Objective: The study was conducted to screen differentially expressed miRNAs in sows at early pregnancy by high-throughput sequencing and explore its mechanism of action on embryo implantation. Methods: The blood serum of pregnant and non-pregnant Landrace×Yorkshire sows were collected 14 days after artificial insemination, and exosomal miRNAs were purified for high throughput miRNA sequencing. The expression patterns of 10 differentially expressed (DE) miRNAs were validated by quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction (qRT-PCR). The qRT-PCR quantified the abundance of serum exosomal miR-192 in pregnant and control sows, and the diagnostic power was assessed by receiver operating characteristic (ROC) analysis. The target genes of DE miRNAs were predicted with bioinformatics software, and the functional and pathway enrichment analysis was performed on gene ontology and the Kyoto encyclopedia of genes and genomes terms. Furthermore, a luciferase reporter system was used to identify the target relation between miR-192 and integrin alpha 4 (ITGA4), a gene influencing embryo implantation in pigs. Finally, the expression levels of miRNAs and the target gene ITGA4 were analyzed by qRT-PCR, and western blot, with the proliferation of BeWo cells detected by cell counting kit-8 (CCK-8). Results: A total of 221 known miRNAs were detected in the libraries of the pregnant and non-pregnant sows, of which 55 were up-regulated and 67 were down-regulated in the pregnant individuals compared with the non-pregnant controls. From these, the expression patterns of 10 DE miRNAs were validated. The qRT-PCR analysis further confirmed a significantly higher expression of miR-192 in the serum exosomes extracted from pregnant sows, when compared to controls. The ROC analysis revealed that miR-192 provided excellent diagnostic accuracy for pregnancy (area under the ROC curve [AUC]=0.843; p>0.001). The dual-luciferase reporter assay indicated that miR-192 directly targeted ITGA4. The protein expression of ITGA4 was reduced in cells that overexpressed miR-192. Overexpression of miR-192 resulted in the decreased proliferation of BeWo cells and regulated the expression of cell cycle-related genes. Conclusion: Serum exosomal miR-192 could serve as a potential biomarker for early pregnancy in pigs. miR-192 targeted ITGA4 gene directly, and miR-192 can regulate cellular proliferation.
Kim, Jung-Mo;Cho, Youn-Jeong;Son, On-Ju;Hong, Ki-Sung;Chung, Hyung-Min
Reproductive and Developmental Biology
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v.35
no.1
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pp.1-8
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2011
Techniques to evaluate gene expression profiling, such as sufficiently sensitive cDNA microarrays or real-time quantitative PCR, are efficient methods for monitoring human pluripotent stem cell (hESC/iPSC) cultures. However, most of these high-throughput tests have a limited use due to high cost, extended turn-around time, and the involvement of highly specialized technical expertise. Hence, there is an urgency of rapid, cost-effective, robust, yet sensitive method development for routine screening of hESCs/hiPSCs. A critical requirement in hESC/hiPSC cultures is to maintain a uniform undifferentiated state and to determine their differentiation capacity by showing the expression of gene markers representing all three germ layers, including ectoderm, mesoderm, and endoderm. To quantify the modulation of gene expression in hESCs/hiPSC during their propagation, expansion, and differentiation via embryoid body (EB) formation, we developed a simple, rapid, inexpensive, and definitive multimarker, semiquantitative multiplex RT-PCR platform technology. Among the 9 gene primers tested, 5 were pluripotent markers comprising set 1, and 3 lineage-specific markers were combined as set 2, respectively. We found that these 2 sets were not only effective in determining the relative differentiation in hESCs/hiPSCs, but were easily reproducible. In this study, we used the hES/hiPS cell lines to standardize the technique. This multiplex RT-PCR assay is flexible and, by selecting appropriate reporter genes, can be designed for characterization of different hESC/hiPSC lines during routine maintenance and directed differentiation.
Kim Sung-Dae;Cho Jae-Youl;Park Hwa-Jin;Kim Sang-Keun;Rhee Man-Hee
Biomedical Science Letters
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v.12
no.3
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pp.131-137
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2006
RGS is a negative regulator of G-protein signaling and can be identified by the presence of a conserved $120{sim}125$ amino acid motif, which is referred to as the RGS box. A number of RGSs are induced in response to a wide variety of stimuli. Increased levels of RGSs lead to significant decreases in GPCR responsiveness. To obtain further evidence of a role of RGS proteins in rat C6 astrocytoma cells, we first determined the expression profile of RGS-specific mRNA in C6 cells using reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) with a poly dT18 primer and transcript-specific primers. We found that RGS2, RGS3, RGS6, RGS9, RGS10, RGS12, and RGS16 were differentially expressed in C6 astrocytoma cells. The highest expression rate was found for RGS3, followed by RGS16, RGS10 and RGS9, whereas the expression level for RGS2 was barely detectable. We next assessed whether forskolin regulated the expression of RGSs expressed in C6 astrocytoma cells. The present study found that forskolin dose-dependently stimulated the expression of RGS2 transcripts. This up-regulation of RGS2 gene was abrogated by H-89, potent and broad-spectrum protein kinase A (PKA) inhibitors. Actinomycin D completely inhibited the up-regulation of RGS2 gene induced by forskolin $(10{\mu}M)$, indicating that the regulation of RGS2 gene is controlled at the transcriptional level. In addition, forskolin did significantly activate transcriptional cAMP response element (CRE) in either HEK 293 cells or C6 cells and did not modulate the $NF-{\kappa}B$ and AP-l activity as measured by luciferase reporter gene assay. Finally, forskolin induced the expression of RGS2 mRNA in C6 astrocytoma cells, which depend on the PKA pathway and CRE transcriptional pathways.
MiR-217 can function as an oncogene or a tumour suppressor gene depending on cell type. However, the function of miR-217 in lung cancer remains unclear to date. This study aims to evaluate the function of miR-217 in lung cancer and investigate its effect on the sensitivity of lung cancer cells to cisplatin. The expression of miR-217 was detected in 100 patients by real-time PCR. The effects of miR-217 overexpression on the proliferation, apoptosis, migration and invasion of SPC-A-1 and A549 cells were investigated. The target gene of miR-217 was predicted by Targetscan online software, screened by dual luciferase reporter gene assay and demonstrated by Western blot. Finally, the effects of miR-217 up-regulation on the sensitivity of A549 cells to cisplatin were determined. The expression of miR-217 was significantly lower in lung cancer tissues than in noncancerous tissues (p < 0.001). The overexpression of miR-217 significantly inhibited the proliferation, migration and invasion as well as promoted the apoptosis of lung cancer cells by targeting KRAS. The up-regulation of miR-217 enhanced the sensitivity of SPC-A-1 and A549 cells to cisplatin. In conclusion, miR-217 suppresses tumour development in lung cancer by targeting KRAS and enhances cell sensitivity to cisplatin. Our results encourage researchers to use cisplatin in combination with miR-217 to treat lung cancer. This regime might lead to low-dose cisplatin application and cisplatin side-effect reduction.
To obtain transformed plants, we cocultured cotyledonary explants of Codonopsis lanceolata with Agrobacterium tumefaciens LBA4404, a disamed strain harboring a binary vector pBI121 carrying the CaMV35S promoter-$\beta$-glucuronidase (GUS) gene fusion used as a reporter gene and NOS promoter-neomycin phosphotransferase gene as a positive selection marker in MS liquid medium with 1mg/L BA. After 48 h of culture, explants were transferred onto MS solid medium with Img/L BA, 250mg/L carbenicillin, and 100mg/L kanamycin sulfate and cultured in the dark. Numerous adventitious buds formed on the cut edges of the explants after 2 weeks of culture. When subjected to GUS histochemical assay buds showed a positive response at a frequency of 15%. Explants formed adventitious shoot at a frequency of 56.7%, after 6 weeks of culture. Upon transfer onto the basal medium, most of the shoots were rooted and subsequently the regenerants were transplanted to potting soil. Southern blot analysis confirmed that the GUS gene was incorporated into the genomic DNA of the GUS-positive regenerants.
Our body's immune system has defense mechanisms against pathogens such as viruses and bacteria. Immune responses are primarily initiated by the activation of toll-like receptors (TLRs). In particular, TLR4 is well-characterized and is known to be activated by gram-negative bacteria and tissue damage signals. TLR4 requires myeloid differentiation factor 2 (MD2) as a co-receptor to recognize its ligand, lipopolysaccharides (LPS), which is an extracellular membrane component of gram-negative bacteria. Gambogic acid is a xanthonoid isolated from brownish or orange resin extracted from Garcinia hanburyi. Its primary effect is tumor suppression. Since inflammatory responses are related to the development of cancer, we hypothesized that gambogic acid may regulate TLR4 activation. Our results demonstrated that gambogic acid decreased the expression of pro-inflammatory cytokines ($TNF-{\alpha}$, IL-6, IL-12, and $IL-1{\beta}$) in both mRNA and protein levels in bone marrow-derived primary macrophages after stimulation with LPS. Gambogic acid did not inhibit the activation of Interferon regulatory factor 3 (IRF3) induced by TBK1 overexpression in a luciferase reporter gene assay using IFN-${\beta}$-PRD III-I-luc. An in vitro kinase assay using recombinant TBK1 revealed that gambogic acid did not directly inhibit TBK1 kinase activity, and instead suppressed the binding of LPS to MD2, as determined by an in vitro binding assay and confocal microscopy analysis. Together, our results demonstrate that gambogic acid disrupts LPS interaction with the TLR4/MD2 complex, the novel mechanism by which it suppresses TLR4 activation.
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.33
no.4
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pp.191-197
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2019
This study aims to evaluate the effects of the root bark of Morus alba (RMA) on the regulation of the Hippo-YAP pathway. Hippo-YAP signaling is a critical regulator in controlling organ size and tissue homeostasis. Hippo, the serine/threonine kinase phosphorylate the LATS. Phosphorylated LATS then phosphorylates and inactivates the YAP and TAZ, which are two closely related transcriptional co-activator. Here we report RMA activates the Hippo signaling, thereby inhibits the YAP/TAZ activity. First, we examine the cytotoxic effects of RMA by MTT assay. RMA was cytotoxic at concentrations higher than $50{\mu}g/ml$ in HEK293A cells. The reporter gene assay was performed to measure the activity of TEAD, a key transcription factor that controls cell growth and proliferation. RMA significantly suppressed the luciferase activity. By phos-taq gel shift assay, and western blotting, we showed that RMA enhanced the phosphorylation of YAP in wild type cells, but not in LATS1/2 knock out cells, which means RMA activates classical Hippo pathway. RMA induced the cytoplasmic sequestration of YAP. RMA also suppressed the mRNA expression of CTGF and CYR61; the two major YAP dependent genes. Taken together, RMA is considered to be a good candidate for proliferative disease such as cancer, by facilitating cell death through activating the Hippo signaling pathway.
Transcriptional silencing is regulated by promoter methylation and histone modifications such as methylation and acetylation. We constructed a Schizosaccaromyces pombe reporter strain, KCT120a, to identify modifiers of transcriptional silencing, by inserting the $ura4^+$ gene into a heterochromatic telomere region. Two compounds inhibited the activity of histone deacetylases, induced acetylation of histone H3 and caused apoptotic cell death in HeLa cells. Expression of gelsolin and $p21^{waf1/cip1}$ also increased, as it does in response to HDAC inhibitors such as TSA. Therefore, these compounds appear to be potent inhibitors of HDACs, and hence potential anti-cancer drugs. Our observations suggest that a yeast cell-based assay system for transcriptional silencing may be useful for identifying histone deacetylase inhibitors and other agents affecting chromatin remodeling.
Previous studies have shown that lactic acid bacteria can inhibit inflammatory responses, but the mechanisms are very little known. In this study, transaction and expression of three proinflammatory factors, iNOS, PTGS-2, and IL8, which are closely related to the inflammatory response, were investigated by luciferase reporter assay and RTPCR in HT-29 cells treated by Lactobacillus acidophilus. The results showed that the live L. acidophilus sharply down-regulated the transcription of these three genes. Because there was a NF-${\kappa}B$ binding site located at -265 bp, -225 bp, and -95 bp upstream of the iNOS, PTGS-2, and IL8 promoters, respectively, we further addressed the effects of NF-${\kappa}B$ on transaction of the three promoters by cotransfection. As was expected, NF-${\kappa}Bs$ remarkably upregulated the activity of the reporter gene and, no effect of NF-${\kappa}B$s on IL-8 promoter transaction was found after NF-${\kappa}B$ binding site mutation of the IL8 promoter in HT-29 cells. In conclusion, the live L. acidophilus decreased the transcriptional activity of NF-${\kappa}B$ and, in turn, inhibited the transaction of NF-${\kappa}B$ on the three proinflammatory factors mentioned above.
Hossen, Muhammad Jahangir;Hong, Yong Deog;Baek, Kwang-Soo;Yoo, Sulgi;Hong, Yo Han;Kim, Ji Hye;Lee, Jeong-Oog;Kim, Donghyun;Park, Junseong;Cho, Jae Youl
Journal of Ginseng Research
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v.41
no.1
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pp.43-51
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2017
Background: BIOGF1K, a compound K-rich fraction prepared from the root of Panax ginseng, is widely used for cosmetic purposes in Korea. We investigated the functional mechanisms of the anti-inflammatory and antioxidative activities of BIOGF1K by discovering target enzymes through various molecular studies. Methods: We explored the inhibitory mechanisms of BIOGF1K using lipopolysaccharide-mediated inflammatory responses, reporter gene assays involving overexpression of toll-like receptor adaptor molecules, and immunoblotting analysis. We used the 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) assay to measure the antioxidative activity. We cotransfected adaptor molecules, including the myeloid differentiation primary response gene 88 (MyD88) and Toll/interleukin-receptor domain containing adaptor molecule-inducing interferon-${\beta}$ (TRIF), to measure the activation of nuclear factor (NF)-${\kappa}B$ and interferon regulatory factor 3 (IRF3). Results: BIOGF1K suppressed lipopolysaccharide-triggered NO release in macrophages as well as DPPH-induced electron-donating activity. It also blocked lipopolysaccharide-induced mRNA levels of interferon-${\beta}$ and inducible nitric oxide synthase. Moreover, BIOGF1K diminished the translocation and activation of IRF3 and NF-${\kappa}B$ (p50 and p65). This extract inhibited the upregulation of NF-${\kappa}B$-linked luciferase activity provoked by phorbal-12-myristate-13 acetate as well as MyD88, TRIF, and inhibitor of ${\kappa}B$ ($I{\kappa}B{\alpha}$) kinase ($IKK{\beta}$), and IRF3-mediated luciferase activity induced by TRIF and TANK-binding kinase 1 (TBK1). Finally, BIOGF1K downregulated the NF-${\kappa}B$ pathway by blocking $IKK{\beta}$ and the IRF3 pathway by inhibiting TBK1, according to reporter gene assays, immunoblotting analysis, and an AKT/$IKK{\beta}$/TBK1 overexpression strategy. Conclusion: Overall, our data suggest that the suppression of $IKK{\beta}$ and TBK1, which mediate transcriptional regulation of NF-${\kappa}B$ and IRF3, respectively, may contribute to the broad-spectrum inhibitory activity of BIOGF1K.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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