Ruminants possess the capacity to digest very large amounts of starch. However, in many cases diets approach 60% starch and even small inefficiencies present opportunities for energetic losses. Ruminal starch digestion is typically 75-80% of starch intake. On average, 35-60% of starch entering the small intestine is degraded. Of the fraction that escapes small-intestinal digestion, 35-50% is degraded in the large intestine. The low digestibility in the large intestine and the inability to reclaim microbial cells imposes a large toll on post-ruminal digestive efficiency. Therefore, digestibility in the small intestine must be optimized. The process of starch assimilation in the ruminant is complex and remains an avenue by which increases in production efficiency can be gained. A more thorough description of these processes is needed before we can accurately predict digestion occurring in the small intestine and formulate diets to optimize site of starch digestion.
The small and the large intestine of swine represent the organs that extract nutrients from feedstuffs through digestion and fermentation and that allow their absorption and incorporation into the blood circulation. Special attention is directed towards the small intestine of young pigs since the transition to a solid diet at weaning exerts major impacts on the structural and functional integrity of the small intestine. Dietary factors involved in postweaning changes of gut morphology and biochemistry such as removal of bioactive compounds in sows milk at weaning, anti-nutritional factors in weaner diets, dietary fiber and the role of voluntary feed intake will be elucidated. The microbial function of the large intestine which is carried out by a diverse population of microorganisms is dependent on substrate availability. Short chain fatty acids as main fermentation products contribute to the energy supply of the host but they are also important for the maintenance of the morphological and functional integrity of the epithelium in the colon. As a result of bacterial nitrogen assimilation in the large intestine, nitrogen is shifted from the urinary to the fecal excretion route thus saving metabolic energy to the pig because less ammonia would become available for conversion to urea.
Lee, Phil Jun;Cho, Namki;Yoo, Hee Min;Chang, Sun-Young;Ko, Hyun-Jeong;Kim, Hong Pyo
한국식품과학회지
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제52권3호
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pp.244-248
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2020
To retain valuable resources, organisms adopt several strategies including coprophagy. Cells covering the outer skin and internal digestive lumen are actively recycled to maintain their integrity. In present study, we suggested that the small intestine can consume dead cells in a manner similar to how it consumes protein from the diet. We examined the eluates from five segments of the mouse small intestine and cecum and 2 segments of the large intestine and small intestine tissue, and detected immunoreactivity with eukaryotic caveolin-1 and β-actin antibodies only in the cecum and 2 segments from the large intestine. Bacterial agitation of the mouse intestine with Shigella disrupted the architecture and absorptive function of the small intestine. Small intestine eluates were immunoreactive with murine caveolin-1 and contained heme as determined by dot blot analysis. We concluded that the body conserves resources in the small intestine by disposing of and recycling shedded cells.
The regional distribution and relative frequency of endocrine cells in the alimentary tract of the snake, Rhabdophis tigrinus tigrinus, were investigated by immunohistochemical method using 7 antisera. Chromogranin (Cg)-, glucagon-, somatostatin-, gastrin/cholecystokinin (Gas/CCK)-, serotonin-, bovine pancreatic polypeptide (BPP)-immunoreactive cells were identified in this study. Cg-immunoreactive cells were detected throughout the alimentary tract including the esophagus, with predominant frequency in the pylorus. Numerous immunoreactive cells were observed from the esophagus to the pylorus but a few cells were detected in the large intestine. Glucagon-immunoreactive cells were observed from the proximal portions to the distal portions of the small intestine. They were increased to the middle portions but thereafter decreased, and no cells were found in the terminal portions. Somatostatin-immunoreactive cells were restricted to the small intestine and these cells were decreased toward to distal portions of the small intestine. Gas/CCK-immunoreactive cells were detected in the pylorus and small intestine. They were most predominant in the pylorus and the proximal portions of the small intestine but thereafter decreased toward to the distal regions. Serotonin-immunoreactive cells were observed throughout the alimentary tract. They were most predominant in the pylorus and proximal portions of the small intestine but a few cells were observed in the large intestine. BPP-immunoreactive cells were restricted to the distal portions of the small intestine with rare frequency. No bombesin-immunoreactive cells were found in this study.
This experiment was carried out to investigate the changes in quality of pork organs such as the meat of large intestine, small intestine and liver during frozen storage at -18$\pm$1$^{\circ}C$. The result obtained were as follows ; 1 The moisture contents in the meat of large intestine, small intestine and liver was 61.1%, 65.1% and 71.3% and the content of crude fat was 27.1%, 21.5% and 5.0% respectively, 2. Weight loss increased In the course of storage period, and liver showed the least weight loss in them. 3. Total lipid in the meat of large intestine, small intestine and liver was 24.4%, 19.2% and 4.3% respectively, and which decreased gradually in the course of storage period. 4. The content of volatile basic nitrogen in raw meat was 20 mg% within and without before storage treatment, and that of the value was 24.2 mg% within after 3 weeks storage.
닭의 대장은 해부학적, 생리학적으로 돼지의 대장이나 소의 men과 다르다. 닭의 대장은 소의 men이나 돼지의 대장에 비교하여 잘 발달되어 있지 않다. 그러나 닭의 대장속에 있는 미생물군은 rumen 속의 것과 비슷하다. 특히 닭의 맹장속에는 많은 미생물이 있으며 이 미생물군은 나이, 사료, 성성숙의 정도, 항생제 사용 유무 등에 따라서 다양하게 나타난다. 단백질은 장내의 미생물 형성에 중요한 영양소이다. 닭에서 소장의 길이는 전장 길이의 65%를 차지하며 닭의 맹장은 8.1 %그리고 직장과 공장은 4.6 %를 차지한다. 소장 내에 분포하는 미생물 군은 현재까지 약 10%가 구명된 상태로서 나머지 90%에 대한 정보는 전무하다. 최근의 연구에 따르면 에너지, 저급지방산 (VFA)과 그리고 전해물질이 대장에서 약간씩 흡수되는 것으로 알려져 있다. 닭의 소장은 각종 효소등이 분비되어 소화가 일어나는 중추적인 역할을 하는 것으로 알려져 있다. 앞으로도 많은 연구가 과당류 즉 sucrose thermal oligosaccharide caramel (STOP), fructooligosaccharides (FOS), mannanoligosaccharide (MOS), galactooligosaccharide (GOS) 그리고 isomaltooligosaccharides (IMO)등이 맹장과 대장내에서 어떻게 소화가 일어나는지에 관해서 집중되어야 한다. 과량의 섬유질 함량은 닭의 소화에 치명적일 수 있지만 적당량을 사료에 혼합하여 급여하면 소장의 길이와 함량을 증가시킬 수 있는 효과가 있다.
The present study was undertaken to determine whether combined treatment with prokinetic trimebutine and mosapride has a synergic effect on gastrointestinal motility and visceral pain associated with gastrointestinal dysfunction. To develop effective gastroprokinetic agents with greater potencies than trimebutine or mosapride for the treatment of gastrointestinal tract disease, a mixture of trimebutine and mosapride was designed and prepared. In the present study, treatment with trimebutine alone showed a dose-dependent effect on propelling movements of normal small and large intestine in mice, whereas mosapride effected only small intestine motility. Co-administration of trimebutine with mosapride, a well-established prokinetic drug, produced a synergistic influence on normal small intestine motility, but demonstrated an unclear effect on large intestine motility, with a slight tendency to reduce the propelling time. In a stress model, the small and large intestine motilities were significantly decreased. The reduction of intestine motility was restored to a normal level and the restoring effect was more pronounced in the combined treatment with trimebutine plus mosapride than treatment with trimebutine or mosapride alone. Furthermore, treatment with trimebutine plus mosapride significantly decreased acute visceral pain which was not controlled by trimebutine or mosapride alone. These data suggest that combination therapy with trimebutine plus mosapride has a synergic effect on small and large intestine motility and visceral pain control in gastrointestinal disorders.
Conceptions about functions of large & small intestine[LI & SI] were focused on the vermiculation in "Somun(素問) Yeongranbijeonron(靈蘭秘典論)". However, functions of large & small intestine includes more. In Oriental Medicine, there are sentences in "Hwangjenaegyeong(黃帝內經)" "LI manages Fluid [津] and SI manages Humor[液]" It means that LI & SI have an each role in digestion besides vermiculation. In that reason, we try to find out the meaning of the functions of LI and SI in digestion through bibliographic review. As a result, LI and SI have a digestic function by Separating the Clear which includes Fluids and Humor and the Turbid which is relatively useless to the Clear.
The turnover time of the mucosal epithelium in the small intestine(jejunum and ilium) and large interstine(cecum), and the cells in the lamina propria of the small intestine was investigated with the radioautography in mice at various times after single injection of $^3H$-thymidine. Twenty suckling mice were sacrified at each of the following time intervals after injection ; 2 hrs, 1, 3, 5. 7, 14 and 17 days. 1. The labeled index of the epithelial cells in the crypt and the villus of the small intestine averaged 98.7% and 1.3% at 2 hrs, 982% and 1.8% at 1 day, 18.7% and 81.3% at 3 days, 6.3% and 93.7% at 5 days, respectively. The labeled index of the epithelial cells of the crypt-base, the upper-crypt and the mucosal surface in the large intestine averaged 71.8%, 28.2% and 0% at 2 hrs, 45%. 54.2% and 0% at 1 day, 17.2%, 54.5% and 28.2% at 3 days, 10.2%, 32.4% and 57.4% at 5 days, respectively. This result suggested that the turnover time of all the epithelial cells migrating from crypts to villi in the direction of the villus tips was calculated to be less than 5 days, and also the longest turnover time was calculated to be no longer than 7 day. 2. The labeled index of the total cells in the lamina propria of the small intestine averaged 6.2-7% at 2 hrs to 5 days, 4.7% at 7 days 2.6% at 17 days and this index is tend to be decreased moderately at 7 days and severely at 17 days. So this result suggested that the turnover time of the cells with the shorter cycle duration in the lamina propria of the small intestine were less than 5 days and that of the cells with the longer cycle duration more than 17 days.
Objectives : The purpose of this study was to examine the effects of Alisma canaliculatum Extract (ACE) on pacemaker potentials of small and large intestinal interstitial Cells of Cajal (ICC) in mice. Methods : We used enzymatic digestions to dissociate the ICC in the small and large intestine in mice. The whole-cell patch-clamp method was used to record pacemaker potentials in ICC. Results : 1. The ICC generated the pacemaker potentials in small intestine in mice. ACE (0.1-1mg/ml) induced membrane depolarization and decreased frequency with concentration-dependent manners. 2. Pretreatment with a Ca2+ free solution, Na+ 5 mM solution or 2-APB, a nonselective cation channel blocker, stopped the small intestinal ICC pacemaker potentials. In the case of Ca2+-free solution, Na+ 5 mM solution or 2-APB, ACE had no effects on the membrane depolarizations in small intestinal ICC. 3. The ICC generated the pacemaker potentials in large intestine in mice. Membrane depolarization appears regularly in the small intestine, but irregularly in the large intestine. ACE induced membrane depolarization (0.1-1mg/ml) and increased frequency (0.1-0.5mg/ml). 4. Pretreatment with a Ca2+ free solution, Na+ 5 mM solution or 2-APB, stopped the large intestinal ICC pacemaker potentials. In the case of Ca2+-free solution, Na+ 5 mM solution or 2-APB, ACE depolarized the membrane depolarizations in large intestinal ICC. 5. In mice, intestinal transit rate (ITR) values were dose-dependently decreased by the intragastric administration of ACE. Conclusions : These results suggest that ACE can regulate the pacemaker activity of ICC and the reaction by ACE is different from the small and large intestinal ICC, and the control of the intestinal motion by ACE may be caused by many complex processes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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