ICV infusion of morphine (MOR) produces strong analgesia in man and animals. The analgesic effect is thought to be mediated by the centrifugal inhibtory control, But neural mechanisms of the analgesic effect of ICV morphine are not well understood. For example, in the previous studies, ICV morphine does not inhibit nociceptive transmission in the spinal cord. On the contrary, ICV MOR often excites activity of dorsal horn neuron in the spinal cord. In the present study, we found that ICV MOR had dust actions on activity of dorsal horn neuron that it produced both inhibition and excitation of dorsal horn neurons. Since MOR exerts i Is action via three different types of opioid receptors, we further sought to investigate if there are differential effects of opioid receptor agonists on dorsal horn neurons when administered ICV.
The purpose of present study was to compare the effects of somatostatin (SOM) and morphine (Mor) on the responses of wide dynamic range (WDR) cells to peripheral noxious stimulation. Single neuronal activity was recorded with a carbon-filament electrode at the lumbosacral enlargement of cat spinal cord. After identifying WDR cells, their responses to peripheral noxious mechanical or thermal stimuli were characterized and the effects of SOM and Mor, applied either iontophoretically or intrathecally, were studied. In most cells SOM and Mor suppressed noxious stimulus-evoked WDR neuronal activity, though a few WDR neurons showed no change or were excited by SOM and Mor. Systemically applied naloxone, a non-specific opioid antagonist, always reversed the Mor induced suppression of neuronal activity evoked by noxious mechanical stimuli, but did not always reverse the suppression of neuronal activity elicited by SOM. The suppressive effect of Mor on thermal stimulus-evoked neuronal activity was partially reversed by naloxone, while that of SOM were not reversed at all. The above results suggest that both Mor and SOM exert an inhibitory effect on thermal and mechanical stimulus-evoked WDR neuronal activity in cat spinal dorsal horn, but the mechanisms are dependent upon the functional populations of dorsal horn nociceptive neurons.
Intracerebroventricular (ICV) infusion of morphine (MOR) produces strong analgesia in man and animals. The analgesic effect is thought to be mediated by the centrifugal inhibitory control. But neural mechanisms of the analgesic effect of ICV morphine are not well understood. In the present study, we found that ICV MOR had dual actions on the activity of dorsal horn heurons: it produced both inhibition and excitation of dorsal horn neurons. Since MOR exerts its action via three different types of opioid receptors, we further sought to investigate if there are differential effects of opioid receptor agonists on dorsal horn neurons when administered intracerebroventricularly. Effects of ICV MOR were tested in 28 dorsal horn neurons of the spinal cord in the cat. ICV MOR inhibited, excited and did not affect the heat responses of dorsal horn neurons. ICV DAMGO and DADLE, $\mu$- and $\delta$-opioid agonist, respectively, exhibited the excitation of dorsal horn neurons. In contract, U-50488, a k-opioid agonist, exhibited both the inhibition and excitation of dorsal horn neurons. These results suggest that opioid receptors have different actions on activity of dorsal horn neuron and that the inhibitory action of k-opioid agonist may subserve the analgesia often produced by ICV MOR.
A 8-month-old, spayed female, Domestic shorthair cat lived in a shelter was presented with pelvic limbs ataxia and dysuria. Serum biochemical profile abnormalities were hyperproteinemia and decreased albumin/globulin (A:G) ratio (0.70). Results of cerebrospinal fluid (CSF) analysis were mixed cells pleocytosis with predominance neutrophils and an increase in protein concentration. In addition, feline coronavirus was detected by realtime RT-PCR in CSF. Magnetic resonance imaging (MRI) findings revealed lesions of the lumbar spinal cord. Based on clinical signs, MR finding, CSF analysis and realtime RT-PCR result in CSF, this case was diagnosed as feline infectious peritonitis (FIP) associated meningomyelitis. Although prednisolone and mycophenolate mofetil were administrated, clinical signs were not resolved and progressed to tetraplegia and coma status. This case presentation describes that feline infectious peritonitis virus could affect the lumbar spinal cord only and cause meningomyelitis with pelvic limbs ataxia without other neurological signs.
Effect of clonidine on the dorsal horn cell responses to mechanical stimulations were studies in 3 spinalized cats and 10 cats with intact spinal cord. The type of dorsal horn cells was determined according to their response patterns to four graded mechanical stimulations (brush, pressure, pinch and squeeze) applied to the respective receptive fields. In the present study the results obtained only from the wide dynamic range (WDR) cells were included. The responses of the WDR cells to noxious mechanical stimuli were selectively suppressed following intravenous administration of clonidine into the experimental animals. The clonidine-induced changes in responses of the WDR cells to mechanical stimulation were not affected by naloxone or propranolol whereas effect of clonidine on WDR cell responses was almost completely abolished after intravenous administration of yohimbine. Also in the spinalized cats results parallel to those observed in cats with intact spinal cord were obtained. The results of present study strongly implies that analgesic action of clonidine can be mediated through excitation of ${\alpha}_{2}-adrenoceptor$ even at the spinal cord level without supraspinal mechanism.
Signalment: A 7-month-old, female domestic shorthaired cat was presented for acute pelvic limb paraparesis. Results: There was no abnormality on survey radiographs and blood analysis, however neurological examination revealed proprioception positioning and hopping was absent in the pelvic limbs. Also, anal tone and perineal sensation were reduced. Magnetic resonance (MR) imaging showed nucleus pulposus dehydration and disc protrusion at T12-T13. Ill-defined diffuse lesion was found at T10-L2 level and it showed isointense on T1-weighted images and hyperintense on T2-weighted and FLAIR images. This lesion was considered as edematous lesion secondary to disc protrusion. The presumptive diagnosis was focal spinal cord edema associated with intervertebral disc protrusion. A traumatic aetiology was suspected. The cat was treated corticosteroids and analgesic and clinical sign improved following 9 days of treatment. Clinical relevance : Intervertebral disc protrusion is rare disease in a cat. However, it could be considered as a cause of paraparesis in cats.
Although the existence of nerve cells which determine the activity of sympathetic nervous system in ventrolateral medulla is advocated recently, there are wide varieties on the location and function of them according to authors. Present study aimed to identify and characterize the medullospinal tract cells in rostral and caudal medulla of cats .which branch to the lateral horn of the upper thoracic spinal cord. Cats were anesthetized with ${\alpha}-chloralose$. The upper thoracic spinal cord and floor of the IVth ventricle were exposed. Medullospinal tract cells in rostral and caudal medulla were identified by anti-dromic stimulation of the intermediolateral nucleus in the upper thoracic cord and then the location and physiological characteristics of these cells were studied. A total of seventy cells in medulla had constant latency and responded to high frequency stimulation to thoracic cord. Among them fifty-six cells were identified as medullospinal tract cells either by collision with spontaneous activities or activities evoked by sciatic nerve stimulation(27/56), or by determining the refractory period (29/56). Thirty-one of these cells branched to the contralateral thoracic spinal cord, twenty-one cells to the ipsilateral side and remaining four cells branched to both sides. The conduction velocity of cells branching to the contralateral side was $29{\pm}2.9\;m/sec$ and that of cells to the ipsilateral side was $39.1{\pm}6.0\;m/sec$. When medulla was devided into two by a horizontal plane at 3 mm rostral to the obex, fifty-one among seventy cells were in the rostral medulla and nineteen were in the caudal medulla. The conduction velocities of these two groups were $21.6{\pm}1.0\;and\;33.3{\pm}3.9\;m/sec$, respectively. In this study, we confirmed the existence of two groups of medullospinal tract cells in rostral and caudal ventrolateral medulla, which branch to the lateral horn of thoracic cord and these cells have relatively few spontaneous activities and rapid conduction velocity, so we concluded that these cells are different from the previously known sympatho-related cells in ventrolateral medulla.
This study was aimed to investigate whether the conduction velocity of nerve impulses through the ventral afferent fibers is constant along their entire courses in dorsal as well as in ventral roots. Cats were anesthetized with ${\alpha}-chloralose$ (60 mg/kg, i.p.) and artificially ventilated. Laminectomies were done on L4-S1 spinal vertebrae to expose the lumbosacral spiral cord. Both ventral and dorsal roots of L7 or S1 spinal segments were isolated and cut near the spinal cord. Ventral roots were placed on 6-lead stimulating electrodes and stimulated with supra C-threshold intensity. Divided dorsal root fascicles were placed on bipolar recording electrodes and single fiber units activated by the stimulation of the ventral roots were identified. Followings are the results obtained: 1) A total of 27 VRA units were identified. 10 units of them conducted impulses slower than 2 m/sec. Conduction velocities of the remaining units were in the range of 3.11-20.91 m/sec. 2) In 12 Units conduction velocities Of the VRA units through dorsal$(CV_{DR})$ and venral root$(CV_{DR})$ were determined respectively. There was a tendency to conduct impulses faster through dorsal roots$(CV_{DR}=8.19{\pm}3.26\;m/sec)$ than ventral roots$(CV_{DR}=3.46{\pm}1.02\;m/sec)$. From the above results we confirmed that there exist nerve fibers in continuity between the spinal ventral and dorsal roots but we could not ascertain whether there is a change in conduction velocity through the entire course of ventral afferent unit.
This study was performed to investigate the mechanism of changes in arterial blood pressure, as a typical example of somatosympathetic reflex, induced by activation of muscular afferent nerves. Cats were anesthetized with ${\alpha}-chloraloae$ (60 mg/kg, i.p.). Afferent fibers in muscle nerve were activated by various method muscle contraction, electrical stimulation of muscle nerves, intraarterial injection of some algesic substances and noxious mechanical stimulation etc-and the evoked changes in arterial blood pressure were monitored. The effects of intravenous or direct spinal administration of morphine on the changes in arterial blood pressure induced by activation of the muscle afferent fibers were observed and also the effects of spinal lesions made in the $L1{\sim}L3$ spinal cord on them were studied to identify the ascending spinal pathways of the somatosympathetic reflexes. Followings are the results obtained. 1) The stimulation of medial gastrocnemius nerve under non-paralyzed condition with C-strength, low frequency (lower than 20 Hz) stimuli elicited a depressor response and a pressor response was elicited with C-strength, high frequency stimuli, of which the maximal response was observed at 100 Hz stimulation. 2) When the animal was paralyzed, depressor response to stimulation of the medial gastrocnemius nerve was observed with C-strength, $0.5{\sim}5Hz$ stimuli although the amplitude of the depressor response was decreased. The maximal pressor response was observed during stimulation with C-strength, $20{\sim}100Hz$ stimuli. 3) Intraarterial injection of some algesic substances induced marked pressor responses while noxious mechanical stimulation of the medial gastrocnemius muscle was not enough to elicit any significant changes (larger than 10 mmHg) in arterial blood pressure. 4) Systemically administered morphine (2 mg/kg) lowered the arterial blood pressure immediately and persistently and it was reversed by administration of naloxone. Direct spinally administered morphine did not elicit any changes. 5) The pressor response elicited by the activation of muscle afferent nerves was strengthened by systemic morphine administration while the depressor response tended to decrease. 6) Morphine administered on the spinal cord directly, decreased pressor response but did not change depressor response. From the above results it is concluded that there are separate groups of afferent nerves in the medial gastrocnemius nerve, which elicit pressor and depressor responses and the spinal ascending pathways of them are also separated from each other.
Effect of intravenously injected clonidine on the flexion reflex was studied in 15 decerebrated and spinalized cats. The flexion reflex was elicited by electrical stimulation of the tibial nerve or the common peroneal nerve and it was recorded as single unit activity from filaments of the L6 or L7 ventral roots. In order to obtain the late flexion reflex discharges, $A{\delta}$ and C afferent fibers were stimulated with single or train electrical pulses respectively. The flexion reflex, especially the late component, was markedly inhibited after intravenous administration of clonidine. The clonidine-induced inhibition of the flexion reflex was compared before and after treatment of the animals respectively with yohimbine and naloxone. The inhibitory effect on the flexion reflex of clonidine was not altered by naloxone, a ${\mu}-opioid$ receptor blocker, whereas it was completely blocked by yohimbine, an ${\alpha}_2-adrenergic$ antagonist. These results indicate that clonidine inhibits the flexion reflex through excitation of ${\alpha}_2-adrenoceptors$ even at the spinal cord level.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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