Spontaneous hypertensive rats (SHR) are an established model of genetic hypertension. Vascular smooth muscle cells (VSMC) from SHR proliferate faster than those of control rats (Wistar-Kyoto rats; WKY). We tested the hypothesis that induction of heme oxygenase (HO)-1 induced by aprotinin inhibits VSMC proliferation through cell cycle arrest in hypertensive rats. Aprotinin treatment inhibited VSMC proliferation in SHR more than in normotensive rats. These inhibitory effects were associated with cell cycle arrest in the G1 phase. Tin protoporphyrin IX (SnPPIX) reversed the anti-proliferative effect of aprotinin in VSMC from SHR. The level of cyclin D was higher in VSMC of SHR than those of WKY. Aprotinin treatment downregulated the cell cycle regulator, cyclin D, but upregulated the cyclin-dependent kinase inhibitor, p21, in VSMC of SHR. Aprotinin induced HO-1 in VSMC of SHR, but not in those of control rats. Furthermore, aprotinin-induced HO-1 inhibited VSMC proliferation of SHR. Consistently, VSMC proliferation in SHR was significantly inhibited by transfection with the HO-1 gene. These results indicate that induction of HO-1 by aprotinin inhibits VSMC proliferation through cell cycle arrest in hypertensive rats.
The cellular mechanisms that contribute to the acceleration of atherosclerosis in diabetes are poorly understood. Therefore, the potential mechanisms involved in the diabetes-dependent increase in vascular smooth muscle cell (VSMC) proliferation was investigated. Using primary culture of VSMC from streptozotocin-induced diabetic rat aorta, cell proliferation assay showed two-fold increase in cell number accompanied with enhanced superoxide generation compared to normal VSMC, 2 days after plating. Both the increased superoxide production and cell proliferation in diabetic VSMC were significantly attenuated by not only tiron (1 mM), a superoxide scavenger, but also by diphenyleneiodonium (DPI; $10{\mu}M$), an NAD(P)H oxidase inhibitor. NAD(P)H oxidase activity in diabetic VSMC was significantly higher than that in control cell, accompanied with increased mRNA expression of p22phox, a membrane subunit of oxidase. Furthermore, inhibition of p22phox expression by transfection of antisense p22phox oligonucleotides into diabetic VSMC resulted in a decrease in superoxide production, which was accompanied by a significant inhibition of cell proliferation. Based on these results, it is suggested that diabetes-associated increase in NAD(P)H oxidase activity via enhanced expression of p22phox contributes to augmented VSMC proliferation in diabetic rats.
To elucidate a potential molecular link between diabetes and atherosclerosis, we investigated the role of Janus tyrosine kinase(JAK) for NAD(P)H oxidase-derived superoxide generation in the enhanced proliferative capacity of vascular smooth muscle cells(VSMC) of Otsuka Long-Evans Tokushima Fatty(OLETF) rat, an animal model of type 2 diabetes. An enhanced proliferative response to 10% fetal bovine serum(FBS) and superoxide generation with an increased NAD(P)H oxidase activity were observed in diabetic(OLETF) VSMC. Both the enhanced proliferation and superoxide generation in diabetic VSMC were significantly attenuated by AG490, JAK2 inhibitor, and PP2, Src kinase inhibitor. Tyrosine phosphorylation of proteins in diabetic VSMC, especially JAK2, was increased compared to control VSMC. Furthermore, the enhanced NAD(P)H oxidase activity in diabetic VSMC was significantly attenuated by AG490 in a dose-dependent manner. Together, these results indicate that the signal pathway which leads to diabetes-associated activation of Src kinase/JAK is critically involved in the diabetic VSMC proliferation through NAD(P)H oxidase activation and superoxide generation.
Proceedings of the Korean Society of Plant Biotechnology Conference
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2004.10a
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pp.81-90
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2004
Sialic acid containing glycosphingolipids (gangliosides) have been implicated in the regulation of various biological phenomena such as atherosclerosis. Recent report suggeststhat exogenously supplied disialoganglioside (GD3) serves a dual role in vascular smooth muscle cells (VSMC) proliferation and apoptosis. However, the role of the GD3 synthase gene in VSMC responses has not yet been elucidated. To determine whether a ganglioside is able to modulate VSMC growth. the effect of overexpression of the GD3 synthase gene on DNA synthesis was examined. The results show that the overexpression of this gene has a potent inhibitory effect on DNA synthesis and ERK phosphorylation in cultured VSMC in the presence of PDGF. The suppression of the GD3 synthase gene was correlated with the down-regulation of cyclinE/CDK2. the up-regulation of the CDK inhibitor p21 and blocking of the p27 inhibition,whereas up-regulation of p53 as the result of GD3 synthase gene expression was not observed. Consistently, blockade of GD3 function with anti-GD3 antibody reversed VSMC proliferation and cell cycle proteins. The expression of the CD3 synthase gene also led to the inhibition of TNF--induced matrix metalloproteinase-9 (MMP-9) expression in VSMC as determined by zymography and immunoblot. Furthermore, GD3 synthase gene expression strongly decreased MMP-9 promoteractivlty in response to TNF-. This inhibition was characterized by the down-regulation of MMP-9,which was Iranscriptionally regulated at NF-B and activation protein-1 (AP-1) sites in the MMP-9promoter Finally, the overexpression of MMP-9 in GD3 synthase transfectant cells rescued VSMC proliferation. However MMP-2 overexpression was not affected the cell proliferation. These findings suggest that the fl13 synthase gene represents a physiological modulator of VSMC responses that may contribute to plaque instability in atherosclerosis.
Angiotensin II (Ang II), a key mediator of hypertensive, causes structural changes in the arteries (vascular remodeling), which involve alterations in cell growth, vascular smooth muscle cell (VSMC) hypertrophy. Ang II promotes fibrotic factor like IGFBP5, which mediates the profibrotic effects of Ang II in the heart and kidneys, lung and so on. The purpose of this study was to identify the signaling pathway of IGFBP5 on cell proliferation and migration of Ang II-stimulated VSMC. We have been interested in Ang II-induced IGFBP5 and were curious to determine whether a Pitavastatin would ameliorate the effects. Herein, we investigated the question of whether Ang II induced the levels of IGFBP5 protein followed by proliferation and migration in VSMC. Pretreatment with the specific Angiotensin receptor type 1 (AT1) inhibitor (Losartan), Angiotensin receptor type 2 (AT2) inhibitor (PD123319), MAPK inhibitor (U0126), ERK1/2 inhibitor (PD98059), P38 inhibitor (SB600125) and PI3K inhibitor (LY294002) resulted in significantly inhibited IGFBP5 production, proliferation, and migration in Ang II-stimulated VSMC. In addition, IGFBP5 knockdown resulted in modulation of Ang II induced proliferation and migration via IGFBP5 induction. In addition, Pitavastatin modulated Ang II induced proliferation and migration in VSMC. Taken together, our results indicated that Ang II induces IGFBP5 through AT1, ERK1/2, P38, and PI3K signaling pathways, which were inhibited by Pitavastatin. These findings may suggest that Pitavastatin has an effect on vascular disease including hypertension.
Insulin-like growth factor binding proteins (IGFBPs) are important components of insulin growth factor (IGF) signaling pathways. One of the binding proteins, IGFBP-5, enhances the actions of IGF-1, which include the enhanced proliferation of smooth muscle cells. In the present study, we examined the expression and the biological effects of IGFBP-5 in vascular smooth muscle cells (VSMCs) from spontaneously hypertensive rats (SHR) and Wistar Kyoto rats (WKY). The levels of IGFBP-5 mRNA and protein were found to be higher in the VSMC from SHR than in those from WKY. Treatment with recombinant IGFBP-5-stimulated VSMC proliferation in WKY to the levels observed in SHR. In the VSMCs of WKY, incubation with angiotensin (Ang) II or IGF-1 dose dependently increased IGFBP-5 protein levels. Transfection with IGFBP-5 siRNA reduced VSMC proliferation in SHR to the levels exhibited in WKY. In addition, recombinant IGFBP-5 significantly up-regulated ERK1/2 phosphorylation in the VSMCs of WKY as much as those of SHR. Concurrent treatment with the MEK1/2 inhibitors, PD98059 or U0126 completely inhibited recombinant IGFBP-5-induced VSMC proliferation in WKY, while concurrent treatment with the phosphatidylinositol-3 kinase inhibitor, LY294002, had no effect. Furthermore, knockdown with IGFBP-5 siRNA inhibited ERK1/2 phosphorylation in VSMC of SHR. These results suggest that IGFBP-5 plays a role in the regulation of VSMC proliferation via ERK1/2 MAPK signaling in hypertensive rats.
Vascular smooth muscle cells (VSMCs) are a unique cell type that has unusual plasticity controlled by environmental stimuli. As an abnormal increase of VSMC proliferation is associated with various vascular diseases, tight regulation of VSMC phenotypes is essential for maintaining vascular homeostasis. Hypoxia is one environmental stress that stimulates VSMC proliferation. Emerging evidence has indicated that microRNAs (miRNAs) are critical regulators in the hypoxic responses of VSMCs. Therefore, we previously investigated miRNAs modulated by hypoxia in VSMCs and found that miR-1260b is one of the most upregulated miRNAs under hypoxia. However, the mechanism that underlies the regulation of VSMCs via miR-1260b in response to hypoxia has not been explored. Here we demonstrated that hypoxia-induced miR-1260b promotes VSMC proliferation. We also identified growth differentiation factor 11 (GDF11), a member of the TGF-β superfamily, as a novel target of miR-1260b. miR-1260b directly targets the 3'UTR of GDF11. Downregulation of GDF11 inhibited Smad signaling and consequently enhanced the proliferation of VSMCs. Our findings suggest that miR-1260b-mediated GDF11-Smad-dependent signaling is an essential regulatory mechanism in the proliferation of VSMCs, and this axis is modulated by hypoxia to promote abnormal VSMC proliferation. Therefore, our study unveils a novel function of miR-1260b in the pathological proliferation of VSMCs under hypoxia.
Kim, Jung-Eun;Sung, Jin-Young;Woo, Chang-Hoon;Kang, Young-Jin;Lee, Kwang-Youn;Kim, Hee-Sun;Kwun, Woo-Hyung;Choi, Hyoung-Chul
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.15
no.4
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pp.203-210
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2011
Cilostazol is a selective inhibitor of phosphodiesterase 3 that increases intracellular cAMP levels and activates protein kinase A, thereby inhibiting vascular smooth muscle cell (VSMC) proliferation. We investigated whether AMP-activated protein kinase (AMPK) activation induced by heme oxygenase-1 (HO-1) is a mediator of the beneficial effects of cilostazol and whether cilostazol may prevent cell proliferation and reactive oxygen species (ROS) production by activating AMPK in VSMC. In the present study, we investigated VSMC with various concentrations of cilostazol. Treatment with cilostazol increased HO-1 expression and phosphorylation of AMPK in a dose- and time-dependent manner. Cilostazol also significantly decreased platelet-derived growth factor (PDGF)-induced VSMC proliferation and ROS production by activating AMPK induced by HO-1. Pharmacological and genetic inhibition of HO-1 and AMPK blocked the cilostazol-induced inhibition of cell proliferation and ROS production.These data suggest that cilostazol-induced HO-1 expression and AMPK activation might attenuate PDGF-induced VSMC proliferation and ROS production.
Lee, Kang Pa;Park, Eun-Seok;Kim, Dae-Eun;Park, In-Sik;Kim, Jin Tack;Hong, Heeok
Nutrition Research and Practice
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v.8
no.5
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pp.521-525
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2014
BACKGROUND/OBJECTIVES: Artemisinin (AT), an active compound in Arternisia annua, is well known as an anti-malaria drug. It is also known to have several effects including anti-oxidant, anti-inflammation, and anti-cancer activities. To date, the effect of AT on vascular disorders has not been studied. In this study, we investigated the effects of AT on the migration and proliferation of vascular smooth muscle cells (VSMC) stimulated by platelet-derived growth factor BB (PDGF-BB). MATERIALS/METHODS: Aortic smooth muscle cells were isolated from Sprague-Dawley rats. PDGF-BB stimulated VSMC migration was measured by the scratch wound healing assay and the Boyden chamber assay. Cell viability was determined by using an EZ-Cytox Cell Viability Assay Kit. The production of reactive oxygen species (ROS) in PDGF-BB stimulated VSMC was measured through $H_2DCF$-DA staining. We also determined the expression levels of signal proteins relevant to ROS, including measures of extracellular signal-regulated kinase (ERK) 1/2 measured by western blot analysis and matrix metalloproteinase (MMP) 9 measured by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR). RESULTS: AT ($10{\mu}M$ and $30{\mu}M$) significantly reduced the proliferation and migration of PDGF-BB stimulated VSMC in a dose-dependent manner. The production of ROS, normally induced by PDGF-BB, is reduced by treatment with AT at both concentrations. PDGF-BB stimulated VSMC treated with AT ($10{\mu}M$ and $30{\mu}M$) have reduced phosphorylation of ERK1/2 and inhibited MMP9 expression compared to untreated PDGF-BB stimulated VSMC. CONCLUSIONS: We suggest, based on these results, that AT may exert an anti-atherosclerotic effect on PDGF-BB stimulated VSMCs by inhibiting their proliferation and migration through down-regulation of ERK1/2 and MMP9 phosphorylation.
Connective tissue growth factor (CTGF) is a novel fibrotic mediator, which is considered to mediate fibrosis through extracellular matrix (ECM) synthesis in diabetic cardiovascular complications. Statins have significant immunomodulatory effects and reduce vascular injury. We therefore examined whether fluvastatin has anti-fibrotic effects in vascular smooth muscle cells (VSMCs) and elucidated its putative transduction signals. We show that advanced glycation end products (AGEs) stimulated CTGF mRNA and protein expression in a time-dependent manner. AGE-induced CTGF expression was mediated via ERK1/2, JNK, and Egr-1 pathways, but not p38; consequently, cell proliferation and migration and ECM accumulation were regulated by CTGF signaling pathway. AGE-stimulated VSMC proliferation, migration, and ECM accumulation were blocked by fluvastatin. However, the inhibitory effect of fluvastatin was restored by administration of CTGF recombinant protein. AGE-induced VSMC proliferation was dependent on cell cycle arrest, thereby increasing G1/G0 phase. Fluvastatin repressed cell cycle regulatory genes cyclin D1 and Cdk4 and augmented cyclin-dependent kinase inhibitors p27 and p21 in AGE-induced VSMCs. Taken together, fluvastatin suppressed AGE-induced VSMC proliferation, migration, and ECM accumulation by targeting CTGF signaling mechanism. These findings might be evidence for CTGF as a potential therapeutic target in diabetic vasculature complication.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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