The bipinnate-compound leaf of Parkia clappertoniana has prominent, long petiole with a pulvinal base. The pulvinus has wood, periderm, lenticels and extensive cortical layer. Its vascular bundles are elongated with alternating rays. The vascular bundles of the petiole, rachis and veins are oval, with conspicuous bundle caps. Stomatal complex is predominantly paracytic with occasional occurrence of anomocytic stomata near the midrib. The oval stomata have conspicuous stomatal ledges. Trichomes are unicellular, acicular and restricted to the rachis, petiole and pinnule mid-ribs and margin. Ecological and taxonomic significance of features is discussed.
A comparative study of leaf epidermal microstructures in genus Aruncus (two species, five varieties) was carried out using scanning electron microscopy in order to evaluate their significance in terms of taxonomy. All of the leaves of the taxa studied here were amphistomatic with undulate anticlinal walls, and smooth and flat periclinal walls on both surfaces. The size range of the stomata complex is $8.95-21.97{\times}7.50-16.99{\mu}m$: the largest one was found in Aruncus dioicus var. astilboides (average $18.01{\times}13.47{\mu}m$) and the smallest was measured and determined to be A. gombalanus (average $11.11{\times}8.94{\mu}m$). An anomocytic stomata complex was found in all of the studied taxa. The stomatal frequency on average was $27.54/0.05mm^2$; it is highest in A. gombalanus ($60.4/0.05mm^2$) and lowest in A. dioicus var. acuminatus ($11.6/0.05mm^2$). Two types (short stalked capitate glandular trichome and non-glandular trichome) of trichomes are found in the leaves. The non-glandular trichome was divided into three types based on the presence and degree of development of subsidiary cells. Anomocytic stomata of the hypostomatic type and the distribution pattern of capitate glandular trichomes were the major characters in this genus. The stomata size and frequency, the epidermal cell structure, the trichome type and the distribution pattern may have diagnostic importance among the taxa in the genus. Our leaf micromorphological results provide useful information for the taxonomic revision of the genus Aruncus.
To examine the leaf epidermal microstructure of three genera (Scopolia s.s., Anisodus, AtroPanthe, including Przewalskia as an outgroup) in the genera Scopolia Jacq. s.l., leaves of 10 species (37 specimens) were investigated by the light microscopy (LM) and scanning electron microscopy (SEM). The stomata of studied taxa were 'amphistomatic type' and the size (guard cell) range was $18-64{\times}11-48{\mu}m$. The size of stomata is slightly differed from between the taxa; the smallest size of stomata were found in the monotypic genus, Przewalskia ($24-27{\times}16-17{\mu}m$), on the other hand the largest one was found in Anisodus carniolicoides ($62-64{\times}43-48{\mu}m$). The stomatal complex was mostly anomocytic (in Scopolia s.s., Anisodus taxa : A. luridus, A. carniolicoides, A. acutangulus) and sometimes anisocytic (in Anisodus tanguticus, Przewalskia, Atropanthe). The stomata is mostly crescent in shape, but rarely circular, especially in Przewalskia tangutica. The shapes of epidermal cells are similar in both adaxial and abaxial sides, and mostly undulate/sinuate polygonal anticlinal wall, but rarely arched in Przewalskia tangutica. The epicuticular wax was not well developed in most studied taxa, except Anisodus tanguticus which is well developed cuticular striae around the stomatal complex. The elongate-headed glandular trichomes were found in Scopolia s.s. and Przewalskia. While the taxa of Anisodus and Atropanthe have not any trichomes (i. e., glabrous), except Anisodus luridus, which has simple or sometimes branched (dendritic- type) non-glandular trichome. Finally, the systematic and ecological significance of the leaf micromorphological features (stomata complex, trichome, etc.) in identification and elucidation of Scopolia s.l. including Przewalskia, especially between or within the genera including among the species is also discussed.
Microbial digestion of feed in the rumen involves a sequential attack culminating in the formation of fermentation products and microbial cells that can be utilized by the host animal. Most feeds are protected by a cuticular layer which is in effect a microbial barrier that must be penetrated or circumvented for digestion to proceed. Microorganisms gain access to digestible inner plant tissues through damage to the cuticle, or via natural cell openings (e.g., stomata) and commence digestion from within the feed particles. Primary colonizing bacteria adhere to specific substrates, divide to form sister cells and the resultant microcolonies release soluble substrates which attract additional microorganisms to the digestion site. These newly attracted microorganisms associate with primary colonizers to form complex multi-species consortia. Within the consortia, microorganisms combine their metabolic activities to produce the diversity of enzymes required to digest complex substrates (e.g., cellulose, starch, protein) which comprise plant tissues. Feed characteristics that inhibit the microbial processes of penetration, colonization and consortia formation can have a profound effect on the rate and extent of feed digestion in the rumen. Strategies such as feed processing or plant breeding which are aimed at manipulating feed digestion must be based on an understanding of these basic microbial processes and their concerted roles in feed digestion in the rumen.
A comparative study of the leaf epidermal micromorphology in the tribe Neillieae (Neillia: 4 species, 4 varieties; Physocarpus: 5 species; Stephanandra: 2 species) was carried out using scanning electron microscopy in order to evaluate the taxonomic and systematic implications of these characteristics. The leaves of the genera Neillia and Stephanandra were hypostomatic, whereas those of P. monogynus, P. opulifolius were amphistomatic. The range of the size of the stomata is $12.02-34.39{\times}10.76-27.13{\mu}m$; the smallest was found in N. thyrsiflora (average $13.98{\times}12.43{\mu}m$; $L{\times}W$), while the largest was measured in N. gracilis (average $26.82{\times}20.67{\mu}m$; $L{\times}W$). Paracytic stomata complexes are only found in N. affinis, and the anomocytic type was most commonly found. The papillate epidermal cell type was only observed on the abaxial surfaces of P. insularis. Platelet epicuticular waxes were found on the adaxial surfaces of N. affinis and S. tanakae. Four types (unicellular non-glandular, two- to five-armed, stellate, and glandular) of trichomes were found on the leaves. Stellates were observed in all species of Physocarpus except for P. insularis. Consequently, leaf epidermal micromorphological characteristics (e.g., the presence of papillate epidermal cells and stellate, and stomata complexes) may have high taxonomic and systematic value in Neillieae. Our results strongly support previous molecular phylogenetic and palynological hypotheses that Stephanandra and Neillia are a single genus and that Physocarpus insularis should be considered as a member of Spiraea.
A comparative study of leaf epidermal microstructures in the tribe Sorbarieae (Adenostoma: 3 spp., Chamaebatiaria: 1 sp., Sorbaria: 11 spp., Spiraeanthus: 1 sp.) including related genera Gillenia (2 spp.) and Lyonothamnus (2 spp.) was carried out using scanning electron microscopy (SEM) in order to evaluate their significance in taxonomy. The leaves of Adenostoma, Chamaebatiaria, and Spiraeanthus were amphistomatic, whereas Gillenia, Lyonothamnus, and Sorbaria were hypostomatic. The size range of the guard cells is $7.84-48.7{\times}5.86-38.6{\mu}m$; the smallest one was found in Sorbaria tomentosa var. tomentosa ($7.84-11.8{\times}6.84-10.5{\mu}m$), while the largest measured example was Adenostoma fasciculatum var. obtusifolium ($30.3-48.7{\times}18.8-38.6{\mu}m$). Anomocytic stomata complex were the most frequent type (rarely cyclocytic), with usually both anomocytic and actinocytic types occurring in one leaf. On the surfaces, both the adaxial and abaxial anticlinal walls of the subsidiary cells vary (e.g., straight/curved, undulate, sinuate). Four types (unicellular non-glandular trichome, stellate, glandular trichome, pustular glandular trichome) of trichomes are found in the leaves. The epicuticular wax can be divided two types: membraneous platelets (Lyonothamnus) and platelets (Sorbaria arborea var. arborea, S. arborea var. subtomentosa, S. kirilowii, S. tomentosa var. tomentosa, Spiraeanthus schrenkianus). The trichome diversity (in particular, stellate, gland) and the existence of epicuticular wax may have taxonomic significance, although the leaf epidermal micromorphological characteristics do not provide synapomorphy in this tribe. These leaf micromorphological features are most likely better understood in the Sorbarieae when used in conjunction with external morphological characters.
To examine the leaf epidermal microstructure, nine species in five genera (Daphne L. - 4 spp., Diarthron Turcz. - 1 sp., Edgewarthia Meisn. - 1 sp., Stellera L. - 1 sp., Wikstroemia Endl. - 2 spp.) of the Korean Thymelaeaceae were investigated by light microscopy (LM) and scanning electron microscopy (SEM). The stomata of stuo야ed taxa were 'hypostomatic type' and the size range of guard cell was $13.8-34.4{\times}8.7-22.9{\mu}m$: the smallest size of stomata was found in Diathran linifolium ($15.9{\pm}2.6{\times}10.0{\pm}1.3{\mu}m$), while the largest one was measured to Daphne adara ($32.8{\pm}1.6{\times}20.7{\pm}1.3{\mu}m$). The stomatal complex was anomocytic in the most studied taxa, except Daphne kiusiana by having combined with anisocytic together. The shapes of epidermal cells are undulate anticlinal wall. The size range of epidermal cell was $20.7-61.0{\mu}m$; the smallest size of epidermal cell was found in Stellera charnaejasme ($26.0{\pm}1.9{\mu}m$), on the other hand the largest one was found in Edgeworthia chrysantha ($53.6{\pm}3.1{\mu}m$). The well-developed flaky epicuticular waxes can be divided three kinds of pattern - (1) smooth in comparison, not entire platelets and scattered, (2) isolated flake-like platelets, mostly paralleled, sparsely, (3) flake-like platelets, flat, membraneous, protruding from the surfaces at varying angles and densely. Two types of trichome are recognized; (1) Type I: uniseriate trichome of striate surface (D. genkwa, Diarthron linifalium, E. chrysantha, W. ganpi and W. trichotama), (2) Type II: multicellular trichome of papillose surface, uncinated 3-4 nodes (Diathron linifolium). Finally, the systematics significance of the leaf micromorphological features in identification and elucidation of Korean Thymelaeaceae, especially between or within the genera including among the species is also briefly discussed.
The effects of light and $CO_2$ on the electrophysiological characteristics of guard cells in the intact leaf and isolated epidermis have been investigated. Fast hyperpolarization of guard cell apoplastic PD in the intact leaf was recorded reaching up to around 7 mV and 20 mV in response to light and $CO_2$. Whenever the experiments were attempted with isolated epidermis, there was no response to light and $CO_2$. In order to determine the influence of the mesophyll cells, the apoplastic PD of guard cells in isolated epidermis was measured in the presence of the mesophyll supernatant or the control medium. The apoplastic PD in isolated epidermis was hyperpolarized to -7mV, changing from -22mV to -29mV at 40 min. But, when isolated epidermis was incubated with the supernatant from mesophyll cells incubated in the light, the apoplastic PD in isolated epidermis was hyperpolarized to -19 mV, changing from -22 mV to -40.5 mV. $CO_2$ also caused a change of 0.1 to 0.3 pH unit in the intact leaf. However, this change was absent in isolated epidermis. A vibrating probe was used to detect the change in electrical currents at the surface of excised intact leaves and isolated epidermis. The reading of excised intact leaves in the dark was $0.5\muA\;cm^{-2},$ remaining steady until illuminated. Light increased the current on the surface of excised leaves to about $0.8\muA\;cm^{-2},$. However, light had no effect in the current on the surface of isolated epidermis. Apoplastic pH changes across the stomatal complex in response to light and dark were measured both in the intact leaves and isolated epidermis over the same time period using pH micro-electrodes. The guard cell wall of intact leaf was acidified to 2.5 pH unit, falling from pH 7.5 to pH 5.0 in the first 10 min. in the light. At the same time the guard cell wall pH of isolated epidermis fell from pH 7.5 to pH 7.0 at 10 min. The guard cell wall pH of isolated epidermis incubated in the mesophyll supernatant fell from pH 7.6 to pH 6.7 at 10 min. Likewise, It could be imagined that an electrical signal, chemicals and hormones propagated from the mesophyll in response to light and $CO_2$ could control a fast stomatal response.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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