The transformational conditions of plasmids $pPL-\lambda$ and pAS 1 are as follows in E. coli, Ts-mutant M 5248 strain at $30^{\circ}C$. When the culture time was 2.5 hours of mid logarithemic phase, the cell concentration was $4.5\times10^7\;cells/ml$, the optical density was equal to 0.45 at 590 nm wave length, the transformational frequencies of plasmid$pPL-\lambda$ and pAS 1 had the highest values as $2\times10^{-6}\;and\;1.5\times10^{-6}\;and\;1.5\times10^{-6}$ and respectively. For $9\times10^6$ competent cells in $200{\mu}l$, the transformational frequency was as high as $4.4\times10^{-6}$ at 510 ng plasmid concentration. The competent cells treated with the mixture of calcium chloride and thymidine twice rates of transformation than those treated with calcium chloride. The ampicillin resistance of transformants was expressed in LB broth after 2 hours at $30^{\circ}C$.
Lee, Myung-Shin;Kwon, Myung-Hee;Hwang Kim, Kyongmin;Park, Sun;Shin, Ho-Joon;Kim, Hyung-Il
IMMUNE NETWORK
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v.3
no.3
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pp.219-226
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2003
Background: Phage display is the most widely used technique among display methods to produce monoclonal antibody fragment with a specific binding activity. Having a large library for efficient antibody display/selection is quite laborious process to have more than $10^9$ members of transformants. To overcome these limitations, several in vitro selection approaches have been reported. Ribosome display that links phenotypes, proteins, directly to genotype, mRNA, is one of the in vitro display methods. Ribosome display can reach the size of scFv library up to $10^{14}$ molecules and it can be further diversified during PCR steps. To select the high affinity scFv from one pot library, we established ribosome display technique by modifying the previously reported eukaryotic translation system. Methods: To establish the antibody selection system by ribosome display, we used 3D8, anti-DNA antibody. A 3D8 scFv was synthesized in vitro by an in vitro transcription-translation system. The translated 3D8 scFv and the encoding 3D8 mRNA are connected to the ribosome. These scFv-ribosome-mRNA complexes were selected by binding to their specific antigens. The eluted mRNAs from the complexes are reverse transcribed and re-amplified by PCR. To apply this system, antibody library from immunized mouse with terminal protein (TP)-peptide of hepatitis B virus DNA polymerase TP domain was also used. This TP-peptide encompasses the 57~80 amino acid residues of TP. These mRNA/ribosome/scFv complexes by our system were panned three times against TP-peptide. The enrichment of antibody from library was determined by radioimmunoassay. Results: We specifically selected 3D8, anti-DNA antibody, against ssDNA as a model system. The selected 3D8 RNAs sequences from translation complexes were recovered by RT-PCR. By applying this model system, we enriched TP-peptide-specific scFv pools through three cycles of panning from immunized library. Conclusion: We show that our translating ribosome complexes are well maintained and we can enrich the TP-specific scFv pools. This system can be applied to select specific antibody from an antibody library.
To investigate the promoter effect on heterologous gene expression in S. cerevisiae, the recombinant plasmids pYI11, pYI12, pYI10-2, and pYIGP were constructed to contain the inulinase gene (INUI) as a reporter under the control of GAL10, GAL7, GAL1, and GAP promoters, respectively. When the yeasts transformants were cultivated on galactose-containing rich media, the cell growth reached to 36-39 OD600 at 72 hours of cultivation. The specific growth rates of the cells harboring the four different plasmids decreased similarly : they dropped from $0.24 h^{-1}$ during the glucose-consuming period to 0.04 -$0.10 h^{-1}$ during the galactose-consuming period (gene expression phase for GAL promoter system). After the depletion of glucose, the expression of inulinase gene was started and reached to maximal levels of 4.3(GAL1 promoter), 4.0(GAL10 promoter), 3.8(GAL7 promoter), and 1.6(GAP promoter) unit/mL at 72 hours of cultivation. Based on the maximal expression level and activity staining on the plate, the promoter strength was in the order of GAL1, GAL10, GAL7 and GAP promoter. While the GAL-promoter systems showed a high plasmid stabilities of more than 78%, the GAP-promoter plasmid revealed a lower plasmid stability of 55%. Most of inulinase activity (98%) was found in the extracellular medium, indicating that the secretion efficiency of inulinase is independent on the type of promoter.
This study aims to establish the efficient soybean transformation system and develop soybean [Glycine max (L.) Merill] transformants using cotyledonary node explants. The cotyledonary node of soybean were co-cultivated with Agrobacterium tumefaciens strains (KYRT1, EHA105). These strains contain the binary vector pCAMBIA3301 which carries a herbicide-resistant far gene. Korean cultivars (Danbaekkong, Eunhakong) and foreign cultivars (Jack, Peking) were the most efficient in regenerating cotyledonary node. Therefore, they were chosen for the transformation. Results showed that the T-DNA transfer reached up to 60% and transformation efficiency reached up to 3% in the cotyledonary node explants from Jack cultivar, co-cultivated with EHA105 strain. Histochemical GUS evaluation showed that 12 individual lines, transformed with the 현 gene, have positive response. The transformed soybeans have been confirmed in the $T_0$ generation through phenotypic assay using herbicide $Basta^{(R)}$ and Southern blot analysis.
Kim Hyun-Chul;Lim Chae-Kwon;Kim Byung-Woo;Jeon Sung-Jong;Nam Soo-Wan
Journal of Life Science
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v.15
no.1
s.68
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pp.118-123
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2005
For the expression in Saccharomyces cerevisiae, Bacillus stearothermophilus cyclodextrin glucanotransferase gene (cgtS) in pCGTS (4.8 kb) was subcloned into the surface expression vector, pYD1 (GALl promoter). The constructed plasmid, pYDCGT (7.2 kb) was introduced into S. cerevisiae EBY100 cells, and then yeast transformants were selected on the synthetic defined media lacking tryptophan. The formation of cyclodextrin (CD) was confirmed with active staining of culture broth of transformant grown on starch medium. Enzymatic reaction products with respect to the culture time and the reaction time were examined by TLC analysis. The results indicated that the enzyme activity was exhibited after 12 h cultivation and CD was produced after 10min of enzymatic reaction. When the surface-engineered yeast cells were cultured on galactose medium, maximum activities of CGTase were about 21.3 unit/l and 16.5 unit/l at $25^{\circ}C\;and\;30^{\circ}C$, respectively. The plasmids stability showed about $80\%\;even\;at\;25^{\circ}C\;and\;30^{\circ}C$.
In spite of long research period for Salmonella typhi, little information is known about the pathogenesis mechanism of human typhoid fever caused by S. typhi due to lack of infection model in animals. A wild-type of S. typhi Ty2 strain requires cysteine to grow on minimal media. We hypothesized that this cysteine requirement may restrict colonization of S. typhi in animals during infection process. Among the S. typhi strains carrying Salmonella typhimurium genomic library, we have isolated three S. typhi transformants growing on minimal media without cysteine. Although there were three ORFs in DNA of pBP71, the STM1490 ORF complemented cysteine auxotrophy of S. typhi. Analysis of the deduced amino acid sequence of the STM1490 homolog in S. typhi revealed that there are differences in two amino acids. Plasmids containing amino acid substitutions in STM1490 supported S. typhi growth on minimal media without cysteine, indicating irrelevance of these two amino acids to STM1490 function. These results tells us that there are other factors or systems involved in cysteine requirement of S. typhi.
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2017.06a
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pp.196-196
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2017
Oilseed crop Camelina (Camelina sativa L.) is a suitable for biodiesel production that has high adaptability under low-nutrient condition like marginal land and requires low-input cost for cultivation. Enhanced abiotic stress tolerance of Camelina is very important for oil production under the wide range of different climate. CsRCI2s (Rare Cold Inducible 2) are related proteins in various abiotic stresses that predicted to localized at plasma membrane (PM) and endoplasmic reticulum (ER). These proteins are consist of eight-family that can be divided into tail (CsRCI2D/E/F/G) and no-tail (CsRCI2A/B/E/H) type of C-terminal. However, it is still less understood the function of C-terminal tail. In this study, CsRCI2D/H genes were cloned through gateway cloning system that used pCB302-3 as destination vector. And we used agrobacterium-mediated transformation system for generation of overexpression (OX) transformants. Overexpression of target gene was confirmed using RT-PCR and segregation ratio on selection media. We analyzed physiological response in media and soil under abiotic stresses using CsRCI2D and CsRCI2H overexpression plant. To compare abiotic stresses tolerance, wild type and CsRCI2D/H OX line seeds were sown on agar plate treated with various NaCl and mannitol concentration for 7 days. In the test of growth rate under abiotic stress on media, CsRCI2H OX line showed similar to NaCl and mannitol stress. In the other hand, CsRCI2D OX line showed to be improved stress tolerance that especially increased in 200mM NaCl but was similar on mannitol media. In greenhouse, WT and CsRCI2D/H OX lines for physiological analysis and productivity under abiotic stresses were treated 100, 150, 200mM NaCl. Then it was measured various parameters such as leaf width and length, plant height, total seed weight, flower number, seed number. CsRCI2H OX line in greenhouse did not show any changes in physiological parameters but CsRCI2D OX line was improved both physiological response and productivity under NaCl stress. Among physiological parameters of CsRCI2D OX line under NaCl stress, leaf length and width were observed shorter than WT but it were slightly longer than WT in 200mM NaCl stress. Furthermore, total seed weight of CsRCI2D OX line under stress displayed to decrease than WT in normal condition, but it was gradually raised with increasing NaCl stress then more than WT relatively. These results suggested CsRCI2D might be contribute to improve abiotic stress tolerance. However, function of CsRCI2H is need to more detail study. In conclusion, overexpression of CsRCI2s family can generate various environmental stress tolerance plant and may improve crop productivity for bio-energy production.
Proceedings of the Korean Society of Plant Biotechnology Conference
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2005.11a
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pp.95-105
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2005
Transposon-mediated insertional mutagenesis provides one of the most powerful tools for functional studies of genes in higher plants. This project has been performed to develop a large population of insertional mutations, and to construct databases of molecular information on Ds insertion sites in rice. Ultimate goals are to supply genetic materials and information to analyze gene function and to identify and utilize agronomically important genes for breeding purpose. Two strategies have been employed to generate the large scale of transposon population in a Japonica type rice, Dongjin Byeo; 1) genetic crosses between Ac and Ds lines and 2) plant regeneration from seeds carrying Ac and Ds. Our study showed that over 70% of regenerated plants generally carried independent Ds elements and high activity of transposition was detected only during regeneration period. Ds-flanking DNA amplified from leaf tissues of F2 and T1 (or T2) plants have been amplified via TAIL-PCR and directly sequenced. So far, over 65,000 Ds lines have been generated and over 9,500 Ds loci have been mapped on chromosomes by sequence analysis. Database of molecular information on Ds insertion sites has been constructed, and has been opened to the public and will be updated soon at http://www.niab.go.kr. Detailed functional analysis of more than 30 rice mutants has been performed. Several Ds-tagged rice genes that have been selected for functional analysis will be briefly introduced. We expect that a great deal of information and genetic resources of Ds lines would be obtained during the course of this project, which will be shared with domestic and international rice researchers. In addition to the Japonica rice, we have established the tagging system in an rice line of indica genetic background, MGRI079. MGRI079 (Indica/Japonica) was transformed with Agrobacteria carrying Ac and Ds T-DNA vectors. Among transgenic lines, we successfully identified single-copy Ds and Ac lines in MGR1079. These lines were served as ‘starter lines’ to mutagenize Indica genetic background. To achieve rapid, large scale generation of Ds transposant lines, MGR1079 transformants carrying homozygous Ac were crossed with ones with homozygous Ds, and $F_2$seeds were used for plant regeneration. In this year, over 2,000 regeneration plants were grown in the field. We are able to evaluate the tagging efficiency in the Indica genetic background in the fall.
Hypocotyl explants of Chinese cabbage (cvs. "Jeong Sang") produced transgenic calli on callus induction medium (MS salt, B5 vitamin, 5 mg/L acetosyringone, 1 mg/L 2,4-D, 3% sucrose, 400 mg/L cefotaxime, 100 mg/L paromomycin, pH 5.8) after cocultivation with strains of Agrobacterium tumefaciens (EHA101, LBA4404, GV3101) harboring the pPTN290 containing paromomycin-resistance gene as a selectable marker, and then they transferred to root induction medium (1/2MS salt, MS vitamins, 2% sucrose, 100 mg/L paromomycin, 100 mg/L cefotaxime, pH 5.8) and shoot induction medium (MS salt, B5 vitamin, 4 mg/L $AgNO_3$, 4 mg/L 6-benzyladenine, 3 mg/L alpha-naphthaleneacetic acid, 100 mg/L paromomycin, 100 mg/L cefotaxime, 3% sucrose, pH 5.8) in order. There was a significant difference in the frequency of transgenic calli depending on Agrobacterium strains. In particular, the highest frequency (6.1%) of transgenic calli was obtained from the hypocotyls cocultivated with EHA101 strains. Also, the frequency (%) of transgenic root and plants from each transgenic callus clone were obtained with 60.7% and 38.2% in EHA101, with 8.3% and 0% in LBA4404, with 20.5% and 85.7% in GV3101 strains, respectively. They were grown to maturity in a greenhouse and normally produced $T_2$ seeds. GUS histochemical assay for progeny ($T_2$) revealed that the transgenes was expressed in the plant genome, and progeny analysis from 7 independent transgenic events demonstrated that the transformants transmitted the transgene as a single or multiple functional locus.
Rice is one of the most important cereal crops as a model plant for functional genomics of monocotyledons and usually transformed using Agrobacterium tumefaciens. However, the transformation's process using previous method is still time consuming and uneconomical, low efficiency. In this study, we established a new method by modifying the general Agrobacterium protocol especially in the infection and co-cultivation, Agrobacterium elimination, infected calli's selection steps using liquid media. We directly inoculated Agrobacterium containing a ZjLsL gene under the control of constitutive promoter into the 1- to 3-week-old rice calli derived from mature seeds. After 3 days of co-cultivation, the infected calli were transferred onto liquid media of Agrobacterium elimination and calli's selection for 3 days. The calli were transferred to calli's growth solid media for 14 days and then the calli transferred to shoot induction and root induction media. Putative transformants were initially selected on the medium containing phosphinothricin, and the PAT protein verified by PAT strip test. This method in this study would lead to reduction of substantial labor and time to generate transgenic plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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