Plasminogen activators (PAs) are serine proteases that convert plasminogen to plasmin. Two type of PAs are urokinase-type PA (uPA) and tissue-type PA (tPA). Plasminogen is present in most extracellular fluids. PAs play in various reproductive processes including implantation, ovulation and fertilization. In the spermatozoa, PAs and PAIs play a role in sperm motility and fertilization. PAs in the sertoli cell are stimulated spermatozoa maturation and sperm activation through the phospholipase A2. The oocyte maturation is the process for fertilization and implantation. PAs in cumulus-oocyte complexes (COCs) are related to oocyte maturation by protein kinase A and C. In the ovulatory process, PAs activity are changed and it are related to reducing the tensile strength of ovarian follicle wall. The uterine environment is important for reproduction and the uterus undergo tissue remodeling. In the uterus and oviduct of mammals, expression and activity of PAs are changed during estrous cycle. Thus, expression and activity of PAs are concerned to many reproductive functions. Therefore, PAs seem to important factor of regulator in reproductive events.
This study was undertaken to observe the effects of $^{60}Co\;{\gamma}-irradiation$ on the cell of spermatogenic epithelium in the testis of the chicken. 16-week-old chicken were provided as an experimental group and compared with control group. The experimental group was divided into a single irradiation (800, 1000, 1200 rads) and into three partial irradiation group (800/3, 1000/3, 1200/3 rads). The morphological changes of epithelial cell of the testis were observed by means of hematoxyline and eosin stain. Microstructure of spermatocyte and sperm was observed by means of semithin section of electron microscopic specimen. The results obstained are summerized as follows. 1. Spermatogonia and sertoli cells were found to be isolated from the basal membrane of seminiferous tubules as dose of $^{60}Co\;{\gamma}-irradiation$ was increased. 2. Spermatocytes of pachytene stage were seperated from the cytotplasmic process of sertoil cell in case of 1000 rads of $^{60}Co\;{\gamma}-irradiation$. 3. Normal arrangement of the cell of spermatogenic epithelium was found in control group and only the partial irradiation group of 800 rads. Vaculation in the seminiferous was pronounced in case of a single irradiation group of 800 rads, but the irradiation group of 1000 rads and 1200 rads were found to be damaged severely in both a single and a partial dose.
Han, Su Young;Gupta, Mukesh Kumar;Uhm, Sang Jun;Lee, Hoon Taek
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제22권2호
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pp.187-193
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2009
The present study identified the favorable conditions for isolation, enrichment and in vitro culture of highly purified, undifferentiated pig spermatogonial stem cell (SSC) lines that proliferate for long periods of time in culture. The colonies displayed morphology similar to miceSSC and were positive for markers of SSC (PGP9.5), proliferating germ cell (PigVASA), pre-meiotic germ cell (DAZL) and pluripotency (OCT4, SSEA-1, NANOG, and SOX2) based on immuno-cytochemistry and RT-PCR. The purity of these colonies was confirmed by negative expression of markers for sertoli cell (GATA4 and SOX9), peritubular myoid cell (${\alpha}$-SMA), differentiating spermatogonial and germ cells (c-KIT). The colonies could be maintained with undifferentiated morphology for more than two months and passaged more than 8 times with doubling time between 6-7 days. Taken together, we conclude that pigSSC could be successfully isolated and cultured in vitro and they possess characteristics similar to miceSSC.
Seasonal variation of the population structure and the reproductive pattern of the Korean striped field mouse, Apodemus agrarius, were investigated. High capture ratios in juveniles, young adult, and old adult mice were found during the period from October to November, from November to March, and from May to September, respectively, and extremely low capture ratios of old adults during the period from November to February were characteristic. It seemed that the young adults that survived during the winter might become older by summer and have been counted as the old adults. The breeding in the mice began earlier in males (from mid February or early March to late October) than in females (from mid March to late October), having a peak in August and September, and both the male and female mice weighing more than 20 g generally reached sexual maturation in general. In the breeding season, both young and old adult males had large testes with enlarged seminiferous tubules filled with numerous germ and Sertoli cells, and expanded caudal epididymides with a vast number of spermatozoa; the females had many Graafian follicles and corpora lutea in large ovaries, and developed uterine glands in the thick endometria. The lower ratios of the testis weight to the body weight in July and August in 1994 compared to 1995 seemed due to the extreme drought and considerably higher temperature in 1994, but the decrease in the ratio in mid-summer, only in the old mice, in both years might be explained partially by aging.
Cyclic AMP-response element binding protein zhangfei (CREBZF), a member of ATF/CREB (activating transcription factor/ cAMP response element binding protein) family, regulates numerous cellular functions and development of cells by interacting transcription factors. This study discovered the expression pattern of CREBZF in seminiferous tubule of testes during the postnatal development of mice. In testis, CREBZF mRNA expression was the highest among other organs. Immunofluorescence analyses showed that the CREBZF was specifically expressed on spermatocyte but not in spermatogonia and Sertoli cells in seminiferous epithelium of mouse testis. Semi-quantitative polymerase chain reaction (PCR) analysis showed that CREBZF transcript level was significantly elevated during postnatal development of mouse testis. Confocal imaging analysis indicated that the protein expression of CREBZF in seminiferous tubule remained low until postnatal day (PD) 14, and was dramatically increased in PD 21. Interestingly, only one type of the spermatocyte expressed CREBZF specifically among SCP3-positive spermatocytes. Taken together, these results suggest that CREBZF may be novel putative marker of the spermatocyte and regulate meiosis during postnatal development of mice.
The effect of KTC-1, a new semisynthetic rifamycin antituberculous drug, on general toxicity, reproductive capability and fetal development was investigated in Sprague-Dawley rats. Male rats were administered KTC-1 with mashed feed from 63 days before mating to the end of mating period, and female rats were given from 14 days before mating to day 7 of gestation at dose levels of 0, 375, 750, and 1,500 ppm. The females were sacrificed on day 21 of gestation for examination of their fetuses. At 1,500 ppm, a reduction in body weight gain and testis atrophy were observed in male rats. Histological examination revealed testicular atrophy, absence or decrease of germinal cells, and vacuolization of Sertoli cells in testis. A reduction in body weight gain, a decrease in food consumption were found in female rats. In addition, decreases in the number of corpora lutea, iraplantations, and the litter size of live fetuses were seen. Mating, fertility, and pregnancy performances were also affected. There were no external abnormalities observed by examination of fetuses. At 750 ppm, a reduction in the body weight gain of male and female rats and decreases in the number of implantations and litter size were found. At 375 ppm, no treatment-related effects were observed. The results suggest that the no-effect dose levels (NOELs) of KTC-1 are 375 ppm for males and females on general toxicity, 750 ppm for males and females on reproductive capability, and 375 ppm for fetuses on embryonic development.
Severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) is a novel coronavirus found in China in 2019. The disease caused by SARS-CoV-2, coronavirus disease 2019 (COVID-19), has been found to be closely related to the cells that secrete angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2). ACE2 is involved in the renin-angiotensin system and is widely secreted in several tissues, including the testis, which has raised concerns because organs with high expression of the ACE2 receptor are susceptible to infection. Analyses have shown that in testicular cells, such as spermatogonia, seminiferous duct cells, Sertoli cells, and Leydig cells, there is a high expression level of ACE2. Therefore, SARS-CoV-2 may damage male reproductive tissues and cause infertility. Since male infertility is an important problem, scientists are evaluating whether COVID-19 may influence male infertility through the ACE2 receptor.
The Syrian (golden) hamsters are seasonal breeders whose reproductive functions are active in summer and inactive in winter. In experimental facility mimicking winter climate, short photoperiod (SP) induces gonadal regression. The blood-testis barrier (BTB) of the sexually involuted animals have been reported to be permeable, allowing developing germ cells to be engulfed or sloughed off the epithelium of the seminiferous tubules. The expressions of genes related to the tight junction composing of BTB were investigated in the reproductive active and inactive testes. Claudin-11, occludin, and junctional adhesion molecule (JAM) were definitely expressed in the active testes but not discernably detected in the inactive testes. And spermatozoa (sperm) were observed in the whole lengths of epididymides in the active testes. They were witnessed in only cauda region of the epididymides but not in caput and corpus regions in animals with the inactive testes. The results imply that the disorganization of BTB is associated with the testicular regression. The developing germ cells are swallowed into the Sertoli cells or travel into the lumen, as supported by the presence of the sperm delayed in the last region of the epididymis. These outcomes suggest that both apoptosis and desquamation are the processes that eliminate the germ cells during the regressing stage in the Syrian hamsters.
Mohamed, Elsayed A.;Im, Ji Woo;Kim, Dong-Hwan;Bae, Hae-Rahn
한국발생생물학회지:발생과생식
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제26권2호
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pp.59-69
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2022
Many efforts have been made to study the expression of aquaporins (AQP) in the mammalian reproductive system, but there are not enough data available regarding their localized expression to fully understand their specific roles in male reproduction. The present study investigated the expression and localization patterns of different AQP subtypes in the adult mouse testes and testicular spermatozoa using an immunofluorescence assay. All the studied AQPs were expressed in the testes and revealed subtype-specific patterns in the intensity and localization depending on the cell types of the testes. AQP7 was the most abundant and intensive AQP subtype in the seminiferous tubules, expressing in Leydig cells and Sertoli cells as well as all stages of germ cells, especially the spermatids and testicular spermatozoa. The expression pattern of AQP3 was similar to that of AQP7, but with higher expression in the basal and lower adluminal compartments rather than the upper adluminalcompartment. AQP8 expression was limited to the spermatogonia and Leydig cells whereas AQP9 expression was exclusive to tails of the testicular spermatozoa and elongated spermatids. Taken together, the abundance and distribution of the AQPs across the different cell types in the testes indicating to their relavance in spermatogenesis, as well as in sperm maturation, transition, and function.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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