Background: Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) on the surface of Streptococcus dysgalactiae, coded with gapC, is a glycolytic enzyme that was reported to be a moonlighting protein and virulence factor. Objective: This study assessed GAPDH as a potential immunization candidate protein to prevent streptococcus infections. Methods: Mice were vaccinated subcutaneously with recombinant GAPDH and challenged with S. dysgalactiae in vivo. They were then evaluated using histological methods. rGAPDH of mouse bone marrow-derived dendritic cells (BMDCs) was evaluated using immunoblotting, reverse transcription quantitative polymerase chain reaction, and enzyme-linked immunosorbent assay methods. Results: Vaccination with rGAPDH improved the survival rates and decreased the bacterial burdens in the mammary glands compared to the control group. The mechanism by which rGAPDH vaccination protects against S. dysgalactiae was investigated. In vitro experiments showed that rGAPDH boosted the generation of interleukin-10 and tumor necrosis factor-α. Treatment of BMDCs with TAK-242, a toll-like receptor 4 inhibitor, or C29, a toll-like receptor 2 inhibitor, reduced cytokines substantially, suggesting that rGAPDH may be a potential ligand for both TLR2 and TLR4. Subsequent investigations showed that rGAPDH may activate the phosphorylation of MAPKs and nuclear factor-κB. Conclusions: GAPDH is a promising immunization candidate protein for targeting virulence and enhancing immune-mediated protection. Further investigations are warranted to understand the mechanisms underlying the activation of BMDCs by rGAPDH in a TLR2- and TLR4-dependent manner and the regulation of inflammatory cytokines contributing to mastitis pathogenesis.
Despite regular vaccinations, equine influenza virus (EIV) and Streptococcus equi subsp. equi (strangles) are the cause of highly contagious respiratory infections in horses. Many recent studies have reported that the concurrent administration of two vaccines could simplify horse management and minimize veterinary expenses. However, there is little information available regarding the efficacy of concurrent vaccinations against EIV and strangles. In this study, we evaluated EIV-specific antibody responses following the single EIV vaccination with the recombinant viral-vectored EIV vaccine or concurrent vaccination with the EIV and inactivated strangles vaccines. Blood samples were collected at 1-, 2-, 4-, and 8 weeks post-immunization (wpi) from each group. EIV-specific antibodies were evaluated by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and hemagglutination inhibition (HAI) assay. Both single and concurrent vaccination showed similar levels of EIV-specific serum immunoglobulin g (IgG) at 1 and 2 wpi. However, at 4 to 8 wpi, the EIV-only vaccination group showed significantly higher serum IgG levels than those from the concurrently vaccinated group. The HAI titers showed similar trends as the ELISA data, except at 8 wpi when both groups presented HAI titers with no significant differences. These data demonstrate that the concurrent vaccination against EIV and strangles could compromise the humoral immune response to equine influenza between vaccination intervals, which suggests the use of the consecutive vaccination protocol for EIV and strangles rather than concurrent vaccination.
Secretin PilQ is an antigenically conserved outer membrane protein that is present in most meningococci and PorA is a major protein that elicits bactericidal immune response in humans following natural disease and immunization. In the present study, BALB/c mice were immunized subcutaneously with rPilQ406-770 or rPorA together with Freund's adjuvant (FA). Serum antibody responses to serogroup A and B Neisseria meningitides whole cells or purified proteins and functional activity of antibodies were determined by ELISA and serum bactericidal assay (SBA), respectively. Serum IgG responses were significantly increased in the immunized group with rPilQ406-770 or rPorA together with FA compared to control groups. IgG antibody response of mice immunized with rPilQ406-770 was significantly more than mice immunized with rPorA (OD at 450 nm was 1.6 versus 0.83). The booster injections were effective in increasing the responses of antirPilQ406-770 or anti-rPorA IgG significantly. Antisera produced against rPilQ406-770 or rPorA demonstrated strong surface reactivity to serogroup B N. meningitides in comparison with control groups. Antisera raised against rPorA or rPilQ406-770 and FA demonstrated SBA titers from 1/1024 to 1/2048 against serogroup B. The strongest bactericidal activity was detected in sera from mice immunized with rPilQ406-770 mixed with FA. These results suggest that rPilQ406-770 is a potential vaccine candidate for serogroup B N. meningitidis.
Avian pathogenic Escherichia coli (APEC) causes a number of extraintestinal diseases in poultry. A virulence factor, P-fimbriae is firmly associated with the diseases. In this study, to develop an effective vaccine for the prevention of APEC, recombinant attenuatted Salmonella Typhimurium vaccines expressing PapA and PapG of P-fimbriae were evaluated whether these induced protective immune responses in murine models. Female BALB/c mice were primed and boosted orally at 7 and 10 weeks of age. In all immunized mice, the antigen-specific serum IgG levels were remained higher than those in the control mice from the fourth week post inoculation till the end of this study. In addition, antigen-specific serum IgG levels in the prime-booster immunized mice were enhanced as compared to the single immunized mice among each immunized group. The antigen-specific mucosal IgA levels in the mice immunized with each strain also induced higher than those in control mice. In addition, serum IgG and fecal IgA levels in mice administered with the combination of both strains were highly induced compared to those in mice immunized with each strain alone. These results indicated that PapA and PapG worked together for inducing high immune responses. To partly discern the nature of immunity induced by the strains, we quantified serum IgG subtypes IgG1 and IgG2a specific to antigens. The PapA and PapG strains biased the immunity to the Th1-type, as determined by the IgG2a/IgG1 ratio. On the other hand, the immunization with the both strains in combination produced mixed Th1- and Th2-type immune responses. These indicated that immunization with the combination of PapA and PapG could elicit both humoral and cell-mediated immunities.
Park, Moon-Kyoo;Jung, Kyoung-Hwa;Kim, Yeon-Hee;Rhie, Gi-Eun;Chai, Young-Gyu;Yoon, Jang-W.
Korean Journal of Microbiology
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제46권1호
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pp.21-26
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2010
As the causative agent of Anthrax, Bacillus anthracis causes an acute fatal disease in herbivores such as cattle, sheep, and horses as well as humans. The therapeutics and prevention of anthrax currently available are based on antibiotics and the live attenuated vaccine strains, which may be problematic due to the emergency of antibiotic resistant strains or residual virulence in those vaccine strains. Therefore, it has been required to develop novel therapeutics and vaccines which are safer and applicable to humans. Recently, the development of the multivalent vaccine targeting both spores and vegetative cells of B. anthracis along with anthrax toxin has been reported. In our attempts to screen potential candidates for those multivalent vaccines, the whole genomic expression library of B. anthracis was constructed in this study. To the end, the partial digests of the genomic DNA from B. anthracis (ATCC 14578) with Sau3AI were ligated with the inducible pET30abc expression vectors, resulting in approximately $1{\times}10^5$ clones in E. coli BL21(DE3). The redundancy test by DNA nucleotide sequencing was performed for the randomly selected 111 clones and found 56 (50.5%) B. anthracis genes, 17 (15.3%) vector sequences, and 38 (34.2%) unknown genes with no sequence homology by BLAST. An inducible expression of the recombinant proteins was confirmed by Western blot. Interestingly, some clones could react with the antiserum against B. anthracis. These results imply that the whole genomic library constructed in this study can be applied for analyzing the immunomes of B. anthracis.
A research group demonstrated that the 37 kDA protein of Edwardsiella tarda, a causing causative agent of edwardsiellosis in fish, exhibited high antigenicity in Japanese flounder. The research group also showed that the N-terminus amino acid sequences of the 37 kDa protein were mapped to the N-terminus of GAPDH (glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase). Using degenerated primer sets based on the known N-terminus sequence, the corresponding E. tarda DNA was amplified and cloned. The nucleotide sequences of the cloned gene revealed high homology with a bacterial gene for GAPDH, as we was expected. The amino acid sequence of E. tarda GAPDH (etGAPDH) revealed a <70% similarity with GAPDH proteins in other Enterobacteriaceae. With the application of artificial protein overexpression system in Escherichia coli, the recombinant etGAPDH (rGAPDH) was produced and purified. In this study, Using the purified rGAPDH, the etGAPDH specific polyclonal antibody has been was generated using the purified rGAPDHin this study. The immunoblotting analyses demonstrated that the location of the GAPDH protein is located with the association of is associated with the envelops of E. tarda. The rGAPDH was administrated into Japanese flounder via IP route for evaluation of the protective ability. Although the specific antibody titer against etGAPDH was increased about 3-fold after 4 weeks post-vaccination, the survival rates of vaccinated Japanese flounder and the control group with wild type E. tarda was were 12.5% and 0%, respectively. Our results indicated that rGAPDH is immunoreactive antigen but that it will not generate protective immunity in Japanese flounder.
Kim, Su-Kyeong;Kim, Jae-Gon;Baik, Byeong-Ju;Yang, Yeon-Mi;Lee, Kyung-Yeol;Park, Jeong-Yeol
Journal of the korean academy of Pediatric Dentistry
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제35권1호
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pp.73-82
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2008
Dental caries is an infectious disease caused by mutans streptococci, and is a primary etiologic agent of dental caries in humans. The molecular pathogenesis of mutans streptococcal-associated dental caries occurs in three phases. Firstly, S. mutans attaches to tooth surface via a cell surface adhesion termed antigen I/II. In the second phase, the glucosyltransferase(GTFs) synthesize polymers like glucans in the presence of sucrose. In the third phase, the multivalent glucans interacts with glucan binding proteins (GBPs) and they make dental plaque and accumulation of microorganisms. Many studies and clinical trials have indicated that a mucosal immune response to these antigens(Ag I/II, GTFs, GBPs) of S. mutans can influence the pathogenesis of dental caries. So these antigens can be important vaccine candidates for immunologic intervention against dental caries. In this study, we cloned the genes for GTFb, GTFc, GTFd from S. mutans GS-5 and did the nucleotide sequence analysis. And the recombinant proteins of GTFd and N-terminus of GTFd were expressed. Intact GTF which we get from this experiment can be used for antibody production specific for any GTF activity domain through animal experiment.
The discovery and understanding of antigenic proteins are essential for development of a vaccine against malaria. In Plasmodium falciparum, Pf92 have been characterized as a merozoite surface protein, and this protein is expressed at the late schizont stage, but no study of Pv92, the orthologue of Pf92 in P. vivax, has been reported. Thus, the protein structure of Pv92 was analyzed, and the gene sequence was aligned with that of other Plasmodium spp. using bioinformatics tools. The recombinant Pv92 protein was expressed and purified using bacterial expression system and used for immunization of mice to gain the polyclonal antibody and for evaluation of antigenicity by protein array. Also, the antibody against Pv92 was used for subcellular analysis by immunofluorescence assay. The Pv92 protein has a signal peptide and a sexual stage s48/45 domain, and the cysteine residues at the N-terminal of Pv92 were completely conserved. The N-terminal of Pv92 was successfully expressed as soluble form using a bacterial expression system. The antibody raised against Pv92 recognized the parasites and completely merged with PvMSP1-19, indicating that Pv92 was localized on the merozoite surface. Evaluation of the human humoral immune response to Pv92 indicated moderate antigenicity, with 65% sensitivity and 95% specificity by protein array. Taken together, the merozoite surface localization and antigenicity of Pv92 implicate that it might be involved in attachment and invasion of a merozoite to a new host cell or immune evasion during invasion process.
Cho Eun-jung;Kim Do-kyong;Kim Sang-hyun;Kim Yeong-il;Lee Chul-hyun;Lee Woo-won;Son Won-geun;Shin Jong-Uk;Kim Yong-hwan
Journal of Veterinary Clinics
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제22권4호
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pp.386-391
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2005
This study was done to produce a mutated protein inactivated cytotoxicity of Shigatoxin 2e (Stx2e) of E.coli O139 isolates by deletional mutagenesis of Stx2e A subunit gene encoding active-site cleft of enzymatic domain in ST2e holotoxin. Cytotoxicity of the toxoid expressed from the mutant Stx2e gene was compared with wild type Stx2e for development of vaccine candidate. A recombinant plasmid pED18 containing Stx2e gene ot E.coli O139 isolates was used to generate mutation plasmid. Deletion mutagenesis was conducted for Stx2e A subunit gene encoding enzymatically active domain by polymerase chain reaction (PCR) using ot designed primer to induce deletional mutation. DNA sequence analysis was confirmed that the pentamer (Typ 202- Ser 206) that lies within the proposed active-site cleft in the second region was completely deleted. A DNA fragment of 1.1 kb that encode the new mutant Stx2eA gene was inserted into plasmid pRSET vector digested with EcoRV-Hind III and named pEDSET The PEDSET was transformed in E. coli for expression of mutant protein and the protein was confirmed by SDS-PACE and Western-blotting. The protein expressed by the mutant was tested to confirm the reduction of cytotoxic activities on Vero cell using microcytotoxicity assay compared with wild type Stx2e, the cytotoxicity of deletional mutant protein was at least reduced by 3,000-fold on Vero cell.
Classical swine fever (CSF) is a highly contagious disease of pigs caused by CSF virus (CSFV). E2 is the major viral envelope protein of immune dominance that induces neutralizing antibodies and confers protection against CSFV infection. The B/C domains of E2 are variable among CSFV isolates, which could affect immunogenicity and binding to antibodies. We attempted to characterize the epitope recognized by a monoclonal antibody 2B6 (mAb-2B6) raised against the E2 B/C domains of the vaccine C-strain and to examine if mutations in the epitope region would affect antibody binding and viral neutralization. The epitope specific for mAb-2B6 recognition is linear, spanning five residues 774DGXNP778 in the B/C domains. The residue N777 is indispensable for the specificity. The epitope exists only in group 1 strains, but not in those of group 2. The recombinant viruses containing individual mutations on the epitope region lost the reactivity to mAb-2B6. The mutant virus RecC-N777S had low replication potential, about 10-fold decrease in the yield of progeny virus particles, whereas the mutant virus RecC-P778A reverted to proline upon continuous passaging. The mutations on the mAb-2B6 epitope region did not affect neutralization by anti-C-strain polyclonal sera from pigs. Deletion from aa774 covering the mAb-2B6 epitope, but not that from aa781, also affected binding with the polyclonal antibodies from vaccinated pigs, although the major binding region for the vaccinated antibodies is aa690-773.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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