The relationship of Oct-4 to pluripotent cells is suggested by its tightly restricted expression pattern during embryonic development. Just prior to implantation it is limited to pluripotent cells of the inner cell mass (ICM) that will form the embryo proper but is not expressed in the trophectoderm, the structure that will form the extraembryonic tissues. (omitted)
Development of placenta is a complex process that is critical for the pregnancy and controlled by many factors including cytokines, hormones, growth factors and apoptotic molecules. Recently, it has been shown that progranulin (PGRN) functions in growth of embryo and trophectoderm as well as cell migration. To initiate understanding the role of PGRN in human placental development, we investigated the expression of PGRN mRNA and protein in early and late gestation human placentas, term cytotrophoblast cells and two choriocarcinoma cell lines, JEG-3 and Jar. Reverse transcriptase polymerase chain reaction identified mRNAs derived from the PGRN gene in all samples. Immunoblot analysis showed that PGRN proteins are present in early and late gestation human placentas with decreasing levels over gestation and that PGRN proteins are present in normal and transformed trophoblast cells. Immunohistochemical analysis using paraformaldehyde-fixed tissue sections taken from early and late stages of pregnancy showed that PGRN proteins are present in cytotrophoblast cells, syncytiotrophoblast and extravillous cytotrophoblast cells and that expression pattern of PGRN differed according to the stage of cell differentiation. The results of this study are consistent with the hypothesis that PGRN proteins have critical roles in placental development and suggest that PGRN may function in trophoblast cell growth and differentiation.
Transcription factor called activating enhancer binding protein 2C (AP2-gamma) is found in a variety of species and expressed from oocyte stage onwards, particularly restricted to the trophectoderm. Recent studies demonstrated that ablation of Tfap2c led to failure of tight junction biogenesis, particularly the knock-down embryos of Tfap2c did not form cavity from morula to blastocyst in mouse and pig. We speculated that the Tfa2pc may also be involved in desmosome biogenesis because blastocoel formation is coincident with the establishment of desmosome. To determine this, we depleted Tfap2c injecting siRNA into one-cell zygote and analysed the expression levels of genes that are required for desmosome complex such as PkP2, Pkp3, Dsc2, and Dsg2. We found only Pkp3 was up-regulated in the knockdowned morula embryos. Interestingly, upstream region of Pkp3 had putative Tfap2c binding sites. In conclusion, our results suggest that Tfap2c is not a crucial factor but somehow it might be involved in desmosome biogenesis directly or indirectly via Pkp3.
Hatching occurred in the time dependent manners and strictly controlled. Although, the hatching processes are under the control of muti-embryotrophic factors and the expressed G proteins of cell generate integrated activation, the knowledge which GPCRs are expressed during hatching stage embryos are very limited. In the present study, which G proteins are involved was examined during blastocyst development to the hatching stage. The early-, expanded-, and lobe-stage blastocysts were treated with various $G_{\alpha}$ activators and H series inhibitors, and examined developmental patterns. Pertusis toxin (PTX) improved the hatching rate of the early-stage blastocyst and lobe-formed embryos. Cholera toxin (CTX) suppressed the hatching of the early-stage blastocyst and expanded embryos. The effects of toxins on hatching and embryo development were changed by the H7 and H8. These results mean that PTX mediated GPCRs activation is signaling generator in the nick or pore formation in the ZP. In addition, PTX mediated GPCR activation induces the locomotion of trophectoderm for the escaping. CTX mediate GPCRs activation is the cause of suppression of hatching processes. Based on these data, it is suggested that various GPCRs are expressed in the periimplantation stage embryos and the integration of the multiple signals decoding of various signals in a spatial and temporal manner regulate the hatching process.
Seo, Heewon;Choi, Yohan;Shim, Jangsoo;Kim, Mingoo;Ka, Hakhyun
Journal of Embryo Transfer
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v.27
no.4
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pp.211-221
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2012
The process of embryo implantation requires physical contact and physiological communication between the conceptus trophectoderm and the maternal uterine endometrium. During the peri-implantation period in pigs, the conceptus undergoes significant morphological changes and secretes estrogens, the signal for maternal recognition of pregnancy. Estrogens secreted from the conceptus act on uterine epithelia to redirect $PGF_2{\alpha}$, luteolysin, secretion from the uterine vasculature to the uterine lumen to prevent luteolysis as well as to induce expression of endometrial genes that support implantation and conceptus development. In addition, conceptuses secrete cytokines, interferons, growth factors, and proteases, and in response to these signals, the uterine endometrium produces hormones, protease inhibitors, growth factors, transport proteins, adhesion molecules, lipid molecules, and calcium regulatory molecules. Coordinated interactions of these factors derived from the conceptus and the uterus play important roles in the process of implantation in pigs. To better understand mechanism of implantation process in pigs, this review provides information on signaling molecules at the conceptus-uterine interface during early pregnancy, including recently reported data reported.
Cell adhesion plays an important role in the differentiation of the morphogenesis and the trophectoderm epithelium of the blastocyst. In the porcine embryo, CDH1 mediated adhesion initiates at compaction before blastocyst formation, regulated post-translationally via protein kinase C and other signaling molecules. Here we focus on muscle RAS oncogene homolog (M-RAS), which is the closest relative to the RAS related proteins and shares most regulatory and effector interactions. To characterize the effects of M-RAS on embryo compaction, we used gain- and loss-of-function strategies in porcine embryos, in which M-RAS gene structure and protein sequence are conserved. We showed that knockdown of M-RAS in zygotes reduced embryo development abilities and CDH1 expression. Moreover, the phosphorylation of ERK was also decreased in M-RAS KD embryos. Overexpression of M-RAS allows M-RAS KD embryos to rescue the embryo compaction and blastocyst formation. Collectively, these results highlight novel conserved and multiple effects of M-RAS during porcine embryo development.
The purpose of the study were to characterize the proteins secreted by elongating caprine conceptus, to identify a group of low molecular weight proteins as retinol-binding protein (RBP), to identify RBP cell-specific localization in conceptus tissue, and to demonstrate that the conceptuses secreted continuously RBP during the time period maternal recognition of pregnancy. Caprine conceptuses were removed from the uterus between days 16 and 22 of pregnancy, the time period maternal recognition of pregnancy. Isolated conceptuses were cultured in a modified minimum essential medium in the presence of radiolabeled amino acids. Proteins synthesized and secreted into medium were analyzed by fluorography of two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis and fluorography. At least five proteins showed consistently a grouping of spots with characteristic location on two-dimensional gels. A major low molecular weight protein consisted of two major isoforms (pI 5.3-6.0) of similar molecular mass (21 kDa) was identified as RBP by using antiserum against RBP. Presence of RBP in conceptus culture medium and uterine flushings between days 16 and 22 of pregnancy were determined by immunoprecipitation and Western blotting using anti-RBP serum. In immunocytochemical study, strong immunostaining for RBP was localized in trophectoderm and endoderm of conceptus. These results clearly demonstrated that the caprine conceptus was active in protein synthesis as early as day 16 of pregnancy. Secretion of RBP by caprine conceptuses (days 16-22) coincident with the rapid transformation of the conceptus from a spherical blastocyst to a filamentous structure. Production of RBP by the elongating conceptuses may be indicative of an important role for conceptus RBP in the transport, availability and metabolism of retinol during maternal recognition of pregnancy.
The main purpose of this study was to improve the efficiency and quality of in vitro embryo production in Korean Native Cows (KNC). We examined the effects of ovarian morphologies (Experiment 1) and the culture vessel (Experiment 2) on in vitro maturation (IVM). We measured the subsequent development rates and cell numbers of blastocysts. In Experiment 1, the ovaries of KNC were divided into six groups, based on follicle and corpus luteum (CL) morphology. The development rates to the 2- and 8-cell stages were similar among the six groups. The development rates to blastocyst stages were significantly higher in the group without a CL or follicle (WOCL/F) than in the groups with follicular cysts (FCs), regressive CLs (RCLs) or cystic CLs (CCLs) (p<0.05). The cell number of the inner cell mass (ICM) of blastocysts in the FCs and RCLs groups, and the number of cells in the trophectoderm (TE) in the WOCL/F group, FCs, growing CLs (GCLs) and RCLs were significantly higher than in other groups (p<0.05). The total cell number (TCN) in the WOCL/F, FC and RCL groups was also significantly higher than in other groups (p<0.05). The ICM cell number/TCN ratio was significantly higher in the FC and RCL groups than in the GCL and DF groups (p<0.05). In Experiment 2, oocyte IVM was carried out in culture dishes, in 0.25- or 0.5-ml straws used for freezing sperm. The development rate to the 2-cell stage was significantly higher in the 0.5-ml straw group than in the 0.25-ml straw group. The development rates to the blastocyst stage were similar in the dish and the two straw groups. There were no differences in the cell numbers of ICM, TE or TCN or ICM cell number/TCN ratios between groups.
Objective: The aim of this study was to compare the effects of $36.5^{\circ}C$ and $38.5^{\circ}C$ incubation temperatures on the maturation of bovine oocytes and developmental competence of embryos. Methods: In experiment 1, oocytes were maturated in bicarbonate-buffered TCM-199 for 22 hours in a humidified atmosphere of 5% $CO_2$ in the air at either $36.5^{\circ}C$ or $38.5^{\circ}C$ and nuclear maturation status were determined. In experiment 2, in vitro fertilized oocytes were allocated randomly into synthetic oviductal fluid medium with or without a mixture of 1 mM L-glutathione reduced and 1,500 IU superoxide dismutase and cultured in a humidified atmosphere of 5% $CO_2$, 5% $O_2$, and 90% $N_2$ in the air at $38.5^{\circ}C$ for 8 days. Results: There were no significant differences between incubation temperatures in terms of oocyte maturation parameters such as cumulus expansion, first polar body extrusion and nuclear maturation. Incubation temperatures during in vitro maturation had no effects on developmental competence of embryos, but supplementation of antioxidants increased (p<0.05) developmental competence of the embryos. Blastocysts from oocytes matured at $38.5^{\circ}C$ had comparatively higher inner cell mass, but low overall and trophectoderm cell numbers (p<0.05). Conclusion: The results of present study showed that maturation of bovine oocytes at $36.5^{\circ}C$ may provide a suitable thermal environment for nuclear maturation and subsequent embryo development.
Kim, Min-Goo;Shim, Jang-Soo;Seo, Hee-Won;Choi, Yo-Han;Lee, Chang-Kyu;Ka, Hak-Hyun
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.24
no.7
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pp.919-928
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2011
The pig exhibits true epitheliochorial placentation, where the fetal membrane maintains attachment throughout pregnancy but does not invade into the maternal uterine endometrium. Accordingly, the expression and function of cell adhesion molecules are very important for embryo implantation and the establishment of pregnancy. In our recent microarray analysis, we found that activated leukocyte cell adhesion molecule (ALCAM) was expressed in the uterine endometrium during pregnancy in pigs. To better understand the roles of ALCAM in the establishment and maintenance of pregnancy, we examined ALCAM expression in the uterine endometrium during the estrous cycle and pregnancy in pigs. Real-time RT-PCR analysis showed that ALCAM was differentially expressed in the uterine endometrium during the estrous cycle and pregnancy, with the highest levels on D12 of pregnancy. ALCAM mRNA was localized to the luminal and glandular epithelial cells and to the trophectoderm of conceptuses during early pregnancy. The steroid hormones estrogen and progesterone had no effect on ALCAM expression in an endometrial explant culture study. Further, we found that ALCAM expression in the uterine endometrium from gilts with somatic cell nuclear transfer-derived embryos was not different from that in gilts with embryos from natural mating. ALCAM was expressed in a pregnancy stage- and cell type-specific manner in the uterine endometrium and conceptuses during pregnancy. These findings suggest that ALCAM may play a role in the establishment of pregnancy. Further analysis of ALCAM will provide insight into the implantation process and establishment of pregnancy in pigs.
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