The present study was designed to examine the metabolism of 1-anilino-8-naphthalene sulfonate (ANS), an anionic compound which is transported into liver via "multispecific organ ic anion transporter", with rat hepatic microsomes. TLC analysis indicated that the fluorescent metabolites were not produced to a measurable extent, which made it possible to assess the ANS metabolism by measuring the fluorescence disappearance. The metabolism of ANS was remarkably inhibited by the presence of SKF-525A as well as by the substitution of 02 by CO gas. ANS metabolism by microsomes also required NADPH as a cofactor. These results indicated that the microsomal monooxygenase system might be mainly responsible for the ANS metabolism. The maximum velocity ($V_{max}$) and Michaelis constant ($K_m$) were calculated to be $4.3{\pm}0.2$ nmol/min/mg protein and $42.1{\pm}2.0\;{\mu}M$, respectively. Assuming that 1g of liver contains 32mg of microsomal protein, the $V_{max}$ value was extrapolated to that per g of liver ($V_{max}^I$). The intrinsic metabolic clearance ($CL_{int}$) under linear conditions calculated from this in vitro metabolic study was 3.3ml/min/g liver, being comparable with that (3.0ml/min/g liver) calculated by analyzing the in vivo plasma disappearance curve in a previous study. Furthermore, the effects of other organic anions on the metabolism of ANS were examined. Bromophenolblue (BPB) and rose bengal (RB) competitively inhibited the metabolism of ANS, while BSP inhibited it only slightly. The inhibition constant ($K_i$) of BPB ($6\;{\mu}M$) was much smaller than that of RB ($200\;{\mu}M$). In conclusion, the microsomal monooxygenase system plays a major role in the metabolism of ANS, and other unmetabolizable organic anions (BPB and RB) compete for this metabolism.
The antiparkinsonian agent l-deprenyl, a selective monoamine oxidase (MAO)-B inhibitor, is metabolized in part to l-methamphetamine and l-amphetamine. l< /I>-Deprenyl was evaluated for amphetamine and methamphetamine-like discriminative stimulus effects in rats and its mechanism of action was investigated. Rats were trained under a 5-response, fixed ratio schedule of stimulus-shock termination or a 10-response. Fixed-ratio schedule of food-presentation which discriminate between d-amphetamine (1mg/kg, i.p.) and saline or d-methamphetamine (1mg/kg, i.p.) and saline in a two-lever, operant conditioning procedure. Full generalization was obtained to d-amphetamine (1~3mg/kg). d-methamphetamine (1~3mg/kg) and l-deprenyl (17~30mg/kg) under both the food presentation and stimulus shock termination schedule. l-Deprenyl has dose-dependent amphetamine-and methamphetamine-like discriminative stimulus properties in rats only at doses of 17 and 30mg/kg. Reversible MAO-B inhibitor, RO 16-6491 didn`t show any amphetamine-like discriminative properties. Aromatic amino acid decarboxylase inhibitor, NSD 1015 decreased % responding of l-deprenyl in the methamphetamine-trained rats under the stimulus-shock termination schedule. SKF-525A produced partial inhibition of methamphetamine-like discriminative effects of l-deprenyl under the food presentation schedule. These results suggest that l-deprenyl has no abuse liability at the therapeutic range but there needs some caution at high doses and furthermore, drug discrimination studies under the food presentation and shock termination schedule are useful for the assessment of abuse liability of psychostimulants.
Deoxypodophyllotoxin (DPT) is a medicinal herb product isolated from Anthriscus sylvestris. DPT possesses beneficial activities in regulating immediate-type allergic reaction and anti-inflammatory activity through the dual inhibition of cyclooxygenase-2 and 5-lipoxygenase. In the present study, the metabolism of DPT was further characterized in rat liver microsomes isolated from male Sprague Dawley rats. The metabolism of DPT was NADPH-dependent. In addition, when liver microsomes were incubated with SKF-525A, a well-known CYP inhibitor, in the presence of $\beta$-NADPH, the metabolism of DPT was significantly inhibited. Using enriched rat liver microsomes, the anticipated isoforms of cytochrome P450s (CYPs) in the metabolism of DPT were partially characterized. Phenobarbital-induced microsomes increased in the formation of metabolite M1. The metabolite M3 was only produced in the enriched microsomes isolated from dexamethasone-treated rats. The results indicated that the metabolism of DPT would be CYP-dependent and that CYP2B and CYP3A might be important in the metabolism of DPT in rats.
The pyrrolizidine alkaloids (PAs), contained in a number of traditional remedies in Africa and Asia, show wide variations in metabolism between animal species but little work has been done to investigate differences between animal strains. The metabolism of the PA senecionine (SN) in Fischer 344 (F344) rats has been studied in order to compare to that found in the previously investigated Sprague-Dawley (SO) rats (Drug Metab. Dispos. 17: 387, 1989). There was no difference in the formation of ($\pm$) 6,7-dihydro-7-hydroxy-1-hydroxymethyl-5H-pyrrolizine (DHP, bioactivation) by hepatic microsomes from either sex of SO and F344 rats. However, hepatic microsomes from male and female F344 rats had greater activity in the Noxidation (detoxication) of SN by 88% and 180%, respectively, when compared to that of male and female SD rats. Experiments conducted at various pH showed an optimum pH of 8.5, the optimal pH for flavin-containing monooxygenase (FMO), for SN N-oxidation by hepatic microsomes from F344 females. In F344 males, however, a bimodal pattern was obtained with activity peaks at pH 7.6 and 8.5 reflecting the possible involvement of both cytochrome P450 (CYP) and FMO. Use of specific inhibitors (SKF525A, 1-benzylimidazole and methimazole) showed that the N-oxide of SN was primarily produced by FMO in both sexes of F344 rats. In contrast, SN N-oxide formation is known to be catalyzed mainly by CYP2C11 rather than FMO in SD rats. This study, therefore, demonstrated that there were substantial differences in the formation of SN N-oxide by hepatic microsomes from F344 and SD rats and that this detoxification is catalyzed primarily by two different enzymes in the two rat strains. These findings suggest that significant variations in PA biotransformation can exist between different animal strains.
We have reported that hypoxia stimulates EDRF(s) release from endothelial cells and the release may be augmented by previous hypoxia. As a mechanism, it was hypothesized that reoxygenation can stimulate EDRF(s) release from endothelial cells and we tested the hypothesis via bioassay experiment. In the bioassay experiment, rabbit aorta with endothelium was used as EDRF donor vessel and rabbit carotid artery without endothelium as a bioassay test ring. The test ring was contracted by prostaglandin $F_{2a}\;(3{\times}10^{-6}\;M)$ which was added to the solution perfusing through the aorta. Hypoxia was evoked by switching the solution aerated with 95% $O_2/5%\;CO_2$ mixed gas to one aerated with 95% $O_2/5%\;CO_2$ mixed gas. Hypoxia/reoxygenation were interexchanged at intervals of 2 minutes (intermittent hypoxia). In some experiments, endothelial cells were exposed to 10-minute hypoxia (continuous hypoxia) and then exposed to reoxygenation and intermittent hypoxia. In other experiments, the duration of reoxygenation was extended from 2 minutes to 5 minutes. When the donor aorta was exposed to intermittent hypoxia, hypoxia stimulated EDRF(s) release from endothelial cells and the hypoxia-induced EDRF(s) release was augmented by previous hypoxia/reoxygenation. When the donor aorta was exposed to continuous hypoxia, there was no increase of hypoxia-induced EDRF(s) release during hypoxia. But, after the donor aorta was exposed to reoxygenation, hypoxia-induced EDRF(s) release was markedly increased. When the donor aorta was pretreated with nitro-L-arginine $(10^{-5}$ M for 30 minutes), the initial hypoxia-induced EDRF(s) release was almost completely abolished, but the mechanism for EDRF(s) release by the reoxygenation and subsequent hypoxia still remained to be clarified. TEA also blocked incompletely hypoxia-induced and hypoxia/reoxygenation-induced EDRF(s) release. EDRF(s) release by repetitive hypoxia and reoxygenation was completely blocked by the combined treatment with nitro-L-arginine and TEA. Cytochrome P450 blocker, SKF-525A, inhibited the EDRF(s) release reversibly and endothelin antgonists, BQ 123 and BQ 788, had no effect on the release of endothelium-derived vasoactive factors. Superoxide dismutase (SOD) and catalase inhibited the EDRF(s) release from endothelial cells. From these data, it could be concluded that reoxygenation stimulates EDRF(s) release and hypoxia/reoxygenation can release not only NO but also another EDRF from endothelial cells by the production of oxygen free radicals.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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