The effect of Ruthenium Red on the antinociceptive action of capsaicinoids was investigated using tail-flick test in mice. Capsaicin and KR-25018, when administered subcutaneously, had a potent antinociceptive effect against noxious heat stimulus. Ruthenium Red which is known to block the calcium channel coupled to the capsaicin receptor, when injected intraperitoneally more than 5 mg/kg, showed severe sedation and apparent antinociceptive effect against noxious heat stimulus. The 2.5 mg/kg Ruthenium Red, at which dose any significant sedative effect was not shown, had no effect on the antinociceptive effects of capsaicin and KR-25018. Considering this result, the antinociceptive effect of capsaicinoid may not be related to the Ruthenium Red sensitive calcium channel which is activated by capsaicin.
Intracellular calcium is an important physiological factor in most cells, and ruthenium red and ryanodine play an important role as calcium modulators. Ruthenium red inhibits calcium-induced calcium release(CICR) from the intracellular calcium store. Ryanodine activates calcium release through ryanodine channel. The present experiment was performed to investigate the effects of two modulators on calcium ion metabolism and to determine their dose-dependency in oocyte and early embryo of mouse. Intracellular calcium ion concentration was measured in realtime by using confocal laser scanning microscope(CLSM) after loading of Fluo-3/AM in mouse oocytes and early embryos. Ruthenium red decreased intracellular calcium ion concentration in oocytes and early embryos at its high concentration(30, 300 $\mu$M). Ryanodine increased intracellular calcium ion concentration in oocytes and early embryos in low concentration(0.01 $\mu$M) but decreased that at higher concentrations(1, 10 $\mu$M). These results indicate that two modulators affected calcium ion metabolism in oocyte and early embryo of mouse, and their dose-dependency was different from somatic cell including myocytes.
This experiment was performed to study the effect of capsaicin on the excitatory amino acids (EAAs) neurotransmitter in medullary dorsal horn and to clarify the relationship between substance P and excitatory amino acids. Horizontal slice of rat medullary dorsal horn was prepared and perfused with modified Krebs-Ringer solution in brain slice chamber. Release of EAAs was induced by veratrine and capsaicin were added to perfusion solution to observe the changes in EAA release. Capsaicin and ruthenium red, capsaicin antagonist, were also systemically injected with 50mg/kg in first day and 100mg/kg in second day for 2 days. Medulla oblongata containing the medullary dorsal horn was isolated, homogenized and centrifused. Spernatant was freeze-dried and EAA was determined by HPLC. Release of glutamate and aspartate was significantly increased by veratrine or capsaicin, but veratrine evoked release of EAAs was blocked by capsaicin in vitro, and injected ruthenium red did not have effect on the contents of EMs in vivo. Systemically injected capsaicin evoked the slight decrease in content of glutamate and aspartate in medullary dorsal horn and this effect of capsaicin was unaffected by ruthenium red.
Trigeminal spinal sensory nucleus is a main relay site in transmission of orofacial pain. Glutamate and aspartate playa role in transmission of primary afferents. This experiment was performed to study the role of capsaicin, KR-25018 and shogaol on the release of glutamate and aspartate from trigeminal spinal sensory nucleus. Release of excitatory amino acids(EAAs) was induced by electrical stimulation of oral mucosa with innocuous or noxious stimuli. Capsaicin($10{\mu}M$), KR-25018($10{\mu}M$), shogaol($10{\mu}M$), ruthenium red and capsazapine were added to perfusion solution to observe the changes in EAA release, and glutamate and aspartate were determined by HPLC. Release of glutamate and aspartate from trigeminal sensory nucleus was increased by noxious stimulation of oral mucosa, but innocuous stimulation did not affect on the release of EAA Capsaicin and KR-25018 increased the release of glutamate and aspartate, and effect of KR-25018 on release of EAA was more potent than capsaicin. But shogaol had a weak effect on release of EAA. Effect of capsaicin and KR-25018 was partially blocked by capsaicin antagonists, ruthenium red and capsazepine.
To investigate properties of Ca-release channel in the reptile skeletal muscle, electrophoretical analysis, purification of RyR, $[^3H]ryanodine$binding study, and $^{45}Ca-release$ were carried out in the SR vesicles prepared from the snake skeletal muscle. The snake SR vesicle has the single high molecular weight protein band on SDS-PAGE, and its mobility was similar with that of rat skeletal SR vesicles. The high molecular weight band on SDS-PACE was found in the $[^3H]ryanodine$ peak fractions $(Fr_{5-7})$ obtained from the purification step of the RyR. Maximal binding site and Kd of the snake SR RyR were 6.36 pmole/mg protein and 17.62 nM, respectively. Specific binding of $[^3H]ryanodine$ was significantly increased by calcium and AMP (P<0.05), but not or slightly inhibited by tetracaine, ruthenium red (5.4%), or $MgCl_2$ (21%). $^{45}Ca-release$ from the SR vesicles loaded passively was significantly increased by the low concentration of calcium $(1{\sim}10{\mu}M)$ and AMP (5 mM)(P<0.05), but significantly decreased by the high concentration $(300{\mu}M)$ of calcium, tetracaine (1 mM), ruthenium red $(10{\mu}M)$, and $MgCl_2$ (2 mM)(P <0.05). From the above results, it is suggested that snake SR vesicles also have the RyR showing the similar properties to those of mammalian skeletal RyR with the exceptions of no or slight inhibition of $[^3H]ryanodine-binding$ by tetracaine, ruthenium red, or $MgCl_2$.
We have investigated the infrared spectra for carbon monoxide chemisorbed on silica supported ruthenium with and without potassium coating within the frequency range of 1800-2200 $cm^{-1}$ at various ruthenium concentrations and CO pressures. For the system without potassium coating, three bands were observed in the infrared spectra when CO was adsorbed on both the reduced and oxidized form of supported ruthenium. However, the relative intensities of these three bands were found to have no interdependence. Therefore, we have assigned each of these bands as arising from the CO stretching vibration for carbon monoxide molecules adsorbed on the Ru sites of different nature. On coating with potassium, the 2030 $cm^{-1}$ band observed for the system without potassium coating was found to suffer red shift by 10-30 $cm^{-1}$ and we conclude that this bathochromic shift is caused by enhancement in the capability of back donation of electrons from the metal atom to the antibonding ${\pi}{\ast}$ orbitals of CO due to the presence of potassium.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1993.11a
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pp.1-6
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1993
Capsaicin [N-(4-hydroxy-3-methoxybenzyl)-trans-8-methyl -6-nonenamide], a pungent principle of red pepper. is known to induce analgesia. Though it has shown remarkable pharmacological activity, the toxicity and side effects inhibited its wider application. The interest has been renewed by the emergence of its agonists, resineferatoxin and ruthenium red. Recently, few successful capsaicinoids including 01vanil (NE-19550), NE-28345, and NE-21610 were reported.
The secretion of insulin from pancreatic ${\beta}$-cells is triggered by the influx of $Ca^{2+}$ through voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels. The resulting elevation of intracellular calcium ($[Ca^{2+}]_i$) triggers additional $Ca^{2+}$ release from internal stores. Less well understood are the mechanisms involved in $Ca^{2+}$ mobilization from internal stores after activation of $Ca^{2+}$ influx. The mobilization process is known as calcium-induced calcium release (CICR). In this study, our goal was to investigate the existence of and the role of caffeine-sensitive ryanodine receptors (RyRs) in a rat pancreatic ${\beta}$-cell line, INS-1 cells. To measure cytosolic and stored $Ca^{2+}$, respectively, cultured INS-1 cells were loaded with fura-2/AM or furaptra/AM. $[Ca^{2+}]_i$ was repetitively increased by caffeine stimulation in normal $Ca^{2+}$ buffer. However, peak $[Ca^{2+}]_i$ was only observed after the first caffeine stimulation in $Ca^{2+}$ free buffer and this increase was markedly blocked by ruthenium red, a RyR blocker. KCl-induced elevations in $[Ca^{2+}]_i$ were reduced by pretreatment with ruthenium red, as well as by depletion of internal $Ca^{2+}$ stores using cyclopiazonic acid (CPA) or caffeine. Caffeine-induced $Ca^{2+}$ mobilization ceased after the internal stores were depleted by carbamylcholine (CCh) or CPA. In permeabilized INS-1 cells,$Ca^{2+}$ release from internal stores was activated by caffeine, $Ca^{2+}$, or ryanodine. Furthermore, ruthenium red completely blocked the CICR response in perrneabilized cells. RyRs were widely distributed throughout the intracellular compartment of INS-1 cells. These results suggest that caffeine-sensitive RyRs exist and modulate the CICR response from internal stores in INS-1 pancreatic ${\beta}$-cells.
To investigate the functional and immunological properties of the Ca-release channel in the sarcoplasmic reticulum(SR) of the eel skeletal muscle, $[^3H]ryanodine$ binding, SDS gel electrophoresis, $^{45}Ca\;release$ studies, and immunoblot assay were carried out in the SR of the eel skeletal muscle. Maximal binding sites(Bmax) and $K_D$ values of $[^3H]ryanodine$ for Ca-release channel of the SR of the eel skeletal muscle were $19.44{\pm}1.40\;pmole/mg$ protein and $15.55{\pm}1.69\;nM$, respectively. $[^3H]Ryanodine$ binding to RyR was increased by calcium and AMP. The SR of the eel skeletal muscle has two high molecular weight bands on the SDS PAGE. The mobility of upper band was more slower than the single band of the rabbit skeletal muscle, and that of the lower band was similar with the single band of canine cardiac muscle. Vesicular $^{45}Ca-release$ was activated by calcium. Ca-induced $^{45}Ca-release$ was significantly inhibited by $MgCl_2(2\;mM)$, ruthenium red$(10\;{/mu}M)$ or tetracaine(1 mM), but not by high concentration of calcium itself. AMP-induced $^{45}Ca-release$ was slightly occurred only in the absence of calcium, it was not inhibited by $MgCl_2$ or ruthenium red. Caffeine also increased $^{45}Ca-release$ from the SR vesicles, but it was not affected by $MgCl_2$ or ruthenium red. Polyclonal Ab against rat skeletal muscle RyR is reacted with that of rabbit, but not reacted with that of the eel skeletal muscle. These results suggested that ryanodine receptor of the SR of the eel skeletal muscle is showing some similar properties with that of mammalian skeletal muscle, but might be an another isotype channel having two bands which is less sensitive to AMP, not cross-reacted with antisera against rat RyR, and not inhibited by high concentration of calcium.
In the present study we investigated the peripheral function of capsaicin and KR-25018, a newly synthesized capsaicin derivative, which was demonstrated to have a potent analgesic activity through different mechanism from morphine and nonsteroidal antiinflammatory drugs. Capsaicin (10-8~10-5 M) and KR-25018 (10-8~10-5 M) produced concentration-dependent contractions of the isolated guinea pig bronchi. There were no significant differences in the maximum response and the EC50 values (EC50: 0.137$\pm$0.025 $\mu$M and 0.097$\pm$0.031 $\mu$M for capsaicin and KR-25018, respectively, P>0.05). Phosphoramidon (10 $\mu$M) and indomethacin (10 $\mu$M) had no significant effect on contractile response to the submaximal concentration range of capsaicin and KR-25018 (3$\times$10-9~3$\times$10-7 M). The response to KR-25018, like that to capsaicin, was significantly inhibited by ruthenium red with reduction in the maximum response, which is indicative of non-competitive antagonism. A further common feature of the responses to capsaicin and KR-25018 in the guinea pig bronchi was their sensitivity to capsazepine. Capsazepine caused a rightward parallel shift in concentration-response curves obtained by capsaicin and KR-25018. the pA2 values of capsazepine were 5.90 and 5.99 against capsaicin and KR-25018 response, respectively. In conclusion, KR-25018 and capsaicin exert their contractile effects in the isolated guinea pig bronchial muscle by common mechanisms, probably via the activation of a specific receptor.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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