A TGF-${\beta}1$/GFP monomeric fusion protein was cloned from pPK9A and pGFP-Cl plasmid by PCR amplification. The fusion protein was expressed in a $Bac-To-Bac^{TM}$ baculovirus expression system. A 45 kDa fusion protein was purified using an Ni-NTA column with 300 mM imidazol from a cell lysate infected with recombinant viruses for 72 h post-infection. The fusion protein cross-reacted with the commercial $TGF-{\beta}1$ polyclonal Ab as well as Ab raised against a precursor, monomeric $TGF-{\beta}1$, and GFP. The binding activity of the fusion protein with a $TGF-{\beta}1$ receptor was examined. Fluorescence was observed in Mv1Lu cells, yet not in insect cells treated with the fusion protein. No fluorescence was detected in Mv1Lu cells incubated with the fusion protein treated with Ab prior to the binding reaction, or with GFP alone, thereby indicating that the binding of the fusion protein was specific to $TGF-{\beta}1$ with a receptor.
Hepatitis C virus (HCV) E2 protein is known to be one of putative envelope proteins. To develop a sensitive detection method for HCV infected tissues and cells, monoclonal antibodys (MAbs) to the E2 protein of HCV were prepared from mice immunized with recombinant baculovirus-expressing E2 protein (Bac-E2). Several hybridoma clones secreting various levels of MAb were isolated and isotypes of these MAb were determined. One clone (L.2.3.3) was used for ascites production and the E2-MAb was purified and characterized. The L.2.3.3 reacted well with both Bac-E2 and E. coli expressed glutathione-S-transferase-E2 (GST-E2) fusion proteins. Using HCV patient sera, E2 envelope protein was found to be localized in the cell membrane boundary both in CHO cells and insect cells which express HCV E2 protein. Similar result was obtained when same cells were treated with the MAb L.2.3.3. These results demonstrated that Bac-E2 protein is capable of eliciting high titer antibody production in mice.
We have expressed GFP in Sf9 and Bm5 cells or Bombyx mori larvae by using Ac-Bm hybrid virus capable of replicating in both Bm5 and Sf9 cells. Genomic DNA of Ac-Bm hybrid virus expressing ${\beta}$-galactosidase was cotransfected with baculovirus transfer vector containing GFP gene, pBacPAK-GFP in Sf9 cells. The Ac-Bm hybrid virus harboring GFP was named as Ac-Bm hybrid virus-GFP. The Ac-Bm hybrid virus-GFP-infected insect cells were easily selected by detecting the emission of GFP from each well of cell culture dish on the UV illuminator. GFP produced by Ac-Bm hybrid virus-GFP in Sf9 and Bm5 cells or B. mori larvae was confirmed by SDS-PAGE and Western blot analysis using GFP antibody. In addition, B. mori larvae infected with Ac-Bm hybrid virus-GFP was apparently appeared fluorescence from the whole body at S days postinoculation. The fluorescence of GFP from the hemolymph and fat body of B. mori larvae infected with Ac-Bm hybrid virus-GFP was also observed by fluorescence microscope. In conclusion, our results demonstrated that in baculovirus expression vector system, use of Ac-Bm hybrid virus have an additional advantage of expanded host range for producing recombinant proteins.
The human muscarinic acetylcholine receptor (mAChR) subtypes Hml, Hm2 and Hm3 have been expressed in insect cells (Spodoptera frugiperda, Sf9) using the baculovirus expression system. Expression of relevant DNA, transcript and receptor proteins was identified by PCR, Northern blotting and [$^{3}H$]QNB binding, respectively. As assessed by [$^{3}H$]QNB binding sites, yields of muscarinic receptors in membrane preparations in this study were as about 5-20 times high as those in mammalian cells reported in previous studies. The [$^{3}H$]QNB competition binding studies with well-known subtype-selective mAChR antagonists showed that the receptors expressed in Sf9 cells retain the pharmacological characteristics expected for the ml , m2 and m3 muscarinic receptors. The ml-selective antagonist, pirenzepine, displayed a considerably higher affinity for Hml by 110-fold and 35-fold than for Hm2 and Hm3, respectively, The m2-selective methoctramine displayed a significantly higher affinity for Hm2 than for Hml and Hm3 (10- and 26-fold, respectively). p-F-HHSiD exhibited high affinity for Hm3 that is not significantly different from those for Hml, but 66-fold higher than its affinity for Hm2. The functional coupling of the recombinant receptors to second messenger systems was also examined. While both Hml and Hm3 stimulated phosphoinositide hydrolysis upon activation by carba-chol, Hm2 produced no response. On the other hand, activation of mAChRs induced the inhibition of forsko-lin-stimulated cyclic AMP formation in Hm2-expressing cells, whereas the significant dose-dependent increase in or poor response on cyclic AMP formation were produced in Hml or Hm3-expressing cells, respectively. These results indicate the differential coupling of recombinant Hml, Hm2 and Hm3 receptors expressed in SF9 cells to intracellular signalling system.
Autographa californica 핵다각체병 바이러스(AcNPV)의 다각체 단백질과 Bacillus thuringiensis(Bt) cryIA(c) 내독소 단백질의 융합단백질을 생산하는 새로운 재조합 바이러스를 제작하고, 곤충세포주(Spodoptera frugiperda 9)에서 발현된 융합단백질의 특성을 분석하였다. Bt kurstaki HD-73의 cryIA(c) 내독소 단백질 유전자의 N-발단 AcNPV의 완전한 다각체 단백질 유전자의 앞쪽에 융합함에 의하여 또는 다닥체 단백질 유전자내의 제한효소 HindII부위에 삽입함에 의하여 다각체 단백질 유전자의 프로모터 조절하에 도입하였다. 이렇게 작성된 재조합 바이러스를 각각 Btrusl 또는 BtrusII라고 명명하였다. BtrusI은 분명히 단일 전사체를 보임에도 92kDa의 융합 단백질과 다각체 단백질의 두 단백질을 생산하였다. 또한 Btrusl에 의해 만들어진 융합 단백질은 다각체를 형성하지 않았다. 한편, BtrusII에 의해 감염된 곤충세포주에서는 33kDa의 다각체 단백질은 보이지 않았고 단지 융합 단백질만 생산하였으나 다각체는 형성하지 않았다. 따라서 Btrusl에 의해 생산된 융합 단백질의 독성을 조사하기 위하여, Btrusl으로 감염된 곤충세포주를 2령 누에(Bombyx mori)에 접종한 결과 융합 단백질에 의한 독성이 관찰되었다. 결론적으로 다각체 단백질과 Bt cryIA(c) 내독소 단백질에 의한 융합 단백질이 독성을 가지고 있음을 확인하였다.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제3권1호
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pp.13-18
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2001
The role of polyhedrin in the polyhedra production in baculovirus Autograha californica Nucelopolyhedro-sisvirus (AcNPV) was studied by over-expression of AcNPV polyhedrin or heterologous polyhedrin from Bombyx mori (Bm) NPV or Spodoptera exigua (Se) NPV. The transfer vectors containing additional polyhedrin from AcNPV, BmNPV, or SeNPV were constructed and cotransfected with bacmid bApGOZA into Sf9 cells. The resulting recombinants, designated as vApAcPol, vApBmPol, and vApSePol were tonstructed, and the polyhedra production of the recombinant was characterized. All of the recombinants produced polyhedra in the nucleus, and the polyhedrin was over-expressed. Among three recombinants, vApAcPol and vApBmPol were discriminated by their larger polyhedra size than that of wild type AcNPV, and vApSePol also produced larger polyhedra than wild type SeNPV polyhedra.
Three insect cell lines, Sf9, Sf21 and Tn5Bl-4, and four different kinds of serum free media (SFM), Sf 900 II, EX-CELL 420, EX-CELL 405 and Express Five, were used to compare the nutrient consumption, byproduct formation, production of recombinant protein and protease activity in suspension cultures. The Sf 900 II SFM was a ppropriate for the cell growth and protein production of the Sf9 and Sf21 cell lines. When the Tn5Bl-4 cell line was grown in the Express Five SFM, the specific growth rate was 1.6 fold higher than those of either the Sf9 or Sf21 cell lines. The glucose and glutamine consumption rates per cells, were 4 and 2.3 times higher than those of the Sf9 cell line, respectively. The overall yield coefficients of the lactate and ammoniumion were 2.8 and 1.5 times higher compared to those of the Sf9 cell line. respectively. The maximum specific ${\beta}$-galactosidase production rate was 4.5 fold that of the Sf9 cell line, a 3 times higher protease activity per cell.
In order to direct the form of the immune response in an antigen-specific manner, we constructed a fusion protein (OVA/IL12) that contained the T cell-dependent antigen, ovalbumin (OVA), covalently linked to murine interleukin-12 (IL-12). The OVA/IL12 protein was produced in a baculovirus expression system and was purified by anti-OVA immunoaffinity chromatography. The purified OVA/ILI2 protein displayed potent IL-12 bioactivity in an IL-12 proliferation assay. BALB/c mice immunized with the OVA/IL12 protein produced increased quantities of anti-OVA IgG2a antibody compared with mice immunized with recombinant OVA alone. Lymph node cells from the immunized mice with the OVA/IL12 protein produced large amounts of IFN-,Y when restimulated in vitro with OVA, while those from mice immunized with the OVA protein produced little or no IFN-.gamma.. In contrast, immunization with a mixture of OVA and free recombinant IL-12 also induced IFN-.gamma. production, which was not OVA-specific. These studies indicate that the OVA/IL12 fusion protein can induce OVA-specific, Th1-dominated immune responses, and that the covalent linkage of OVA and IL-12 confines the effect of IL-12 to OVA-specific cells.
The number of sites at which a protein can be readily cleaved by a proteolytic enzyme is greatly influenced by its three-dimensional structure. For native, properly-folded proteins both the rate of cleavage and number of sites at which cleavage takes place are usually much less than for the denatured protein. In order to compare the tertiary structure of recombinant HepG2 type glucose transporter with that of its native counterpart in the erythrocyte, the pattern of tryptic cleavage of the protein expressed in insect cell membranes was therefore examined. After 30 minutes digestion, a fragment of approximate Mr 19,000-21,000 was generated. In addition to this, there were two less intensely stained fragments of apparent Mr 28,000 and 17,000. The pattern of labelling was similar up to 2 hours of digestion. However, the fragments of Mr 19,000-21,000 and Mr 17,000 were no longer detectable after 4 hours digestion. The observation of a very similar pattern of fragments yielded by tryptic digestion of the HepG2 type transporter expressed in insect cells suggests that the recombinant protein exhibits a tertiary structure similar if not identical to that of its human counterpart. Also, the endogenous sugar transporter(s) present in Sf21 cells did not bind cytochalasin B, the potent transporter inhibitor. Therefore, the baculovirus/Spodoptera frugiperda (Sf) cell expression system could be very useful for production of large amounts of human glucose transporters, heterologously.
Park, Kwan Ho;Choi, Young Cheol;Nam, Seong Hee;Hwang, Jae Sam;Nho, Si Kab
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제25권2호
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pp.187-193
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2012
Serine proteases are major insect enzymes involved in the digestion of dietary proteins and in the process of blood meal digestion. In this study, cDNA was constructed using the whole body of Laccotrephes japonensis. The flanking sequences of the 5- and 3- end of this gene were characterized by RACE-PCR. Sequence analysis showed that this gene contained a 963-bp ORF encoding 320 amino acids. The deduced amino acid sequence showed 62% identity with the Creontiades dilutus serine protease, 58% with the Lygus lineolaris trypsin precursor, and 54% with the Triatoma infestans salivary trypsin. To assess the expression of the L. japonensis serine protease (JGsp), the JGsp gene was cloned into a baculovirus transfer vector, pBac-1, and expressed in Sf9 cells (Spodoptera frugiperda). SDS-PAGE and western blot analysis have shown that the JGsp recombinant protein was a monomer with a molecular weight of about 32 kDa. Recombinant JGsp has shown activity in the protease enzyme assay using gelatin as a substrate.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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