Bovine immature oocytes cultured for various times in TC-199 medium were inseminated with frozne-thawed spermatozoa in TC-199 medium supplemented with caffeine(5mM) and heparin(10$\mu\textrm{g}$/ml). Sperm penetraton was possible in oocytes at any stage of maturation, but penetration rates were lower in oocytes inseminated 0~16h (60~76%) than 20h (98%) after culture. Formation of male and female pronuclei were first observed in oocytes inseminated 8h after cultrue. Formation of male and female pronuclei were first observed in oocytes inseminated 8h after culture. The proportions of polyspermy were high(50~76%) in oocytes inseminated at any stage of maturation. Sperm penetration into oocytes at the GV stage started at 8h after insemination and the penetration rates gradually increased as time after insemination proceeds. The proportion(35%) of oocytes matured beyond metaphase-II 20h after sperm-oocytes incubation was low. When oocytes were incubated without spermatozoa in TC-199 medium, maturation rates were significantly higher (P<0.001) in those without(45 and 84% for 16 and 20 h) than with (0 and 36% for 16 and 20 h) caffeine and heparin. These results indicate that TC-199 medium with caffeine and heparin is not suitable for maturation and fertilization of immature oocytes and may inhibit male pronuclear formation in the cytoplasm.
This study was carried out ot investigate effect of pH stimulation on acrosome reaction of bovine spermatozoa. The results obtained were as follows : 1. When sperm was sequentially washed with SHP solution of pH 7.4, 7.7 and 7.4 and incubated in mTALP solution of pH 7.4 for 120min, 15, 30, 60 and 120min incubations showed significantly(p<0.05) higher sperm acrosome reaction rate than 0 min. 2. When sperm was sequentially washed with SHP solution of pH 7.4, 8.0 and 7.4 and incubated in mTALP solution of pH 7.4 for 15 minutes, sperm acrosome reaction rate was significantly(p<0.01) increased until 9 min. Incubation, but not increased thereafter. 3. When sperm were separately washed with SHP solutions of pH 7.0, 7.4 and 8.0 and incubated in mTALP solution of pH 7.4 for 9min, sperm acrosome reaction rate was 74.8, 71.8 and 93.4%. pH 8.0 showed signifciantly(p<0.01) higher sperm acrosome reaction rate than pH 7.0 and 7.4. The results suggest that stimulation of sperm with high pH induces sperm crosome reaction.
Multiple ejaculates were collected from four male mongrel dogs. The second fraction and the small volume of third fraction from the ejaculates were divided and treated as follows : control; addition of the egg-yolk Tris extender to the semen at $37^{\circ}C$. group I; Removal of seminal plasma, group II; addition of the glycerolated extender at $4^{\circ}C$, group III Removal of seminal plasma and addition of glycerolated extender at $4^{\circ}C$. The semen cooled to $4^{\circ}C$ was equlibrated for 2hrs and preserved in refrigerator at $4^{\circ}C$. The preserved semen was evaluated for kinetics, morphology, motility and thermoresistance daily for 3 days. 1. The kinectics after preserved days 2 and 3 of group I was significantly higher than that of control(p<0.05). 2. There were no significant difference in abnormal morphology of each group between the periods of storage. 3. The motility after preserved day 1 and days 3 of group I was significantly higher than that of others(p<0.05), and the molity after preserved days 2 of group I and III was signficantly higher than that of others(p<0.05). 4. When the molity of preserved semen was measured during incubation at $37^{\circ}C$, the motility of four groups was declined at similar rates. There was no effect of removal of seminal plasma and glycerol addition on thermoresistance.
Davallialactone (DAVA) is a hispidin analogue derived from the medicinal fungus Phellinus baumii. We examined the effect of DAVA on in vitro fertilization (IVF) of pigs. Boar spermatozoa were incubated in fertilization medium with varying concentrations of DAVA, then sperm motility and reactive oxygen species (ROS) level were evaluated. Higher sperm motility was found following the addition of 0.5 or $1{\mu}M$ DAVA after incubation than addition of other concentrations or controls. ROS level decreased significantly with the addition of DAVA. The rate of normal fertilization was higher in the presence of $1{\mu}M$ DAVA (65.1%) than were those of other concentrations or controls (45.4~59.4%), and the highest total fertilization rate (mono- and polyspermic oocytes) was observed at $1{\mu}M$ DAVA (83%). In conclusion, addition of DAVA to fertilization medium improved sperm motility, and reduced ROS level so as to potentially improve sperm-oocyte binding in IVF, suggesting the potential of a compound isolated from mushrooms in assisted reproductive technology for humans and animals.
These experiments were carried out to obtain the basic information for in vitro fertilization and development of bovine follicular oocytes matured in vitro. The bovine ovaries were obtained at a slaughter house and the follicular oocytes surrounded by cumulus cells were collected by puncturing follicles with 2-6mm of diameter. Bovine oocytes were matured in vitro for 24-26 hours in a CO2 incubator with 5% CO2 in air at 39$^{\circ}C$. The medium used for maturation was TCM199 supplemented with hormones, pyruvate, FBS and antibiotics. Epididymal spermatozoa were capacitated by in vitro culture for 2-3 hours in BO solution containing bovine serum albumin(5mg/ml) and caffein(2.5mM). Insemination was made by introducing about 10-15 matured oocytes into the suspension of capacitated spermatozoa. Six hour after inseminatin the eggs were transferred to TCM 199 supplemented with FBS(10%) for in vitro development. The results obtained in these experiments were summarized as follows : 1. The maturation rate of oocytes following incubation for 24-26 hours was 78.4%(228/291). 2. Of total 250 oocytes, 172 embryos extruded 2nd polar body following in vitro culture with spermatozoa for 20 hours, and the rates of embryos developed to 2-, 4-, 8-, 16-cells and morula or early blastocyst were 64.0, 39.2, 22.0, 15.2 and 11.2%, respectively. 3. The time needed for development to 2-, 4-. 8-, 16-cell stage and morula was 42.5$\pm$5.4, 58.0$\pm$9.2, 74.4$\pm$11.5, 96.1$\pm$13.4 and 119.0$\pm$18.2 hours, respectively.
This study was conducted to determine the relationship between elapsed time after semen preservation on the changes of bacteria and semen quality. Semen was diluted with BTS(Beltsville Thawing Solution) extender without antibiotic for 7 days and sperm parameter and fertility were measured. Sperm motility was measured by CASA and total bacteria number was counted after 22~24 hr incubation from counting agar plate in which sperm dilute to $10{\sim}10^6$ in 0.9% saline solution and inoculate to agar. Acrosomal integrity was measured by Chlortetracycline (CTC) staining. CTC patterns were uniform fluorescence over the whole head (pattern F), characteristic of incapacitated acrosome-intact spermatozoa; fluorescence-free band in the post-acrosomal region (pattern B), characteristic of capacitated acrosome-intact spermatozoa; and almost no fluorescence over the whole head except for a thin band in the equatorial segment (pattern AR), characteristic of acrosome reacted spermatozoa. Total number of bacteria was significantly increased (p<0.0001) 3 days after preservation. Sperm motility, viability, and morphological abnormality on elapsed time after preservation were lower from 5 ($77.24{\pm}6.47$, p<0.001) and 7 days ($77.24{\pm}6.47$, p<0.001) after preservation compared to 1 ($15.71{\pm}7.18$) and 3 days($18.39{\pm}7.22$) after preservation, respectively. Sperm viability was significantly lower ($53.25{\pm}35.03$, p<0.0001) at 7 days after preservation. Morphological abnormality of sperm was lower (p<0.001) at 1 ($15.71{\pm}7.18$) and 3 ($18.39{\pm}7.22$) days compared to 5 ($21.84{\pm}7.91$) and 7 ($22.59{\pm}9.93$) days after preservation. Acrosomal integrity and capacitation rate (pattern F) were significantly lower (p<0.001) from 5 days after preservation. Based on the data we obtained from this study suggested that semen preserved more than 5 days without antibiotic would not recommend use for artificial insemination.
Background: There are no guidelines for the optimal incubation time or temperature to improve pregnancy outcomes in testicular sperm extraction-intracytoplasmic sperm injection (TESE-ICSI) cycles. We aimed to evaluate whether a 24-hour in vitro culture of testicular spermatozoa affects pregnancy outcomes in TESE-ICSI cycles. Methods: This was a retrospective study of 83 TESE-ICSI cycles using testicular spermatozoa in 46 couples with male partners suffering from nonobstructive or obstructive azoospermia. Sperm retrieval was performed either on the oocyte retrieval (OR) day (65 cycles in 33 couples; group A) or on the day before OR (18 cycles in 13 couples; group B) followed by in vitro culture for 24 hours. The clinical characteristics and pregnancy outcomes, including the number of retrieved oocytes, fertilization rates, embryo transfer rates, implantation and clinical pregnancy rates, were compared between the two groups. Results: There were no differences in terms of clinical characteristics except for the levels of luteinizing hormone (LH) in males. Group B had higher LH levels than group A (4.56±1.24 IU/L vs. 3.67±1.07 IU/L, p= 0.017). Group B showed higher fertilization rate (72.4%±32.1% vs. 59.2%±21.7%, p=0.045), implantation rate (35.0%±34.1% vs. 14.0%±21.5%, p=0.010), pregnancy rate per cycle (80% vs. 39%, p=0.033), and clinical pregnancy rate per cycle (80% vs. 37.5%, p=0.024) than those of group A. Conclusion: Testicular sperm retrieval performed on the day before OR followed by in vitro culture can potentially improve pregnancy outcomes.
본 연구는 소형견의 불임 해결과 번식효율 증진을 위해 소형견 난소 난포로부터 채취한 난자를 활성화 처리후 부고환 정자로 ICSI시켰을 때 체외발생율을 조사하기 위하여 수행하였다. 1. 난포란을 회수 후 24, 48시간 배양하였을 때 배양시간에 따른 GV, MI, MII로의 체외발생율은 각각 14/30(46.7%), 2/30(6.7%), 8/30(26.7%)였고 48시간 배양 시간에 따른 GV, MI, MII로의 체외발생율은 각각 l1/30(36.7%), 3/30(10.0%), 9/30(30.0%)였다. 2. 난포란을 회수 후 48시간 배양하였을 때 배양액에 따른 MII로의 체외발생율은 SOF액(10/30, 30.3%)에서의 배양이 TCM-199액(7/30, 23.3 %)보다 높은 체외발생율을 나타냈다. 3. 활성화 처리 난자에 부고환 정자로 ICSI를 하였을 때 상실배와 배반포로의 체외발생율은 각각 3/16(18.8%), 4/16(25.0%)로서 비활성화 처리 난자군의 3/13(23.1%), 1/13(7.7%)에 비해 높은 체외발생율을 나타냈다. 4. 활성화 처리 난자에 신선정자, 부고환 정자 및 동결 융해한 부고환 정자로 ICSI를 하였을 때 체외발생율은 각각 8/18(44.4%), 5/16(31.3%), 2/14(14.3%)로서 동결 부고환 정자 처리군은 신선정자 처리군에 비해 낮은 체외발생율을 나타냈다.
Objective : To evaluate the effects of the reactive oxygen species (ROS) generated with a xanthine (X) and xanthine oxidase (XO) system on sperm function, the change of sperm characteristics, lipid peroxidation, and DNA fragmentation in bovine spermatozoa. Materials and Methods: ROS were produced using a combination of 1000 uM X and 50 mU/ml XO. The ROS scavengers: superoxide dismu tase (SOD) (200 U/ml) and catalase (500 U/ml) were also tested. Spermatozoa were incubated for 2 hours in BWW medium with a combination of X-XO supplemented with or without ROS scavengers at $37^{circ}C$ under 5% $CO_2$ incubator. Sperm movement characteristics by CASA (computer-aided sperm analysis), HOST (hypoosmotic swelling test), Caionophore induced acrosome reaction, malondialdehyde formation for the analysis of lipid peroxidation, the percentage of DNA fragmentation using the method of TdT-mediated nick end labelling (TUNEL) by flow cytometry were determined after 2 hours incubation. Results: The action of ROS on bovine spermatozoa resulted in a decreased in capacity for sperm motility, Ca-ionophore induced acrosome reaction and membrane integrity, an increased in malondialdehyde formation and the percentage of sperm with DNA fragmentation. In the effects of antioxidant, catalase completely alleviated the toxic effects induced by the ROS in terms of sperm function and characteristics, however SOD exhibited no capacity to reduce the toxic effects. Conclusion: The ROS can induce significant damages to sperm functions and characteristics. The useful ROS scavengers can minimized the defects of sperm function and various damages of spermatozoa.
Objective: To evaluate sperm nuclear DNA fragmentation and chromatin structure after 18 hours' incubation at room temperature. Methods: Twenty-eight male partners who participating IVF treatment were prospectively included in this study. Ejaculated sperm count and motility were assessed. The sperm was then immediately processed by the conventional swim-up method. After utilization of some of the sample for routine clinical use, the remainder of each of the samples was divided into two aliquots. One aliquot was immediately assessed for sperm nuclear DNA fragmentation (TUNEL assay) and chromatin structure (toluidine blue [TB] staining). The other aliquot was incubated at room temperature for 18 hours and then assessed by two methods. Only dark-TB sperms were considered as having abnormal chromatin structure. Data before and after extended incubation were compared using a paired Student's $t$-test. Results: Before and after extended culture, nuclear DNA fragmentation assessed by TUNEL was $4.9{\pm}4.7%$ and $7.0{\pm}6.4%$, respectively ($p$=0.008). The proportion of abnormal chromatin structure (dark-TB sperm) was $8.2{\pm}5.6%$ and $10.3{\pm}6.5%$ ($p$ <0.001), before and after incubation, respectively. Conclusion: After 18 hours' incubation at room temperature, sperm nuclear DNA and chromatin structure were significantly affected. The IVF practitioner should bear this information in mind when performing delayed insemination, especially for $in$$vitro$ maturation cycles.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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