The aim of this study was to investigate the effect of atrovasatatin on the pharmacokinetics of nicardipine after oral and intravenous administration of nicardipine to rats. Nicardipine was administered orally (12 mg/kg) or intravenously (i.v., 4 mg/kg) without or with oral administration of atrovasatatin (0.3 or 1.0 mg/kg) to rats. The effect of atorvastatin on the P-glycoprotein (P-gp) as well as CYP3A4 activity was also evaluated. Atorvastatin inhibited CYP3A4 enzyme activity in a concentration-dependent manner with 50% inhibition concentration ($IC_{50}$) of 48 ${\mu}M$. Compared to the controls (nicardipine alone), the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of nicardipine was significantly (1.0 mg/kg, p<0.05) greater by 16.8-45.4%, and the peak plasma concentration ($C_{max}$) was significantly (1.0 mg/kg, p<0.05) higher by 28.0% after oral administration of nicardipine with atorvastatin, respectively. Consequently, the relative bioavailability (R.B.) of nicardipine was increased by 1.17- to 1.45-fold and the absolute bioavailability (A.B.) of nicardipine with atrovasatatin was significantly greater by 16.7-20.9% compared to that of the controls (14.3%). Compared to the i.v. control, atrovasatatin did not significantly change pharmacokinetic parameters of i.v. administration nicardipine. The enhanced oral bioavailability of nicardipine by atorvastatin suggests that CYP3A subfamily-mediated metabolism were inhibited in the intestine and/or in the liver rather than P-gp-mediated efflux of nicardipine. Based on these results, modification of nicardipine of dosage regimen is required in the patients. Human studies are required to prove the above hypothesis.
This study was designed to investigate the effects of ticlopidine on the pharmacokinetics of carvedilol after oral or intravenous administration of carvedilol in rats. Carvedilol was administered orally (3 mg/kg) or intravenously (1 mg/kg) without or with oral administration of ticlopidine (4, 12 mg/kg) to rats. The effects of ticlopidine on P-glycoprotein (P-gp) and cytochrome P450 (CYP) 2C9 activity were also evaluated. Ticlopidine inhibited CYP2C9 activity in a concentration-dependent manner with 50% inhibition concentration ($IC_{50}$) of $25.2\;{\mu}M$. In addition, ticlopidine could not significantly enhance the cellular accumulation of rhodamine 123 in MCF-7/ADR cells overexpressing P-gp. Compared with the control group (given carvedilol alone), the area under the plasma concentration-time curve (AUC) was significantly (12 mg/kg, p<0.05) increased by 14-41%, and the peak concentration ($C_{max}$) was significantly (12 mg/kg, p<0.05) increased by 10.7-73.3% in the presence of ticlopidine after oral administration of carvedilol. Consequently, the relative bioavailability (R.B.) of carvedilol was increased by 1.14- to 1.41-fold and the absolute bioavailability (A.B.) of carvedilol in the presence of ticlopidine was increased by 36.2-38.5%. Compared to the i.v. control, ticlopidine could not significantly change the pharmacokinetic parameters of i.v. administered carvedilol. The enhanced oral bioavailability of carvedilol may result from inhibition of CYP2C9-mediated metabolism rather than P-gpmediated efflux of carvedilol in the intestinal and/or in liver and renal eliminatin of carvedilol by ticlopidine.
The aim of this study was to investigate the effect of efonidipine on the pharmacokinetics of warfarin after oral and intravenous administration of warfarin in rats. Warfarin was administered orally (0.2 mg/kg) or intravenously (0.05 mg/kg) without or with oral administration of efonidipine (1 or 3 mg/kg) in rats. The effect of efonidipine on the cytochrome P450 (CYP) 3A4 activity was also evaluated. Efonidipine inhibited CYP3A4 enzyme activity with 50% inhibition concentration ($IC_{50}$) of $0.08{\mu}M$. Compared to those in the oral control group (warfarin without efonidipine), the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of warfarin was significantly greater (1 mg/kg, P<0.05; 3 mg/kg, P<0.01) by 25.9-59.0%, and the peak plasma concentration ($C_{max}$) was significantly higher (3 mg/kg, P<0.05) by 26.2% after oral administration of warfarin with efonidipine, respectively. The total body clearance of warfarin was significantly (3 mg/kg, P<0.05) decreased by efonidifine. Consequently, the relative bioavailability of warfarin was increased by 1.26- to 1.59-fold and the absolute bioavailability of warfarin with efonidipine was significantly greater by 59.7-75.4 % compared to that in the control group (47.4%). In contrast, efonidipine had no effect on any pharmacokinetic parameters of warfarin given intravenously. Therefore, the enhanced oral bioavailability of warfarin may be due to inhibition of CYP 3A4-mediated metabolism in the intestine and/or liver and to reduction of total body celarance rather than renal elimination, resulting in reducing first-pass metabolism by efonidipine.
The present study was to investigate the effect of glipizide on the pharmacokinetics of losartan in rats. Losartan was administered intravenously (3 mg/kg) and orally (9 mg/kg) in the presence and absence of glipizide (0.3 and 1 mg/kg) to rats. The pharmacokinetic parameters of losartan were significantly altered by the presence of glipizide compared with the control group (given losartan alone). Presence of glipizide significantly (p<0.05, 0.3 mg/kg) increased the area under the plasma concentration-time curve (AUC) of losartan by 48.2% and peak plasma concentration ($C_{max}$) of losartan by 47.4%. Consequently, the absolute bioavailability (AB%) of losartan in the presence of glipizide was 38%, which was enhanced significantly (p<0.05) compared to that in the oral control group (25%). The relative bioavailability (RB%) of losartan increased by 1.18- to 1.48-fold in the presence of glipizide. However, there was no significant change in the peak plasma concentration ($T_{max}$) and terminal half-life ($T_{1/2}$) of losartan in the presence of glipizide. In contrast, glipizide did not affect the pharmacokinetics of intravenous losartan. In conclusion, the presence of glipizide significantly enhanced the oral bioavailability of losartan, implying that glipizide might be mainly to inhibit the cytochrome P450 (CYP) 2C9-mediated metabolism, resulting in reducing gastrointestinal and/or hepatic first-pass metabilism of losartan rather than in reducing P-glycoprotein-mediated efflux and renal elimination of losartan. Concurrent use of glipizide with losartan should require close monitoring for potential drug interactions.
A sequential extraction technique was used to study sediment phosphorus speciation and its relative importance in the intertidal flat of Keunso Bay during summer and winter for a better understanding of the phosphorus cycle and bioavailability in intertidal sediments. Loosely sorbed P contents were the lowest among the five P-pools and showed little seasonal or spatial variation. Although Fe-bound P contents were almost constant in winter, they decreased rapidly with sediment depth in summer. The dissolution of Fe oxides, used as an oxidant for the anaerobic respiration, ascribed the rapid decrease of Fe-bound P in summer. Al-bound P contents displayed little seasonal variation, but showed a large spatial variation, with higher values in the upper intertidal flat. Comprising about 50% of total P, Ca-bound P contents were the highest among the five P-pools. Ca-bound P contents were higher in winter than summer, but did not exhibit a clear spatial variation. Organic P contents were higher in summer than winter, which was associated with higher primary production and clam biomass in summer. Organic P contents were higher in the lower intertidal flat than the upper intertidal flat. In Keunso Bay, bioavailable P contents of the intertidal flat comprising about one third of total P ranged from 2.41 to 5.09 ${\mu}molg^{-1}$ in summer and 3.82 to 5.29 ${\mu}molg^{-1}$ in winter. The bioavailability of P contents was higher in the lower intertidal flat than the upper intertidal flat, which was attributed to the large clam production in the lower intertidal flat.
The study was performed to compare the dissolution, diffusion and absorption characteristics using Sartorius dissolution and absorption simulator and in vivo bioavailability of commercially available rifampicin capsules. Both brands C and F showed similar dissolution patterns and absorption properties through artificial gastric barrier in Sartorius simulator. Diffusion rate constants through the membrane of brands C and F were $3.04\;{\times}40^{-3}$ and $2.88\;{\times}\;10^{-3}cm/min$, respectively. Rifampicin capsules were administered orally to six fasted healthy volunteers according to cross-over design. The pharmacokinetic parameters between brands C and F, maximum plasma drug concentration$(C_{max})$, the time to reach $C_{max}$, absorption rate constant and area under the curve $(AUC_{0-24hr})$, elimination rate constant, and amount of drug excreted in urine were 6.11 and $7.27\;{\mu}g/ml$, 2.71 and 1.52 hr, 0.6371 and $1.6456 hr^{-1}$, 57.84 and $57.28\;{\mu}g\;{\cdot}\;hr/ml$, 0.1891 and $0.1734 hr^{-l}$, 119.98 and 119.93 mg, respectively. On the basis of experimental results, it was concluded that the bioavailability of brand C rifampicin capsules was almost the same as that of brand F rifampicin capsules.
A simple HPLC method using UV detection was developed and validated for the determination of levodropropizine (LDP) In dog plasma. The sample was prepared for injection using a liquid-liquid extraction method with 1-phenypiperazine as the internal standard. The mobile phase was methanol - diethylamine solution (0.05 M) (20:80, v/v, pH adjusted to 3.0 with $H_3PO_4$) with a detection wavelength of 240 nm. The limit of quantitation (LOQ) of LDP in a biological matrix was determined to be 25.25 ng/mL. The calibration curve was linear across the concentration range of 25.25 to 2020 ng/mL. The intra-day and inter-day precision values (CV%) were within 7% and accuracy (R.E. %) was within 6% of the nominal values for medium (252.5 ng/mL) and high (2020 ng/mL) LDP concentrations. For the LDP concentration at the LOQ, the intra-day and inter-day precision and accuracy were within 20% and 10%, respectively. The average absolute recovery for LDP was 70.28%. This method was successfully used to analyze plasma samples in a steady-state bioavailability study of a newly developed sustained-release LDP tablets (SR) using immediate-release tablets (IR) as the reference. The relative bioavailability of the SR was determined to be $106.3\;{\pm}\;12.8%$ (n=6). The $C_{max}$ of the SR was significantly lower (p<0.05), and the $t_{max}$ was significantly longer than that of the IR (p<0.05). The results of ANOVA and two one-sided tests indicated that the SR exhibited acceptable sustained release properties and was bioequivalent to the IR.
Cefixime is an orally absorbed 3rd generation cephalosporin with a broad spectrum of activity against Gram-positive and Gram-negative bacteria and is highly resistant to $\beta-lactamase$ degradation. This study was carried out to evaluate the bioavailability of a new test drug of cefixime (100 mg/capsule) relative to the reference drug. The bioavailability was conducted on 20 healthy volunteers who received a single dose (400 mg) of the test and the reference drugs in the fasting state, in a randomized balanced 2-way crossover design. After dosing, serial blood samples were collected for a period of 12 hours. Plasma was analyzed for cefixime by a sensitive and validated HPLC assay. The major pharmacokinetic parameters $(AUC_{0-12hr},\;C_{max},\;T_{max})$ were calculated from the plasma concentration-time data of each volunteer. The $AUC_{0-12hr},\;C_{max}\;and\;T_{max}$ of the test drug were $36.91\pm11.85\;{\mu}g{\cdot}hr/ml,\;5.47\pm1.61\;{\mu}g/ml,\;and\;4.00\pm0.65\;hr,$ respectively, and those of the reference drug were $34.08\pm8.81\;{\mu}g{\cdot}hr/ml,\;5.25\pm1.40\;{\mu}g/ml,\;and\;4.20\pm0.62\;hr$, respectively. Mean differences of those parameters were 8.32, 4.29, and $4.76\%$, respectively, and the least significant differences at $\alpha$=0.05 for $AUC_{0-12hr},\;C_{max},\;T_{max}$ were 16.02, 13.78, and $11.76\%$, respectively. In conclusion, the test drug was bioequivalent with the reference drug.
The purpose of this study was to investigate the effects of nisoldipine on the pharmacokinetics of repaglinide in rats. The effect of nisoldipine on cytochrome P450 (CYP) 3A4 activity and P-glycoprotein (P-gp) were evaluated. The pharmacokinetic parameters of repaglinide were also determined in rats after oral (0.5 $mg{\cdot}kg^{-1}$) and intravenous (0.2 $mg{\cdot}kg^{-1}$) administration of repaglinide to rats without or with nisoldipine (0.3 and 1.0 $mg{\cdot}kg^{-1}$). Nisoldipine inhibited CYP3A4 enzyme activity with a 50% inhibition concentration of 5.5 ${\mu}M$. In addition, nisoldipine significantly enhanced the cellular accumulation of rhodamine-123 in MCF-7/ADR cells overexpressing P-gp. Compared to the oral control group, nisoldipine significantly increased the $AUC_{0-{\infty}}$ and the $C_{max}$ of repaglinide by 46.9% and 24.9%, respectively. Nisoldipine also increased the absolute bioavailability (A.B.) of repaglinide by 47.0% compared to the oral control group. Moreover, the relative bioavailability (R.B.) of repaglinide was 1.16- to 1.47-fold greater than that of the control group. Nisoldipine enhanced the oral bioavailability of repaglinide, which may be attributable to the inhibition of the CYP3A4-mediated metabolism in the small intestine and/or in the liver and to inhibition of P-gp in the small intestine rather than to reduction of renal elimination of repaglinide by nisoldipine. The increase in the oral bioavailability of repaglinide should be taken into consideration of potential drug interactions when co-administering repaglinide and nisoldipine.
A self-microemulsifying drug delivery system (SMEDDS) was developed to increase the dissolution rate, solubility, and ultimately bioavailability of a poorly water soluble drug, lovastatin. SMEDDS was thε mixtures of oils, surfactants, and cosurfactants, which emulsify under conditions of gentle agitation, similar to those which would be encountered in the gastro-intestinal (GI) tract. Various types of self-emulsifying formulations were prepared using four types of oil (Capryol 90, Lauroglycol 90, Labrafil M 1944 CS and Labrafil M 2125), two surfactants (Cremophor EL and Tween 80), and three cosurfactants (Carbitol, PEG 400 and propylene glycol). Thε efficiency of emulsification was studied using a laser diffraction size analyzer to determine particle size distributions of the resultant emulsions. Optimized formulations selected for bioavailability assessment were Carpryol 90 (40%), Cremophor EL (30%) and Carbitol (30%). SMEDDS containing lovastatin (20 mg and 5 mg) were compared to a conventional lovastatin tablet $(Mevacor^{\circledR},\;20\;mg/tab)$ by the oral administration as prefilled hard gelatin capsules to fasted beagle dogs for in vivo study. The arεa under the serum concentration-time curve from time zero to the last measured time in serum, $AUC_{0{\rightarrow}24h}$, was significantly greater in SMEDDS, suggesting that bioavailability increase 130% and 192% by the SMEDDS, respectively. The self-emulsifying formulations of lovastatin afforded the improvement in absolute oral bioavailability relative to previous data of lovastatin tablet formulation. These data indicate the utility of dispersed self-emulsifying formulations for the oral delivery of lovastatin and potentially other poorly absorbed drugs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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