Bacteriophage N4, a lytic phage specific for Esherichia coli K12 strain encodes single-stranded DNA-binding protein, N4SSB (bacteriophage N4-coded single-stranded DNA-binding protein). N4SSB protein is originally identified as a protein required for N4 DNA replication. N4SSB protein is also required for N4 late transcription, which is catalyzed by E. coli ${\sigma}^{70}$ RNA polymerase. N4 late transcription does not occur until N4SSB protein is synthesized. Recently it is reported that N4SSB protein is essential for N4 DNA recombination. Therefore N 4SSB protein is a multifunctional protein required for N4 DNA replication, late transcription, and N4 DNA recombination. In this study, a variety of mutant N4SSB proteins containing internal deletions or substitutions were constructed to define and characterize domains important for N4 DNA replication, late transcription, and N4 DNA recombination. Test for the ill vivo activity of these mutant N4SSBs for N4 DNA replication, late transcription, and N4 DNA recombination was examined. The results suggest that C-terminal 7 amino acid residues are important for the activity of N4SSB. Three lysine residues, which are contained in this region play important roles on N4SSB activity.
Park, Seung-Won;Kim, Tai-Gyu;You, Ji-Chang;Schubert, Manfred;Paik, Soon-Young
The Journal of Korean Society of Virology
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v.30
no.1
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pp.83-99
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2000
A defective HIV-1 helper virus DNA, pHyPC, was assembled by deleting the RNA packaging signal, env, nef and the 3'LTR sequences. HIV-1 like virus particles that carry the HIV-1 receptor, CD4 were generated by co expression of pHyPC and plasmid DNAs encoding different chimeric CD4 proteins. The CD4 particles, sharing the CD4 ectodomain, precisely fused to different membrane anchors. CD4(+) particles specifically bound to HIV-1 Env expressing cells, but any signs of infection into these cells were not detected. Binding was only partially blocked by either polyclonal anti-CD4 antibodies or by high concentrations of soluble CD4. Surprisingly, CD4(+) particles also adsorbed to HeLa, CHO, NIH3T3 and COS-7 cells in the absence of HIV-1 Env expression. Adsorption was comparable in strength and speed to the highly specific CD4-Env interaction. CD4(-) particles exhibited only background levels of binding. Cell binding was CD4. dependent, but it was independent of the cell type from which the CD4(+) particles originated. Interestingly, CD4-dependent/Env-independent binding was only found when CD4 was present on virus particles. This suggests that the micro-environment of CD4 on virus particles uniquely expose this new cell binding activity. Its high affinity could explain in part why infection of Env(+) cells by CD4(+) particles was not detected. Further experiments will be required to evaluate whether this strong membrane interaction could represent one step in the multiple-step viral entry process.
Cha, In Jun;Lee, Davin;Park, Sung Soon;Chung, Chang Geon;Kim, Seung Yeon;Jo, Min Gu;Kim, Seung Yeol;Lee, Byung-Hoon;Lee, Young-Sam;Lee, Sung Bae
Molecules and Cells
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v.43
no.10
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pp.870-879
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2020
Dendrites require precise and timely delivery of protein substrates to distal areas to ensure the correct morphology and function of neurons. Many of these protein substrates are supplied in the form of ribonucleoprotein (RNP) complex consisting of RNA-binding proteins (RBPs) and mRNAs, which are subsequently translated in distal dendritic areas. It remains elusive, however, whether key RBPs supply mRNA according to local demands individually or in a coordinated manner. In this study, we investigated how Drosophila sensory neurons respond to the dysregulation of a disease-associated RBP, Ataxin-2 (ATX2), which leads to dendritic defects. We found that ATX2 plays a crucial role in spacing dendritic branches for the optimal dendritic receptive fields in Drosophila class IV dendritic arborization (C4da) neurons, where both expression level and subcellular location of ATX2 contribute significantly to this effect. We showed that translational upregulation through the expression of eukaryotic translation initiation factor 4E (eIF4E) further enhanced the ATX2-induced dendritic phenotypes. Additionally, we found that the expression level of another disease-associated RBP, fragile X mental retardation protein (FMRP), decreased in both cell bodies and dendrites when neurons were faced with aberrant upregulation of ATX2. Finally, we revealed that the PAM2 motif of ATX2, which mediates its interaction with poly(A)-binding protein (PABP), is potentially necessary for the decrease of FMRP in certain neuronal stress conditions. Collectively, our data suggest that dysregulation of RBPs triggers a compensatory regulation of other functionally-overlapping RBPs to minimize RBP dysregulation-associated aberrations that hinder neuronal homeostasis in dendrites.
The present study was aimed at investigating the regulatory mechanism in tissue-specific expression of insulin-like growth factor-I (IGF-I) gene. The expression of IGF-I gene was determined by a solution hybridization/RNase protection assay using total RNA prepared from rat liver or brain of various ages. The levels of IGF-I transcripts were increased in liver gradually after birth, but decreased in brain. By using an oligonucleotide (FRE) corresponding to the C/EBP binding site of the rat IGF-I exon 1, multiple forms of C/EBP${\alpha}$ and C/EBP${\beta}$ proteins, which have DNA-binding activity, were detected in the rat liver or brain. Western immunoblot and southwestern analyses show that p42$\^$C/EBP${\alpha}$/, p38$\^$C/EBP${\alpha}$/, p35$\^$C/EBP${\alpha}$/, p38$\^$C/EBP${\beta}$/, and p35$\^$C/EBP${\beta}$ form specific complexes with the IGF-I exon 1 oligonucleotide in liver nuclear extract and that p42$\^$C/EBP${\alpha}$/ and p38$\^$C/EBP${\beta}$/ form complexes in brain. These data suggest that the formation of FRE-C/EBP isoform complexes may play important roles in the tissue-specific regulation of IGF-I gene expression.
Jang, Won Hee;Jeong, Young Joo;Urm, Sang-Hwa;Seog, Dae-Hyun
Journal of Life Science
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v.26
no.8
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pp.963-969
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2016
Kinesin superfamily proteins (KIFs) are microtubule-dependent molecular motor proteins essential for the intracellular transport of organelles and protein complexes in cells. Kinesin 1 is a member of those KIFs that transport various cargoes, including organelles, synaptic vesicles, neurotransmitter receptors, cell signaling molecules, and mRNAs through interaction between its light chain subunit and the cargoes. Kinesin light chains (KLCs) are non-motor subunits that associate with the kinesin heavy chain (KHC) dimer. KLCs interact with many different binding proteins, but their particular binding proteins have not yet been fully identified. We used the yeast two-hybrid assay to identify proteins that interact with the tetratricopeptide repeat (TPR) domain of KLC1. We found an interaction between the TPR domain of KLC1 and Wiskott-Aldrich syndrome protein family member 1 (WAVE1), a member of the WASP/WAVE family involved in regulation of actin cytoskeleton. WAVE1 bound to the six TPR domain-containing regions of KLC1 and did not interact with KHCs (KIF5A, KIF5B, and KIF5C) in the yeast two-hybrid assay. The carboxyl (C)-terminal verprolin-cofilin-acidic (VCA) domain of WAVE1 is essential for interaction with KLC1. Also, other WAVE isoforms (WAVE2 and WAVE3) interacted with KLC1 in the yeast two-hybrid assay. When co-expressed in HEK-293T cells, WAVE1 co-localized with KLC1 and co-immunoprecipitated with KLC1 and KIF5B. These results suggest that kinesin 1 motor protein may transport WAVE complexes or WAVE-coated cargoes in cells.
Streptavidin, a protein produced by Streptomyces avidinii, strongly binds up to four molecules of vitamin H, d-biotin exhibiting the dissociation constant of about 10−15 M. This strong binding affinity has been applied for detection and characterization of numerous biological molecules suggesting expression and purification of functional streptavidin should be very useful for the application of this streptavidin-biotin interaction. To express a soluble streptavidin in Escherichia coli, We synthesized streptavidin genes and cloned into pET-22b plasmid, which uses T7 RNA polymerase/T7 promoter expression systems containing pelB leader for secretion into periplasmic space and six polyhistidine tags at C-terminus for purification of expressed proteins. Although streptavidin is toxic to Escherichia coli due to strong biotin binding property, streptavidin was expressed very sufficiently in a range of 10-20 mg/ml. In SDS-PAGE, the size of purified protein was shown as 17 kDa in denatured condition (boiling) and 68 kDa in native condition (without boiling) suggesting tetramerization of monomeric subunit by non-covalent association. Further analysis by size-exclusion chromatography supported streptavidin’s tetrameric structure as well. In addition, soluble streptavidin detected biotinylated proteins in westernblot indicating its functional activity to biotin. Taken these results together, it concluded that our simple expression system was able to show high yield, homotetrameric formation and biotin binding activity analogous to natural streptavidin.
Most problematic antibiotic resistance mechanism for MLS (macrolide-lincosamide-streptogramn B) antibiotics encountered in clinical practice is mono- or dimethylation of specific adenine residue at 2058 (E. coli coordinate) of 23S rRNA which is performed by Erm (erythromycin ribosome resistance) protein through which bacterial ribosomes reduce the affinity to the antibiotics and become resistant to them. ErmSF is one of the four gene products produced by Streptomyces fradiae to be resistant to its own antibiotic, tylosin. Unlike other Erm proteins, ErmSF harbors idiosyncratic long N-terminal end region (NTER) 25% of which is comprised of arginine well known to interact with RNA. Furthermore, NTER was found to be important because when it was truncated, most of the enzyme activity was lost. Based on these facts, capability of NTER peptide to inhibit the enzymatic activity of ErmSF was sought. For this, expression system for two different proteins to be expressed in one cell was developed. In this system, two plasmids, pET23b and pACYC184 have unique replication origins to be compatible with each other in a cell. And expression system harboring promoter, ribosome binding site and transcription termination signal is identical but disparate amount of protein could be expressed according to the copy number of each vector, 15 for pACYC and 40 for pET23b. Expression of NTER peptide in pET23b together with ErmSF in pACYC 184 in E. coli successfully gave more amounts of NTER than ErmSF but no inhibitory effects were observed suggesting that there should be dynamicity in interaction between ErmSF and rRNA rather than simple and fixed binding to each other in methylation of 23S rRNA by ErmSF.
The regulation of flowering time has crucial implications for plant fitness. MicroRNA156 (miR156) represses the floral transition in Arabidopsis thaliana, but the mechanisms regulating its transcription remain unclear. Here, we show that two AGAMOUS-like proteins, AGL15 and AGL18, act as positive regulators of the expression of MIR156. Small RNA northern blot analysis revealed a significant decrease in the levels of mature miR156 in agl15 agl18 double mutants, but not in the single mutants, suggesting that AGL15 and AGL18 co-regulate miR156 expression. Histochemical analysis further indicated that the double mutants showed a reduction in MIR156 promoter strength. The double mutants also showed reduced abundance of pri-miR156a and pri-miR156c, two of the primary transcripts from MIR156 genes. Electrophoretic mobility shift assays demonstrated that AGL15 directly associated with the CArG motifs in the MIR156a/c promoters. AGL18 did not show binding affinity to the CArG motifs, but pull-down and yeast two-hybrid assays showed that AGL18 forms a heterodimer with AGL15. GFP reporter assays and bimolecular fluorescence complementation (BiFC) showed that AGL15 and AGL18 co-localize in the nucleus and confirmed their in vivo interaction. Overexpression of miR156 did not affect the levels of AGL15 and AGL18 transcripts. Taking these data together, we present a model for the transcriptional regulation of MIR156. In this model, AGL15 and AGL18 may form a complex along with other proteins, and bind to the CArG motifs of the promoters of MIR156 to activate the MIR156 expression.
Kim, Byung-Ock;Han, Kyung-Yoon;Choi, Young-Sun;Kim, Se-Hoon;Park, Byung-Gi;Kim, Heung-Joong;Park, Joo-Cheol
Journal of Periodontal and Implant Science
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v.31
no.1
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pp.109-122
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2001
Gingival fibroblasts(GF) and periodontal ligament fibroblasts(PDLF) are the major cellular components of periodontal soft connective tissues, but the precise molecular biological differences between these cells are not yet known. In the present study, we investigated the expression of S100A4, S100A2 calcium-binding protein and osteoblast-specific factor 2(OSF-2, Periostin) mRNA in GF and PDLF in vitro through the process of reverse transcription-polymerase chain reaction(RT-PCR) and Northern blot analysis in each. Human GF and PDLF were isolated from the gingival connective tissue and the middle third of freshly extracted healthy third molars. They were cultured in Dulbecco's Modified Eagle Medium(DMEM) containing 10% fetal bovine serum and cells in the third passage were used in the experiments. After extracting total RNA from cultured cells, RT-PCR and Northern analysis were performed using S100A4-, S100A2- and Periostin-specific oligonucleotide primers and subcloned cDNA probes in each. In PT-PCR and Northern analysis, the expression of S100A4 and Periostin mRNA in GF was slightly detectable. Interestingly, the expression of S100A4 and periostin mRNA in PDLF was much higher than that in GF. On the other hand, S100A2 mPNA was highly expressed in both GF and PDLF. Since there was a marked difference of S100A4 and Periostin expression between GF and PDLF in vitro, these data suggest that S100A4 and periostin could be used as a useful marker for distinguishing cultured gingival fibroblasts and periodontal ligament cells.
Yoo-Kyung Kim;Jongan Lee;Sang-Min Shin;Yeoung-Gyu Ko;Ji-Hyun Yoo;Miyoung Won
Journal of Life Science
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v.33
no.12
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pp.987-994
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2023
This study examined the associations between the genotypes of the galactose mutarotase (GALM) gene and carcass traits in the Hanwoo population of Jeju Island, South Korea. The GALM genotypes were determined by the 14-bp (5'-GGTCTAATGACCAG-3') insertion/deletion (InDel) polymorphisms of the 3'-untranslated region (UTR). All three genotypes (LL, LS, and SS) were found in the Hanwoo steer population. The association analysis showed significant associations between genotypes and several carcass traits, including traits related to intramuscular fat content, such as meat quality, marbling score, and backfat thickness (p<0.05). Animals harboring the SS genotype showed not only higher levels of intramuscular fat content but also lower levels of backfat thickness than animals harboring the LL and LS genotypes. On the other hand, no significant associations were found between the GALM genotypes and carcass weight, eye muscle area, meat color, or fat color (p>0.05). Deleting the 14-bp segment in the 3'-UTR resulted in the modification of the secondary structure of RNA and appeared to affect gene expression by interfering with the binding ability of GALM mRNA with RNA-binding proteins and microRNAs. These results suggest that the 14-bp InDel polymorphism in the 3'-UTR region of the GALM gene affects cattle growth traits and carcass quality through galactose metabolism-mediated fat accumulation in muscle and backfat tissues.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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