Cucumber mosaic virus (CMV) leads to a cause of poor crop productivity and quality. To solve this problem, we attempted to develop a virus-resistance tobacco plants by using viral coat protein (CP) gene. Transgenic tobacco plants expressing CMV CP gene were analysed by the resistance upon CMV infection. The virus-resistance was measured in $\textrm{T}_{1}$, generation by the inhibition of plant growth and the expression of the mosaic symptoms infected with CMV. The transgenic lines were divided into four groups: highly resistant, resistant, moderate and susceptible based on their growth and symptom severity. Out of 39 transgenic lines, 16 lines showed significant virus-resistance. And of resistant lines, 2 lines were designated highly resistant based on the facts that they achieved similar plant height to that of non-infected tobacco plants and showed lower disease symptom than that of other lines. The steady state level of CP RNA and coat protein level were measured by northern blot and immunoblot analysis. The CP RNA was highly accumulated in most resistant and moderate lines but barely detected in susceptible lines. The coat protein was detected in most lines regardless of their resistance to CMV. from this result, virus-resistance appeared to correlate more with CP RNA level than the level of coat protein. However, in two highly resistant lines, CP RNA level was unexpectedly low. This unexpected phenomenon need to be further investigated.
Kim, Yeongtae;Kim, Eunsung;Park, Youngjin;Kim, Yonggyun
Korean journal of applied entomology
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제54권1호
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pp.7-15
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2015
CpBV (Cotesia plutellae bracovirus) is a polydnavirus and encodes a cystatin (CpBV-CST1) gene. Its overexpression suppresses insect immunity and alters insect developmental processes. This study aimed to construct a genetically modified (GM) tobacco to further explore the physiological function of the viral cystatin and to apply to control insect pests. To this end, the transgenic tobacco lines were screened in expression of the target gene and assessed in insecticidal activity. A recombinant vector (pBI121-CST) was prepared and used to transform a bacterium, Agrobacterium tumefasciens. The transformed bacteria were used to generate transgenic tobacco lines, which were induced to grow callus and resulted in about 92% of shoot regeneration. The regenerated plants were screened by PCR analysis to confirm the insertion of the target gene in the plant genome. In addition, the expression of the target gene was assessed in the regenerated plants by quantitative real-time PCR (qRT-PCR). The qRT-PCR analysis showed that the transgenic line plant expressed the target gene about 17 times more than the control tobacco, indicating a stable insertion and expression of the target gene in the transgenic tobacco line. The insecticidal activity was then analyzed using the screened transgenic tobacco lines against the teneral 1st instar larvae of the oriental tobacco budworm, Helicoverpa assulta. Though there was a variation in the insecticidal efficacy among transgenic lines, T9 and T12 lines exhibited more than 95% mortality at 7 days after feeding treatment. These results suggest that CpBV-CST1 is a useful genetic resource to be used to generate GM crop against insect pests.
We have investigated the effects of abiotic and biotic stresses on leaf senescence using transgenic tobacco plants, in which cellular contents of polyamines were increased by introducing the genes of polyamine and ethylene biosynthesis in sense or antisense orientation. These transgenic plants showed accumulations of polyamines at higher levels than were found in wild-type. Stress-induced senescence was attenuated in transgenic plants cpmpared with wild-type plants, in terms of total chlorphyll loss and phenotypic changes after oxidative stress of hydrogen peroxide($H_2O_2$), high salinity, acid stress (pH3.0), ABA and fungal pathogen(phytophothora parasitica pv.Nicotianae). Transcripts for antioxidant enzyme, glutathionine-S-transferase and catalase, were also more abundant in transgenic plants than wild-type plants. These result suggested that higher expression of those genes caused a broad-spectrum resistance to abiotic stress/biotic stress. These phenomena indicate that polyamines may play an important role in contributing to the antioxidant defense function in plants. Our findings suggest that facilitate the improvement of stress tolerance of crop plants.
In this study we tried to transform an antimicrobial peptide gene (Shiva) under the promoter of tomato phenylalanine ammonia-lyase (tPAL5) into tobacco and potato plants. Antimicrobial peptide gene was isolated originally from giant silk moth (Hyalophora cecropia) and modified ie nucleotide sequence to increase antimicrobial activity. Transgenic tobacco plants were regenerated and their seeds were tested on the media containing kanamycin (500 mg/L). The results of PCR amplification and genomic Southern blot hybridization confirmed the integration of construct (tPAL5 promoter-Shiva-NOS-GUS-NOS) into chromosome. We observed that one of the transgenic tobacco plants showed chromosome rearrangement when integrated. In case of potato transformation, the efficiency of regeneration was maximized at the medium containing Zeatin 2mg/L, NAA 0.01mg/L, GA$_3$ 0.1mg/L. We also observed the high expression of GUS (${\beta}$-glucuronidase) enzyme which was located next to the terminator sequence of nopaline synthase gene (NOS) in the vascular tissue of stem, leaves of transgenic potatoes. This result suggested that a short sequence of Shiva gene (120 bp) and NOS terminator sequence might be served as a leader sequence of transcript when translated.
Kim, Yu-Jung;Cho, Eun-Kyung;Lee, Soo-In;Lim, Chae-Oh;Choi, Young-Ju
BMB Reports
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제43권1호
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pp.9-16
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2010
The promoters of OsCaM1 and OsCaM3 were characterized after sequencing and fused to the reporter gene, GUS. The constructs were then transformed into the tobacco plant. Histochemical analysis of GUS showed different expression patterns in pOsCaM1::GUS and pOsCaM3:: GUS transgenic plants. The expression of pOsCaM1::GUS in 4- to 15-day-old seedlings in particular was observed only in the root, while the expression of pOsCaM3::GUS was detected in both the cotyledons and root. Also, pRCaM1::GUS was detected in all the tissues surrounding the root system, while the presence of pOsCaM3::GUS was observed in the root, except in the root meristem. However, in mature transgenic plants, the expression of pOsCaM1::GUS and OsRCaM3::GUS was scarcely detected. Under wounding stress, the GUS activity of pOsCaM1 and pOsCaM3 was strongly induced, and the activity of pOsCaM3 especially, was retained for long periods. In the phloem, pOsCaM3 activity induced by hormone treatments and abiotic stresses was also identified.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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한국식물병리학회 2003년도 정기총회 및 추계학술발표회
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pp.77.2-78
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2003
An EREBP/AP2-type transcription factor (CaPFl) was isolated by DDRT-PCR following inoculation of soybean pustule pathogen Xanthomonas axonopodis pv. glycines Bra which induces HR on pepper leaves. Genomic Southern blot analysis revealed that the CaPFl gene is present as a single copy within the hot pepper genome. The deduced amino acid sequence of CaPFl has two potential nuclear localization signals, a possible acidic activation domain, and an EREBP/AP2 motif that could bind to a conserved cis- element present in promoter region of many stress-induced genes. The mRNA level of CaPFl was induced by both biotic and abiotic stresses. We observed higher-level transcripts in resistance-induced pepper tissues than diseased tissues. Expression of CaPFl is also induced upon various abiotic stresses including ethephon, MeJA, cold stress, drought stress and salt stress treatments. To study the role of CPFI in plant, transgenic Arabidopsis and tobacco plants which express higher level of pepper CaPFl were generated. Global gene expression analysis of transgenic Arabidopsis by cDNA microarray indicated that expression of CaPFl in transgenic plants affect the expression of quite a few GCC box and DRE/CRT box-containing genes. Furthermore, the transgenic Arabidopsis and tobacco plant, expressing CaPFl showed tolerance against freezing temperature and enhanced resistance to Pseudomonas syrnigae pv. tabaci. Taken together, these results indicated that CaPFl is a novel EREBP/AP2 transcription factor in hot pepper plant and it may has a significant role(s) in regulation of biotic and abiotic stresses in plant.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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