Kim, Yeong-Mi;Cha, Seung-Ju;Mun, Chang-Hun;Do, Jeong-Wan;Park, Jeong-U
Proceedings of the Korean Aquaculture Society Conference
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2006.05a
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pp.476-478
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2006
To analyze subcellular localization of betanodavirus protein B2, a plasmid expressing Betanodavirus protein B2 fused to enhanced green fluorescent protein (EGFP-Nl) was constructed. The transient expression of full-length B2 fused to EGFP in GF cells confirmed the equal distribution of protein B2 between cytoplasm and nucleus. However, transfection of N-terminal half of the B2 revealed that this truncated form predominantly localized to the cytoplasm. By using several deletion mutants and point mutants, we determined the regions and/or motif responsible for the subcellular localization of betanodavirus.
Although previous studies on hexokinase (HK) II indicate both the N- and C-terminal halves are catalytically active, we show in this study the N-terminal half is significantly more catalytic than the C-terminal half in addition to having a significantly higher $K_m$ for ATP and Glu. Furthermore, truncated forms of intact HK II lacking its first N-terminal 18 amino acids ($\Delta$18) and a truncated N-terminal half lacking its first 18 amino acids ($\Delta$18N) have higher catalytic activity than other mutants tested. Similar results were obtained by PET-scan analysis using $^{18}F-FDG$. Our results collectively suggest that each domain of HK II possesses enzyme activity, unlike HK I, with the N-terminal half showing higher enzyme activity than the C-terminal half.
Cell surface binding of epidermal growth factor(EGF) to EGF receptors was studied for a series of site-directed receptor mutants transfected into B82 mouse fibroblasts. Scatchard plots for truncation mutant receptors significantly lost nonlinearity for truncations below residue 1022. Transient plots of dissociation kinetics exhibited biphasic behavior for all receptor types, but the fraction of receptor in slow-dissociating form was reduced by an order of magnitude for the truncation mutants below residue 1022. Comparison of dissociation kinetics between control cells and cells treated with Triton X-100 revealed no significant variation for the slow-dissociating receptor form, but a noticeable variation was observed for the fast-dissociating receptor form when EGF receptors were truncated below residue 991. These results suggest that high affinity of EGF binding at cell surface depend on the EGF receptor cytoplasmic region.
Yoon-Jung Choi;Shukho Kim;Ram Hari Dahal;Jungmin Kim
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.34
no.8
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pp.1718-1726
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2024
Development of novel antibacterial agents is imperative due to the increasing threat of antibiotic-resistant pathogens. This study aimed to develop the enhanced antibacterial activity and in-vivo efficacy of a novel truncated endolysin, CHAPSAP26-161, derived from the endolysin LysSAP26, against multidrug-resistant bacteria. CHAPSAP26-161 exhibited higher protein purification efficiency in E. coli and antibacterial activity than LysSAP26. Moreover, CHAPSAP26-161 showed the higher lytic activity against A. baumannii with minimal bactericidal concentrations (MBCs) of 5-10 ㎍/ml, followed by Staphylococcus aureus with MBCs of 10-25 ㎍/ml. Interestingly, CHAPSAP26-161 could lyse anaerobic bacteria, such as Clostridioides difficile, with MBCs of 25-50 ㎍/ml. At pH 4-8 and temperatures of 4℃-45℃, CHAPSAP26-161 maintained antibacterial activity without remarkable difference. The lytic activity of CHAPSAP26-161 was increased with Zn2+. In vivo tests demonstrated the therapeutic effects of CHAPSAP26-161 in murine systemic A. baumannii infection model. In conclusion, CHAPSAP26-161, a truncated endolysin that retains only the CHAP domain from LysSAP26, demonstrated enhanced protein purification efficiency and antibacterial activity compared to LysSAP26. It further displayed broad-spectrum antibacterial effects against S. aureus, A. baumannii, and C. difficile. Our in vitro and in-vivo results of CHAPSAP26-161 highlights its promise as an innovative therapeutic option against those bacteria with multiple antibiotic resistance.
The movement protein of cucumber mosaic virus (CMV) is required for cell-to-cell movement of viral RNA. The movement of viral RNA occurs through the plant intercellular connection, the plasmodesmata. The viral movement protein was known to be multi-functional. In this work, a series of deletion mutants of CMV movement protein gene were created to identify the functional domains. The mutated movement proteins were produced as inclusion body in E. coli, and purified and renatured. A polyclonal antibody was raised against the CMV-Kor strain (Korean isolate) movement protein expressed in E. coli. The ability of the truncated proteins to bind to ssRNA was assayed by UV cross-linking and gel retardation analyses. The results indicate that the domain between amino acids 118 and 160 of CMV movement protein is essential for ssRNA binding.
In general, expression of membrane protein in Escherichia coli is very toxic to the host organism, but the mechanism for the toxicity is not clear yet. Expression of human purinergic receptor $P2X_4$ was found to be extremely toxic to the host E. coli. We examined this toxicity by isolation and analysis of less toxic mutant proteins. We could isolate 30 less toxic mutants of $P2X_4$ after hydroxylamine mutagenesis. Western blot showed that all of them produced proteins smaller than the wild type $P2X_4$. DNA sequencing of two largest mutant proteins showed that they were lost its second transmembrane domain. Localization analysis of these mutant proteins showed that they are not in cytoplasmic membrane, but in inclusion bodies. These data showed that inactive truncated $P2X_4$ is not toxic to E. coli and membrane integration and functionality of $P2X_4$ may be needed to show host toxicity.
The nsdD gene has been predicted to encode a GATA type transcription factor with the type IVb zinc finger DNA binding domain functions in activating sexual development of A. nidulans. In several allelic mutants of nsdD producing truncated NsdD polypeptides lacking the C-terminal zinc finger, the transcription level of nsdD gene was greatly increased. Also in an over-expressed mutant, the transcription under its own promoter was reduced. These results suggest that the expression of nsdD is negatively autoregulated. When the nsdD gene was over-expressed, cleistothecia were formed in excess amounts even in the presence of 0.6 M KC1 that inhibited sexual development of the wild type. Northern blot analysis revealed that the expression of nsdD was repressed by 0.6 M KC1. These results strongly suggest that the inhibition of sexual development by salts was carried out via the nsdD involved regulatory network.
Regulator of calcineurin 1 (RCAN1) binds to calcineurin through the PxIxIT motif, which is evolutionarily conserved. SP repeat phosphorylation in RCAN1 is required for its complete function. The specific interaction between RCAN1 and calcineurin is critical for calcium/calmodulin-dependent regulation of calcineurin serine/threonine phosphatase activity. In this study, we investigated two available deletion rcan-1 mutants in Caenorhabditis elegans, which proceed differently for transcription and translation. We found that rcan-1 may be required for calcineurin activity and possess calcineurin-independent function in body growth and egg-laying behavior. In the genetic background of enhanced calcineurin activity, the rcan-1 mutant expressing a truncated RCAN-1 which retains the calcineurin-binding PxIxIT motif but misses SP repeats stimulated growth, while rcan-1 lack mutant resulted in hyperactive egg-laying suppression. These data suggest rcan-1 has unknown functions independent of calcineurin, and may be a stimulatory calcineurin regulator under certain circumstances.
Severe acute respiratory syndrome-associated coronavirus (SARS-CoV), a distant member of the Group 2 coronaviruses, has recently been identified as the etiological agent of severe acute respiratory syndrome (SARS). The genome of SARS-CoV contains four structural genes that are homologous to genes found in other coronaviruses, as well as six subgroup-specific open reading frames (ORFs). ORF3 encodes a predicted 154-amino-acid protein that lacks similarity to any known protein, and is designated 3b in this article. We reported previously that SARS-CoV 3b is predominantly localized in the nucleolus, and induces G0/G1 arrest and apoptosis in transfected cells. In this study, we show that SARS-CoV 3b fused with EGFP at its N- or C- terminus co-localized with a mitochondriaspecific marker in some transfected cells. Mutation analysis of SARS-CoV 3b revealed that the domain spanning amino acids 80 to 138 was essential for its mitochondria localization. These results provide new directions for studies of the role of SARS-CoV 3b protein in SARS pathogenesis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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