A previous report recently demonstrated that ultrasound-induced hyperthermia (USHT:0.4 watts (W)/$cm^2$ at $41^{\circ}C$) could increase cellular uptake of P-glycoprotein (P-gp) substrates in P-gp expressing cancer cell lines. Since P-gp plays a major role in limiting drug permeability in the multi-drug resistant (MDR) cells, studies were conducted to elucidate the mechanism of USHT on cellular accumulation of P-gp and non-P-gp substrate in MDR cells. To accomplish this aim, we studied the effects of USHT on the accumulation of P-gp substrate, R123 and non-P-gp substrate, antipyrine in MDR cells. We demonstrated that USHT increased permeability of hydrophobic molecules (R123 and $[^{14}C]$-antipyrine). The enhanced permeability is reversible and size-dependent as USHT produces a much larger effect on cellular accumulation of $[^{14}C]$-antipyrine (MW 188) than that of R123 (MW 380.8). These results suggest that USHT could affect MDR cells more sensitive than BBMECs. Also, the present results point to the potential use of USHT to increase cellular uptake of P-gp recognized substrates, mainly anti-cancer agents into cancer cells.
Kim, Bok Yung;Thyiam, General;Kang, Ji-Eun;Lee, Seung-Hwan;Park, Sang-Hee;Kim, Jung-Sun;Abraham, Marion
대한임상검사과학회지
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제44권3호
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pp.112-117
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2012
Escherichia coli biofilm, reported to be produced in the human intestine causing a significant health risk, was successfully grown on transwell$^{(R)}$. This biofilm layer was identified by crystal violet staining and prepared for the in vitro E. coli biofilm system which can be used to screen for inhibitors. The biofilm formation did not show a change in transepithelial electrical resistance values. Furthermore, rhodamine 123 staining showed that the dye did not pass through the membrane once biofilm was formed.
Park Sae-Young;Kim Eun-Young;Kim Deok-Im;Lee Won-Don;Park Se-Pill;Lim Jin-Ho
Reproductive and Developmental Biology
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제29권3호
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pp.141-144
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2005
This experiment was to investigate whether the mitochondria function assessment can be used for the prediction of sperm fertility through examining the correlation between mitochondria fluoromicroscopic frequency of frozen-thawed eight Hanwoo bull semen using rhodamine123 (R123) and in vitro embryo development following fertilization. Individual sperm were stained in 5 ${\mu}g/mL$ R123-added calcium-free Sp-TALP for 30 min at 0 h, 6 h, 12 h and 24 h after thawing and examined their mid-piece under an epifluorescence microscope using 495 nm excitation filter (x1,000). Three replications were taken, and at least 300 sperm per individual were examined. When semen samples were separated into two groups (good and poor) by sperm motility and fluorescent frequencies at just after thawing, average fluorescent frequencies were remarkably reduced as time going (0 h; $53.29{\~}72.94\%$, 6 h; $21.40{\~}58.90\%$, 12 h; $8.26{\~}25.93\%$, 24 h; $1.00{\~}13.78\%$, irrespective of selected group, and there were no differences at 6 h or 12 h after thawing between selected groups but indicated significant difference at 24 h after thawing (p<0.05). In vitro fertilization rates in good and poor groups ranging $70.8{\~}77.8\%$ and $52.1{\~}84.5\%$, respectively, were not significantly different. However, in vitro development rates of the same groups ranging $25.7{\~}40.0\%$ and $12.9{\~}1.8\%$, respectively, were significant different (p<0.05). These results demonstrate that mitochondria fluoromicroscopic assessment of frozen-thawed bovine sperm may be used as a criterion to select more fertile sperm.
P-glycoprotein (P-gp) is a permeability glycoprotein also known as multidrug resistance protein 1 (MDR1). P-gp is an ATP-binding cassette (ABC) transporter that pumps various types of drugs out of cells. These transporters reduce the intracellular concentrations of drugs and disturb drug absorption. The Caco-2 cell permeability assay system is an effective in vitro system that predicts the intestinal absorption of drugs and the functions of enzymes and transporters. Rhodamine-123 (R-123) and digoxin are well-known P-gp substrates that have been used to determine the function of P-gp. Efflux of P-gp substrates by P-gp has been routinely evaluated. To date, a number of herbal medicines have been tested with Caco-2 cell permeability assay system to assess bioavailability. There are growing efforts to find phytochemicals that potentially regulate P-gp function. The Caco-2 cell permeability assay system is a primary strategy to search for candidates of P-gp inhibitors. In this mini review, we have summarized the P-gp modulation by herbal extracts, decoctions or single components from natural products using Caco-2 cell permeability assays. Many natural products are known to regulate P-gp and herbal medicines could be used in combination with conventional drugs to enhance bioavailability.
P-glycoprotein (P-gp) is a member of the ATP-Binding Cassette transporter superfamily and mediates transmembrane efflux of many drugs. Since it is involved in multi-drug resistance activity in various cancer cells, the development of P-gp inhibitor is one of the major concerns in anticancer therapy. Human P-gp protein has at least two "functional" drug binding sites that are called "H" site and "R" site, hence it has multi-binding-specificities. Though the amino acid residues that constitute in drug binding pockets have been proposed by previous experimental evidences, the shapes and the binding poses are not revealed clearly yet. In this study, human P-gp structure was built by homology modeling with available crystal structure of mouse P-gp as a template and docking simulations were performed with inhibitors such as verapamil, hoechst33342, and rhodamine123 to construct the interaction between human P-gp and its inhibitors. The docking simulations were performed 500 times for each inhibitor, and then the interaction frequency of the amino acids at the binding poses was analyzed. With the analysis results, we proposed highly contributing residues that constitute binding pockets of the human P-gp for the inhibitors. Using the highly contributing residues, we proposed the locations and the shapes of verapamil binding site and "R" site, and suggested the possible position of "H" site.
Despite the frequent incidence of embryo fragmentation in early human embryos, the reason of the embryo fragmentation has not been known yet. This study was conducted to investigate the histological difference(s) between fragmented (FR) and non-fragmented (NFR) human embryos focusing on comparison of mitochondrial distribution and protein synthesis. Multi-pronuclei zygotes (MPZ) such as three or more pronuclei containing in human in vitro fertilization and embryo transfer (IVF-ET) program were used for this study. MPZ were cultured in TCM-199 supplemented with 10% of human fetal cord serum (hFCS) in 5% $CO_2$ incubator at $37^{\circ}C$ for 24 hours. The cleaved embryos to 2-4 cells after 24 hours were grouped by their grade of fragmentation. Embryos were stained with Rhodamine123 (Rh123) and fluorescence was evaluated under the fluorescence microscope through PB 450-490 filter (Leitz). Regarding to protein synthesis during early human embryogenesis, there is no significant difference in the amount of synthetic proteins between FR and NFR embryos. Distribution of cytoplasmic organelles in embryos was evaluated by transmission electron microscope (TEM). The cytoplasmic distribution of mitochondria was different between FR and NFR embryos. The mitochondrial distribution was even in NFR, whereas severely aggregated in FR. It is not able to clarify in the present study whether this uneven mitochondrial distribution in FR embryo is the reason for embryo fragmentation or is the result from fragmentation. Physiological disparity related to the mitochondrial distribution may be one of the reasons for embryo fragmentation. Further studies should be addressed to investigate the physiological differences between FR and NFR embryos.
This study was designed to investigate the effects of ticlopidine on the pharmacokinetics of carvedilol after oral or intravenous administration of carvedilol in rats. Carvedilol was administered orally (3 mg/kg) or intravenously (1 mg/kg) without or with oral administration of ticlopidine (4, 12 mg/kg) to rats. The effects of ticlopidine on P-glycoprotein (P-gp) and cytochrome P450 (CYP) 2C9 activity were also evaluated. Ticlopidine inhibited CYP2C9 activity in a concentration-dependent manner with 50% inhibition concentration ($IC_{50}$) of $25.2\;{\mu}M$. In addition, ticlopidine could not significantly enhance the cellular accumulation of rhodamine 123 in MCF-7/ADR cells overexpressing P-gp. Compared with the control group (given carvedilol alone), the area under the plasma concentration-time curve (AUC) was significantly (12 mg/kg, p<0.05) increased by 14-41%, and the peak concentration ($C_{max}$) was significantly (12 mg/kg, p<0.05) increased by 10.7-73.3% in the presence of ticlopidine after oral administration of carvedilol. Consequently, the relative bioavailability (R.B.) of carvedilol was increased by 1.14- to 1.41-fold and the absolute bioavailability (A.B.) of carvedilol in the presence of ticlopidine was increased by 36.2-38.5%. Compared to the i.v. control, ticlopidine could not significantly change the pharmacokinetic parameters of i.v. administered carvedilol. The enhanced oral bioavailability of carvedilol may result from inhibition of CYP2C9-mediated metabolism rather than P-gpmediated efflux of carvedilol in the intestinal and/or in liver and renal eliminatin of carvedilol by ticlopidine.
The purpose of this study was to investigate the effect of ticlopidine on the pharmacokinetics of diltiazem and its active metabolite, desacetyldiltiazem, in rats. Pharmacokinetic parameters of diltiazem and desacetyldiltiazem were determined in rats after oral administration of diltiazem (15 $mg{\cdot}kg^{-1}$) with ticlopidine (3 or 9 $mg{\cdot}kg^{-1}$). The effects of ticlopidine on P-glycoprotein (P-gp) and cytochrome P450 (CYP) 3A4 activities were also evaluated. Ticlopidine inhibited CYP3A4 enzyme activity in a concentrationdependent manner with a 50% inhibition concentration ($IC_{50}$) of 35 ${\mu}M$. In addition, ticlopidine did not significantly enhance the cellular accumulation of rhodamine-123 in NCI/ADR-RES cells overexpressing P-gp. Compared with the control (given diltiazem alone), ticlopidine significantly altered the pharmacokinetic parameters of diltiazem. The peak concentration ($C_{max}$) and the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of diltiazem were significantly (9 $mg{\cdot}kg^{-1}$, p<0.05) increased in the presence of ticlopidine. The AUC of diltiazem was increased by 1.44-fold in rats in the presence of ticlopidine (9 $mg{\cdot}kg^{-1}$). Consequently, the absolute bioavailability (A.B.) of diltiazem in the presence of ticlopidine (9.3-11.5%) was signifi cantly higher (9 $mg{\cdot}kg^{-1}$, p<0.05) than that in the control group (8.0%). Although ticlopidine significantly (p<0.05) increased the AUC of desacetyldiltiazem, the metabolite-parent AUC ratio (M.R.) in the presence of ticlopidine (9 $mg{\cdot}kg^{-1}$) was significantly decreased compared to that in the control group, implying that ticlopidine could effectively inhibit the metabolism of diltiazem. In conclusion, the concomitant use of ticlopidine significantly enhanced the oral bioavailability of diltiazem in rats by inhibiting CYP3A4-mediated metabolism in the intestine and/or liver rather than by inhibiting intestinal P-gp activity or renal elimination of diltiazem.
This study was to investigate the effect of baicalein, an antioxidant, on the bioavailability of nicardipine after orally or intravenously administered nicardipine in rats. Nicardipine was administered orally (12 mg/kg) or intravenously (4 mg/kg) with or without orally administered baicalein (0.4, 2 or 10 mg/kg) to rats. In the inhibitory effect of baicalein on CYP3A4 activity, baicalein inhibited CYP3A4 activity with $IC_{50}$ values of 9.2 ${\mu}M$. The cell-based P-gp activity test using rhodamine-123 also showed that baicalein (30-10 ${\mu}M$, p<0.01) significantly inhibited P-gp activity. Compared with the control group (given nicardipine alone), the area under the plasma concentration-time curve (AUC) was significantly (2 mg/kg, P<0.05; 10 mg/kg, P<0.01) increased by 25.9-60.0%, and the peak concentration ($C_{max}$) was significantly (10 mg/kg, P<0.01) increased by 40.0% in the presence of baicalein after orally administration of nicardipine. Consequently, the relative bioavailability (R.B.) of nicardipine was increased by 1.26- to 1.60-fold and the absolute bioavailability (A.B.) was significantly (2 mg/kg, P<0.05; 10 mg/kg, P<0.01) increased by 26.0-59.9%. Compared to the i.v. control, baicalein did not significantly change pharmacokinetic parameters of nicardipine in i.v. administration. Accordingly, the enhanced oral bioavailability of nicardipine might be mainly due to increased intestinal absorption caused by P-gp inhibition rather than to reduced elimination of nicardipine by baicalein. The increase in the oral bioavailability might be mainly attributed to enhanced absorption in the small intestine via the inhibition of P-gp and reduced first-pass metabolism of nicardipine via the inhibition of the CYP3A subfamily in the small intestine and/or in the liver by baicalein. Based on these results, nicardipine dosage should be adjusted when given concomitantly with baicalein.
The purpose of this study was to investigate the effects of nisoldipine on the pharmacokinetics of repaglinide in rats. The effect of nisoldipine on cytochrome P450 (CYP) 3A4 activity and P-glycoprotein (P-gp) were evaluated. The pharmacokinetic parameters of repaglinide were also determined in rats after oral (0.5 $mg{\cdot}kg^{-1}$) and intravenous (0.2 $mg{\cdot}kg^{-1}$) administration of repaglinide to rats without or with nisoldipine (0.3 and 1.0 $mg{\cdot}kg^{-1}$). Nisoldipine inhibited CYP3A4 enzyme activity with a 50% inhibition concentration of 5.5 ${\mu}M$. In addition, nisoldipine significantly enhanced the cellular accumulation of rhodamine-123 in MCF-7/ADR cells overexpressing P-gp. Compared to the oral control group, nisoldipine significantly increased the $AUC_{0-{\infty}}$ and the $C_{max}$ of repaglinide by 46.9% and 24.9%, respectively. Nisoldipine also increased the absolute bioavailability (A.B.) of repaglinide by 47.0% compared to the oral control group. Moreover, the relative bioavailability (R.B.) of repaglinide was 1.16- to 1.47-fold greater than that of the control group. Nisoldipine enhanced the oral bioavailability of repaglinide, which may be attributable to the inhibition of the CYP3A4-mediated metabolism in the small intestine and/or in the liver and to inhibition of P-gp in the small intestine rather than to reduction of renal elimination of repaglinide by nisoldipine. The increase in the oral bioavailability of repaglinide should be taken into consideration of potential drug interactions when co-administering repaglinide and nisoldipine.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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