investigate the mechanisms for these effects, we performed whole cell patch clamp experiments. Norndrenaline increased voltage-dependent $Ca^{2+}$ currents in the whole range of test potentials. Noradrenaline also increased $Ca^{2+}\;-dependent\;K^+$\;currents, and this effects was abolished by apamin. These results suggest that the increase in amplitude and the generation of spike potentials on slow waves was caused by the activation of voltage-dependent $Ca^{2+}$ channel via adrenoceptors, and hyperpolarization of the membrane potential was mediated by activation of apamin-sensitive $Ca^{2+}\;-dependent\;K^+\;channels$.
The electrophysiological properties of the inward current contributing to the late plateau phase of the action potential were investigated using the whole cell clamp technique and intracellular dialysis in single atrial cells isolated from the rabbit heart. The inward current was activated by various repolarizing pulses after a brief depolarizing pulse to +40 mV for 2 ms and its time course was similar to that of the late plateau of the action potential. The current was fully activated above the potential of -40 mV and abolished by intracellular EGTA. Ryanodine of $1{\mu}M$ also abolished the late plateau and the inward current. Reduced $Na_o\;to\;30%\;and\;20\;mM\;Na_1$ diminished the late plateau together with the inward current. Diltiazem blocked the activation of the current and Ni in the concentration of $40{\sim}200\;{\mu}M$ decreased the development of the late plateau and the inward current. Fully activated current-voltage relation of the inward current showed exponential voltage dependency which was steeper in more hyperplarizing range. The above findings suggest that the inward current was activated by intracellular calcium and contribute the late plateau phase of the action potential. It could be concluded that the inward current would be the inward component of Na-Ca exchange.
Most of voltage operated $Ca^{2+}$ channels can be divided into three types (T-, N-, and L-type), according to the electrical and pharmacological properties. Their distribution is closely related to cell specific functions. Properties of the voltage activated $Ca^{2+}$ current in mouse eggs were examined to classify channel types and to deduce the function by using whole cell voltage clamp technique. $Ca^{2+}$ currents appeared below -40 mV and reached a maximum at -15 mV (half maximum was -31 mV), then decayed rapidly (inactivation time constant ${\tau}=28.2{\pm}9.59$ ms at -10 mV within 50 ms after the onset of step depolarization. Activation and inactivation of the $Ca^{2+}$ channel was steeply dependent on voltage, in a relatively low range of $-70\;mV{\sim}-10 mV,$ half maximum of activation was -31 mV and that of inactivation was -39 mV, respectively. This current was not decreased significantly by nifedipine, a specific dihydropyridine $Ca^{2+}$ channel blocker in the range of $1\;{\mu}M\;to\;100{\mu}M.$ The inhibitory effect of $Ni^{2+}\;on\;Ca^{2+}$ current was greater than that of $Cd^{2+}.$ The conductance of $Ba^{2+}$ through the channel was equal to or lower than that of $Ca^{2+}$ These results implied that $Ca^{2+}$ current activated at a lower voltage in the mouse egg is carried via a $Ca^{2+}$ channel with similar properties that of the T-type channel.
Ca movements during the late plateau phase in rabbit atrium implicate Na-Ca exchange. In single atrial cells isolated from the rabbit the properties of the inward current of Na-Ca exchange were investigated using the whole cell voltage clamp technique. The inward currents were recorded during repolarization following brief 2 ms depolarizing pulse to +40 mV from a holding potential of -70 mV. Followings are the results obtained: 1) When stimulated every 30 sec, the inward currents were activated and reached peak values $6{\sim}12\;ms$ after the beginning of depolarizing pulse. The mean current amplitude was 342 pA/cell. 2) The current decayed spontaneously from the peak activation and the timecourse of the relaxation showed two different phases: fast and slow phase. 3) The recovery of the inward current was tested by paired pulse of various interval. The peak current recovered exponentialy with a time course similar to that of Ca current recovery. 4) Relaxation timecourse was also affected by pulse interval and time constant was reduced almost linearly according to the decrease of pulse interval between 30 sec and 1 sec. 5) The peak inward current was increased by long prepulse stimulation, Bay K, isoprenaline or c-AMP. 6) The relaxation time constant of the inward current was prolonged by Bay K or c-AMP, and shortened by isoprenaline. From the above results, it could be concluded that increase of the calcium current potentiates and prolongs intracellular calcium transients, while shortening of the timecourse by isoprenaline or short interval stimulations might be due to the facilitation of Ca uptake by SR.
Many gastrointestinal muscles show electrical oscillation, so-called 'slow wave', originated from interstitial cells of Cajal (ICCs). Thus, a technique to freshly isolate the cells is indispensable to explore the electrophysiological properties of the ICCs. To apply an enzyme solution on the serosal surface for cell isolation, the intestine was inverted and 0.02% trypsin solution and 0.04% collagenase solution were applied to serosal cavity. After the enzyme treatment, mucosal layer was removed and longitudinal muscle layer was gently separated from the rest of tissue. The thin layer was stretched in the recording chamber and mounted on an inverted microscope. Using ${\beta}-escine$, perforated whole cell patch clamp technique was used. Under a microscope, the tissue showed smooth muscle cells and interstitial cells around the myenteric plexus. Under voltage clamp condition, three types of membrane potential were recorded. One group of interstitial cells, which were positive to methylene blue and CD34, showed spontaneous outward current. These cells had bipolar shape and were considered as fibroblast-like cells because of their peculiar shape and arrangement. Another group, positive to c-kit and methylene blue, showed spontaneous inward current. These cells had more rounded shape and processes and were considered as ICCs. The third, positive to c-kit and had granules containing methylene blue, showed quiet membrane potentials under the voltage-clamp mode. These cells appeared to be resident macrophages. Therefore, in the freshly isolated thin tissue preparation, methylene blue could easily identify three types of cells rather than morphological properties. Using this method, we were able to study electrical properties of fibroblast and residential macrophage as well as myenteric ICCs.
The superficial dorsal horn, particularly substantia gelatinosa (SG) in the spinal cord, receives inputs from small-diameter primary afferents that predominantly convey noxious sensation. Reactive oxygen species (ROS) are toxic agents that may be involved in various neurodegenerative diseases. Recent studies indicate that ROS are also involved in persistent pain through a spinal mechanism. In the present study, whole cell patch clamp recordings were carried out on SG neurons in spinal cord slice of young rats to investigate the effects of hydrogen peroxide on neuronal excitability and excitatory synaptic transmission. In current clamp condition, tert-buthyl hydroperoxide (t-BuOOH), an ROS donor, depolarized membrane potential of SG neurons and increased the neuronal firing frequencies evoked by depolarizing current pulses. When slices were pretreated with phenyl-N-tert-buthylnitrone (PBN) or ascorbate, ROS scavengers, t-BuOOH did not induce hyperexcitability. In voltage clamp condition, t-BuOOH increased the frequency and amplitude of spontaneous excitatory postsynaptic currents (sEPSCs), and monosynaptically evoked excitatory postsynaptic currents (eEPSCs) by electrical stimulation of the ipsilateral dorsal root. These data suggest that ROS generated by peripheral nerve injury can modulate the excitability of the SG neurons via pre- and postsynaptic actions.
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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1998.06a
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pp.38-38
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1998
Resting membrane potential of atrial myocytes is less negative than K+ equilibrium potential, suggesting the presence of ion channels carrying inward currents. We investigated the background Na$\^$+/ current in rat atrial myocytes using both conventional whole cell voltage clamp technique and single channel recording.(omitted)
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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2001.06a
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pp.26-26
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2001
Inactivation of N-type calcium current has been reported to be both voltage dependent and Ca$\^$2+/ dependent. We have investigated the effects of Ba$\^$2+/ and Ca$\^$2+/ on N-channel inactivation in rat superior cervical ganglion neurons using the whole cell configuration of patch clamp technique. Inactivation was larger in Ca$\^$2+/ than in Ba$\^$2+/ even with 20 mM BAPTA.(omitted)
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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1997.07a
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pp.17-17
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1997
We investigated the relationship between the voltage-operated calcium channel current and the corresponding [Ca$^{2+}$]i change (Ca$^{2+}$-transient) in guinea-pig gastric myocyte. Fluorescence microspectroscopy was combined with conventional whole-cell patch clamp technique and fura-2 (80 $\mu$M) was added into the CsCl-rich pipette solution.(omitted)
The striatum receives glutamatergic afferents from the cortex and thalamus, and these synaptic transmissions are mediated by ${\alpha}$-amino-3-hydroxy-5-methyl-4-isoxazolepropionate (AMPA) and N-methyl D-aspartate (NMDA) receptors. The purpose of this study was to characterize glutamate receptors by analyzing NMDA/AMPA ratio and rectification of AMPA and NMDA excitatory postsynaptic currents (EPSCs) using a whole-cell voltage-clamp method in the dorsal striatum. Receptor antagonists were used to isolate receptor or subunit specific EPSC, such as (DL)-2-amino-5-phosphonovaleric acid (APV), an NMDA receptor antagonist, ifenprodil, an NR2B antagonist, CNQX, an AMPA receptor antagonist and IEM-1460, a GluR2-lacking AMPA receptor blocker. AMPA and NMDA EPSCs were recorded at - 70 and + 40 mV, respectively. Rectification index was calculated by current ratio of EPSCs between + 50 and - 50 mV. NMDA/AMPA ratio was 0.20${\pm}$0.05, AMPA receptor ratio of GluR2-lacking/GluR2-containing subunit was 0.26${\pm}$0.05 and NMDA receptor ratio of NR2B/NR2A subunit was 0.32${\pm}$0.03. The rectification index (control 2.39${\pm}$0.27) was decreased in the presence of both APV and combination of APV and IEM-1460 (1.02${\pm}$0.11 and 0.93${\pm}$0.09, respectively). These results suggest that the major components of the striatal glutamate receptors are GluR2-containing AMPA receptors and NR2A-containing NMDA receptors. Our results may provide useful information for corticostriatal synaptic transmission and plasticity studies.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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