Kim, Young-Tae;Park, Byoung-Keun;Hwang, Eui-Il;Yim, Nam-Hui;Kim, Na-Rae;Kang, Tae-Hoon;Lee, Sang-Han;Kim, Sung-Uk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.14
no.3
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pp.498-502
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2004
The current study was conducted to monitor the possibility of the gene transfer among soil bacteria, including the effect of drift due to rain and surface water, in relation to the release of genetically modified organisms into the environment. Four types of bacteria, each with a distinct antibiotic marker, kanamycin-resistant P. fluorescens, rifampicin-resistant P. putida, chloramphenicol-resistant B. subtilis, and spectinomycin-resistant B. subtilis, were plated using a small-scale soil-core device designed to track drifting microorganisms. After three weeks of culture in the device, no Pseudomonas colonies resistant to both kanamycin and rifampicin were found. Likewise, no Bacillus colonies resistant to both chloramphenicol and spectinomycin were found. The gene transfer from glyphosate-tolerant soybeans to soil bacteria, including Rhizobium spp. as a symbiotic bacteria, was examined by hybridization using the DNA extracted from soil taken from pots, in which glyphosate-tolerant soybeans had been growing for 6 months. The results showed that 35S, T-nos, and EPSPS were observed in the positive control, but not in the DNA extracted from the soilborne microorganisms. In addition, no transgenes, such as the 35S promoter, T-nos, and EPSPS introduced into the GMO soybeans were detected in soilborne bacteria, Rhizobium leguminosarum, thereby strongly rejecting the possibility of gene transfer from the GMO soybeans to the bacterium.
Kim Hyun-Joo;Shin Young-Min;Chang Suk-Min;Park Chang-Sik;Jin Dong-Il
Reproductive and Developmental Biology
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v.30
no.2
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pp.93-97
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2006
To study the signaling effect of insulin-like growth factor-I(IGF-1), transgenic mice containing IGF-1 Receptor (IGF-1R) cDNA fused to metallothionein promoter were produced by DNA microinjection into the pronucleus of mouse zygote. Three founders were produced with transgenic mice containing IGF-1R gene. Transgenic mice lines contained approximately $4{\sim}20$ copies of transgenes per cell and transmission of this gene into the progeny with Mendelian manner were determined. The founder mice were mated with normal mice to produce $F_1$ mice and then $F_2$ mice. Transmission rates of IGF-1R transgene in the progeny mice were $25{\sim}60%$ in $F_1$ generation and $40{\sim}50%$ in $F_2$ generation. The mRNA expression of IGF-1R transgene in liver was analyzed using RT-PCR for IGF-1R gene in liver. When body weights of transgenic pups were measured during 4, 10 and 14 weeks after birth, IGF-1R transgenic mice grew faster than non transgenic littermates. This study indicated that growth regulation by IGF-1 signaling through IGF-1R can be elucidated using IGF-1R transgenic mice.
The cost of conventional cultivation of ginseng (Panax ginseng C.A. Meyer) is very expensive, because shadow condition should be maintained during cultivation periods owing to inherently weak plant for high-temperature. Therefore, application of plant biotechnology may be possible to overcome these difficulties caused by conventional breeding of ginseng. Transgenic plants were produced via Agrobacterium tumefaciens Gv3101, both carrying the binary plasmid pBI121 mLPISO with nptII and Iso (isoprene synthase) gene. Integration of the transgenes into the P. ginseng nuclear genome was confirmed by PCR analysis using nptII primers and Iso primers. RT-PCR result also demonstrated the foreign isoprene synthase gene in three transgenic plant lines (T1, T3, and T5) which was expressed at the transcriptional level. When whole plants of transgenic ginseng were exposed to high temperature at $46^{\circ}C$ for 1 h, a non-transformed plant was wilted from heat shock, whereas a transgenic plant appeared to remain healthy. We suggest that the introduction of exogenous isoprene synthase is considered as alternative methods far generating thermotolerance ginseng.
A protocol for the production of transgenic Panax ginseng C.A. Meyer was established via Agrobacterium tumefaciens-mediated genetic transformation of direct somatic embryos. A number of conditions related to the co-cultivation were tested with respect to maximizing transformation efficiency. The results showed that pH of the co-cultivation medium (5.7), the bacterial growth phase (optical density; $OD_{600}$ = 0.8), co-cultivation period (3 days), and acetosyringone concentration $(100\;{\mu}M)$ had positive effects on transformation. Selected plantlets were cultured on the medium at an elevated hygromycin level(30 mg/l). Integration of the transgenes into the P. ginseng nuclear genome was confirmed by PCR analysis using hpt primers and by Southern hybridization using hpt-specific probe. The transgenic plantlets were obtained after 3-month cultivation and did not show any detectable variation in morphology or growth characteristics compared to wild-type plants.
Indole glucosinolates (IG) play important roles in plant defense, plant-insect interactions, and stress responses in plants. In an attempt to metabolically engineer the IG pathway flux in Chinese cabbage, three important Arabidopsis cDNAs, CYP79B2, CYP79B3, and CYP83B1, were introduced into Chinese cabbage by Agrobacterium-mediated transformation. Overexpression of CYP79B3 or CYP83B1 did not affect IG accumulation levels, and overexpression of CYP79B2 or CYP79B3 prevented the transformed callus from being regenerated, displaying the phenotype of indole-3-acetic acid (IAA) overproduction. However, when CYP83B1 was overexpressed together with CYP79B2 and/or CYP79B3, the transformed calli were regenerated into whole plants that accumulated higher levels of glucobrassicin, 4-hydroxy glucobrassicin, and 4-methoxy glucobrassicin than wild-type controls. This result suggests that the flux in Chinese cabbage is predominantly channeled into IAA biosynthesis so that coordinate expression of the two consecutive enzymes is needed to divert the flux into IG biosynthesis. With regard to IG accumulation, overexpression of all three cDNAs was no better than overexpression of the two cDNAs. The content of neoglucobrassicin remained unchanged in all transgenic plants. Although glucobrassicin was most directly affected by overexpression of the transgenes, elevated levels of the parent IG, glucobrassicin, were not always accompanied by increases in 4-hydroxy and 4-methoxy glucobrassicin. However, one transgenic line producing about 8-fold increased glucobrassicin also accumulated at least 2.5 fold more 4-hydroxy and 4-methoxy glucobrassicin. This implies that a large glucobrassicin pool exceeding some threshold level drives the flux into the side chain modification pathway. Aliphatic glucosinolate content was not affected in any of the transgenic plants.
The cytosolic glutathione reductase(GR) gene of chinese cabbage was introduced into Lettuce (Lactuca sativa L.) with particle bombardment method. When cotyledon explants were treated with osmoticum-conditioning medium (0.6 M sorbitol/mannitol) 4 hours prior to and 16 hours after bombardment, it was identified by GUS assay that this condition was the most efficient one for introduction of foreign genes into cotyledon tissue of lettuce with particle bombardment. The stable integration of a GR gene was confirmed by the PCR analysis. 0.3, 0.6, 1.5 kbp PCR fragments of transgenes were obtained by three types of primers designed on the basis of GR sequence. To know whether the expression of the GR gene of pBKs-GR 1 can be stably maintained in the next generation, T$_2$selfing seeds obtained from the transformed mother plants were sowed on MS medium supplemented with 200 mg/L kanamycin sulfate. 70% of seedlings showed resistance to kanamycin.
D. I. Jin;Lee, S. H;J. H. An;Y. G. Ko;Kim, H. J.;Lee, S. H.;Park, C. S.
Korean Journal of Animal Reproduction
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v.26
no.4
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pp.347-351
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2002
Transgenes in HSY-TK gene driven by the lck promoter was tested for the expression in immune cells (Jurkat cells) to apply xenotransplantation of human cells into transgenic animals for the potential use of the proliferation or differentiation of human stem cells in the large animal such as an pig. Also, lck-CFP gene was used for transfection experiment into Jurkat cell to confirm the proper regulation of lck promoter for transgene expression in the T cells. Transfection of lck-GFP gene into Jurkat ceils induced CFP expression in transfected cells. The expression of Ick-TK and Ick-CFP genes was confirmed by RT-PCR using RNAs extracted from Jurkat cells, When Jurkat cells transfected with TK and CFP genes were selected against G418 or gancyclovir treatments, Jurkat cells transfected with TK gene were not proliferated in G4i8 and gancyclovir medium while intact cells or cells transfected with CFP gene could grow in gancyclovir medium. However, Jurkat cells transfected with TK or GFP gene were proliferated in G418 medium probably due to Neo$^{r}$ gene in the vector. Gancyclovir treatment destroyed Jurkat cells expressing TK gene indicating that T-cells expressing TK gene can be selectively eliminated by TK gene expression driven by lck promoter.
We have previously produced transgenic (TG) mice expressing the human lactoferrin (hLF), interleukin-10 (hIL-10), and thrombopoietin (hTPO) proteins in the milk. In this study, we examined whether simple crossbreeding between two kids of a single transgenic mouse can produce double transgenics co-expressing two human proteins.. The hLF male, and the hIL-10 male were crossbred with the hIL-10 and hTPO females, and the hTPO female, respectively. PCR analysis for genotyping showed 32%, 23% and 24% double transgenic rates for hLF/hIL-10, hLF/hTPO, and hIL-10/hTPO transgenes, respectively. We analyzed the expression levels of the human proteins from double transgenic mice and compared those with their single transgenic siblings. All double transgenic co-expressed two human proteins at comparable levels to singles', unless hTPO was not co-expressed: for hLF, 1.1 mg/ml in hLF/hIL-10, whereas 0.5 mg/ml in hLF/hTPO; for hIL-10, 4.1 mg/ml in hIL-10/hLF, whereas 1.4 mg/ml in hIL-10/hTPO. Ihe downregulation of hTPO to half level of singles' was observed in double transgenic mice. The possible reason why hTPO co-expressed might lead to down-regulation of another human protein was discussed. These results suggested that double transgenic generated by crossbreeding between two singles' could be useful system for bioreactor.
Meiyalaghan, Sathiyamoorthy;Pringle, Julie M.;Barrell, Philippa J.;Jacobs, Jeanne M.E.;Conner, Anthony J.
Plant Biotechnology Reports
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v.4
no.4
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pp.293-301
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2010
The feasibility of two strategies for transgene pyramiding using Agrobacterium-mediated transformation was investigated to develop a transgenic potato (Solanum tuberosum L. cv. Iwa) with resistance to potato tuber moth (PTM) (Phthorimaea operculella (Zeller)). In the first approach, cry1Ac9 and cry9Aa2 genes were introduced simultaneously using a kanamycin (nptII) selectable marker gene. The second approach involved the sequential introduction (re-transformation) of a cry1Ac9 gene, using a hygromycin resistance (hpt) selectable marker gene, into an existing line transgenic for a cry9Aa2 gene and a kanamycin resistance (nptII) selectable marker gene. Multiplex polymerase chain reaction (PCR) confirmed the presence of the specific selectable marker gene and both cry genes in all regenerated lines. The relative steady-state level of the cry gene transcripts in leaves was quantified in all regenerated lines by real-time PCR analysis. Re-transformation proved to be a flexible approach to effectively pyramid genes for PTM resistance in potato, since it allowed the second gene to be added to a line that was previously identified as having a high level of resistance. Larval growth of PTM was significantly inhibited on excised greenhouse-grown leaves in all transgenic lines, although no lines expressing both cry genes exhibited any greater resistance to PTM larvae over that previously observed for the individual genes. It is anticipated that these lines will permit more durable resistance by delaying the opportunities for PTM adaptation to the individual cry genes.
Kim, Jiyoung;Lee, Ah-Reum;Kawasaki, Ichiro;Strome, Susan;Shim, Yhong-Hee
Molecules and Cells
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v.28
no.1
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pp.43-48
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2009
By screening C. elegans mutants for severe defects in germline proliferation, we isolated a new loss-of-function allele of cdc-25.1, bn115. bn115 and another previously identified loss-of-function allele nr2036 do not exhibit noticeable cell division defects in the somatic tissues but have reduced numbers of germ cells and are sterile, indicating that cdc-25.1 functions predominantly in the germ line during postembryonic development, and that cdc-25.1 activity is probably not required in somatic lineages during larval development. We analyzed cell division of germ cells and somatic tissues in bn115 homozygotes with germline-specific anti-PGL-1 immunofluorescence and GFP transgenes that express in intestinal cells, in distal tip cells, and in gonadal sheath cells, respectively. We also analyzed the expression pattern of cdc-25.1 with conventional and quantitative RT-PCR. In the presence of three other family members of cdc-25.1 in C. elegans, defects are observed only in the germ line but not in the somatic tissues in cdc-25.1 single mutants, and cdc-25.1 is expressed predominantly, if not exclusively, in the germ line during postembryonic stages. Our findings indicate that the function of cdc-25.1 is unique in the germ line but likely redundant with other members in the soma.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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