Archivillin, a muscle-specific isoform of supervillin, is a component of the costameric cytoskeleton of muscle cells. The purpose of this study was to determine which protein in the skeletal muscle collaborates with archvillin C-terminus. For this purpose, a yeast two-hybrid screening of human skeletal muscle cDNA library was performed using the C-terminal region of archvillin as bait. This study shows that seven human skeletal muscle proteins, namely, nebulin, xeplin, archvillin, GAPDH, TOX4, PITRM1, and YME1L1 interact with archvillin C-terminus. Especially, xeplin is a newly discovered protein interacts with archvillin C-terminus. These results indicate that archvillin C-terminus acts as a bridge between nebulin and xeplin at costameres. Archvillin C-terminal region interacts with nebulin C-terminal region at Z-discs and interacts with xeplin at the vicinity of sarcolemma. I propose that these interactions may contribute to formation of costameric structure and muscle contraction.
[Purpose] In vivo studies have demonstrated the ergogenic benefits of eleutherococcus senticosus (ES) supplementation. ES has been observed to enhance endurance capacity, improve cardiovascular function, and alter metabolic functions (e.g., increased fat utilization); however, the exact mechanisms involved remain unknown. We aimed to determine whether ES could effectively induce fat loss and improve muscle metabolic profiles through increases in lipolysis- and lipid metabolism-associated protein expression in 3T3-L1 adipocytes and C2C12 skeletal muscle cells, respectively, to uncover the direct effects of ES on adipocytes and skeletal muscle cells. [Methods] Different doses of ES extracts (0.2, 0.5, and 1.0 mg/mL) were added to cells (0.2 ES, 0.5 ES, and 1.0 ES, respectively) for 72 h and compared to the vehicle control (control). [Results] The intracellular triacylglycerol (TG) content significantly decreased (p < 0.05 for 0.2 ES, p < 0.01 for 0.5 ES and 1.0 ES) in 3T3-L1 cells. Adipose triglyceride lipase, which is involved in active lipolysis, was significantly higher in the 1.0 ES group than in the control group (p < 0.01) of 3T3-L1 adipocytes. In C2C12 cells, the mitochondrial protein voltage-dependent anion channel (VDAC) was significantly increased in the 1.0 ES group (p < 0.01). Furthermore, we found that 1.0 ES activated both 5' AMP-activated protein kinase (AMPK) and acetyl-CoA carboxylase (ACC) in skeletal muscle cells (p < 0.01). [Conclusion] These findings suggest that ES extracts decreased TG content, presumably by increasing lipase in adipocytes and metabolism-associated protein expression as well as mitochondrial biogenesis in muscle cells. These effects may corroborate previous in vivo findings regarding the ergogenic effects of ES supplementation.
Objective: Skeletal muscle satellite cells (SMSCs) are significant for the growth, regeneration, and maintenance of skeletal muscle after birth. However, currently, few studies have been performed on the isolation, culture and inducing differentiation of goose muscle satellite cells. Previous studies have shown that C1q and tumor necrosis factor-related protein 3 (CTRP3) participated in the process of muscle growth and development, but its role in the goose skeletal muscle development is not yet clear. This study aimed to isolate, culture, and identify the goose SMSCs in vitro. Additionally, to explore the function of CTRP3 in goose SMSCs. Methods: Goose SMSCs were isolated using 0.25% trypsin from leg muscle (LM) of 15 to 20 day fertilized goose eggs. Cell differentiation was induced by transferring the cells to differentiation medium with 2% horse serum and 1% penicillin streptomycin. Immunofluorescence staining of Desmin and Pax7 was used to identify goose SMSCs. Quantitative realtime polymerase chain reaction and western blot were applied to explore developmental expression profile of CTRP3 in LM and the regulation of CTRP3 on myosin heavy chains (MyHC), myogenin (MyoG) expression and Notch signaling pathway related genes expression. Results: The goose SMSCs were successfully isolated and cultured. The expression of Pax7 and Desmin were observed in the isolated cells. The expression of CTRP3 decreased significantly during leg muscle development. Overexpression of CTRP3 could enhance the expression of two myogenic differentiation marker genes, MyHC and MyoG. But knockdown of CTRP3 suppressed their expression. Furthermore, CTRP3 could repress the mRNA level of Notch signaling pathway-related genes, notch receptor 1, notch receptor 2 and hairy/enhancer-of-split related with YRPW motif 1, which previously showed a negative regulation in myoblast differentiation. Conclusion: These findings provide a useful cell model for the future research on goose muscle development and suggest that CTRP3 may play an essential role in skeletal muscle growth of goose.
본의 연구 결과는 무기질 구리가 전사, 번역 및 번역 후의 여러 단계에서 아펠린 생합성에 억제 효과를 발휘한다는 것을 명확하게 보여준다. 그러나 바토쿠프로인디설폰산의 구리 킬레이터로 처리하면 구리의 억제 영향이 효과적으로 역전되어 포유류 골격근 세포에서 아펠린 생합성의 구리 의존적 특성이 확인되었다. 이러한 결과는 구리가 마이오카인 아펠린의 생합성 조절에 중요한 역할을 한다는 최초의 보고이며, 구리 관련한 근육감소증의 예방 및 치료의 전략 개발에 유용한 실마리를 제공할 수 있다.
Skeletal muscle cells are activated by ${\alpha}$-motorneurons which release acetylcholine at the neuromuscular junction. This results in a local depolarization of surface membrane which triggers an action potential. The action potential propagates along the surface membrane and also into the T-tubule system. In the triads T-tubules are in close connection with the terminal cisternae of the sarcoplasmic reticulum(SR). The action potential activaies T-tubule voltage sensors(DHP receptors). which activates SR Ca$^{2+}$ release channels(ryanodinc receptors). Ca$^{2+}$ have a key role in skeletal muscle in that an increase of free myoplasmic Ca$^{2+}$ concentration. The process of coupling chemical and electrical signals at the cell surface to the intracellular release of Ca$^{2+}$and ultimate contraction of muscle fibers is termed excitation-contraction coupling(ECC). Coupling of cel1 surface signals to intracellular Ca$^{2+}$ release proceeds by several mechanisms in skeletal muscle cells. This review focus on sarcopiasmic reticulum(SR) Ca$^{2+}$ releasing mechanisms from sarcoplasmic reticulum in the skeletal muscle. The mechanisms include DCCR, CICR, and HCR.
Muscular lesion was detected in a 23-month-old castrated bull encountered at Kyungsan slaughter house. The lesion appeared as fat intervening muscle fibers. The affected animal had no clinical signs. On microscopic examination, there was replacement of many muscle fibers by normal fat cells. Numerous fat cells were located between muscle fibers. Remaining skeletal muscle cells were in degenerative process, and thus abnormal skeletal muscle cells had loose fibers while normal had intact ones. The advent of inflammatory cells is not at the lesion, which is unique view in steatosis.
Although exercise-induced growth factors such as Insulin-like growth factor-I (IGF-I) are known to affect various aspects of physiology in skeletal muscle cells, the molecular mechanism by which IGF-I modulates anti-inflammatory effects in these cells is presently unknown. Here, we showed that IGF-I stimulation suppresses the expression of toll-like receptor 4 (TLR4), a key innate immune receptor. A pharmacological inhibitor study further showed that PI3K/Akt signaling pathway is required for IGF-I-mediated negative regulation of TLR4 expression. Furthermore, IGF-I treatment reduced the expression of various NF-${\kappa}B$-target genes such as TNF-${\alpha}$ and IL-6. Taken together, these findings indicate that the anti-inflammatory effect of exercise may be due, at least in part, to IGF-I-induced suppression of TLR4 and subsequent downregulation of the TLR4-dependent inflammatory signaling pathway.
In this study, the roles of the p38 MAPK, ERK1/2 and JNK signaling pathway in IGF-I-induced AR induction and activation were examined. C2C12 cells were treated with IGF-I in the absence or presence of various inhibitors of p38 MAPK (SB203580), ERK1/2 (PD98059), and JNK (SP600125). Inhibition of the MAPK pathway with SB203580, PD98059, or SP600125 significantly decreased IGF-I-induced AR phosphorylation and total AR protein expression. IGF-I-induced nuclear fraction of total AR and phosphorylated AR were significantly inhibited by SB203580, PD98059, or SP600125. Furthermore, IGF-I-induced AR mRNA and skeletal ${\alpha}-actin$ mRNA were blocked by those inhibitors in dose-dependent manner. Confocal images showed that IGF-I-induced AR nuclear translocation from cytosol was significantly blocked by SB203580, PD98059, or SP600125, suggesting that the MAPK pathway regulates IGF-I-induced AR nuclear localization in skeletal muscle cells. The present results suggest that the MAPK pathways are required for the ligand-independent activation of AR by IGF-I in C2C12 skeletal muscle cells.
Calpains are a class of proteins that belong to the calcium-dependent, non-lysosomal cysteine proteases. There are three major types of calpains expressed in the skeletal muscle, namely, ${\mu}$-calpain, m-calpain, and calpain 3, which show proteolytic activities. Skeletal muscle fibers possess all three calpains, and they are $Ca^{2+}$-dependent proteases. The functional role of calpains was found to be associated with apoptosis and myogenesis. However, calpain 3 is likely to be involved in sarcomeric remodeling. A defect in the expression of calpain 3 leads to limb-girdle muscular dystrophy type 2A. Calpain 3 is found in skeletal muscle fibers at the N2A line of the large elastic protein, titin. A substantial proportion of calpain 3 is activated 24 h following a single bout of eccentric exercise. In vitro studies indicated that calpain 3 can be activated 2-4 fold higher than normal resting cytoplasmic [$Ca^{2+}$]. Characterization of the calpain system in the developing muscle is essential to explain which calpain isoforms are present and whether both ${\mu}$-calpain and m-calpain exist in differentiating myoblasts. Information from such studies is needed to clarify the role of the calpain system in skeletal muscle growth. It has been demonstrated that the activation of ubiquitous calpains and calpain 3 in skeletal muscle is very well regulated in the presence of huge and rapid changes in intracellular [$Ca^{2+}$].
Objectives : This study was undertaken to investigate the effects of the GGEx18 ethyl acetate fraction (EF) on lipid accumulation and gene expression of fatty acid-oxidizing enzymes using 3T3-L1 adipocytes, C2C12 skeletal muscle cells, and NMu2Li liver cells. Methods : PPAR${\alpha}$, AMPK and UCPs transactivation was examined in NMu2Li hepatocytes, C2C12 myocytes, and 3T3-L1 preadipocytes using transient transfection assays. Results : 1. Compared with control, EF significantly increased the mRNA expression of VLCAD in 3T3-L1 adipocytes. 2. Compared with control, EF (0.1 ${\mu}g/ml$) significantly inhibited lipid accumulation in 3T3-L1 adipocytes. 3. EF significantly increased the mRNA expression of AMPK${\alpha}$1, AMPK${\alpha}$2 and PPAR${\alpha}$ in C2C12 skeletal muscle cells compared with control. 4. EF significantly increased the mRNA expression of genes involved in fatty acid ${\beta}$-oxidation, such as thiolase, MCAD, and CPT-1 in C2C12 skeletal muscle cells compared with control. 5. EF significantly increased the mRNA expression of UCP2 involved in energy expenditure in C2C12 skeletal muscle cells compared with control. 6. Compared with control, EF (10 ${\mu}g/ml$) significantly inhibited lipid accumulation in C2C12 skeletal muscle cells. 7. EF (10 ${\mu}g/ml$) significantly increased the mRNA expression of ACOX, HD, VLCAD and MCAD in NMu2Li liver cells compared with control. Conclusions : These results suggest that EF may prevent obesity by increasing the mRNA expression of mitochondrial fatty acid ${\beta}$-oxidizing enzymes in 3T3-L1 adipocytes, by not only regulating the fatty acid oxidation through activation of AMPK and PPAR${\alpha}$, but also increasing the UCP2 mRNA expression in C2C12 skeletal muscle cells, and by stimulating the mRNA expression of fatty acid-oxidizing enzymes in NMu2Li liver cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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