This study aimed to develop Lautropia mirabilis-specific quantitative real-time polymerase chain reaction (qPCR) primers based on the sequence of DNA-directed RNA polymerase subunit beta gene. The PrimerSelect program was used in designing of the qPCR primers, RTLam-F4 and RTLam-R3. The specificity of the qPCR primers were performed by conventional PCR with 37 strains of 37 oral bacterial species, including L. mirabilis. The sensitivity of the primers was determined by qPCR with the serial dilution of purified genomic DNA of L. mirabilis KCOM 3484, ranged from 4 ng to 4 fg. The data showed that the qPCR primers could detect only L. mirabilis strains and as little as 40 fg of genome DNA of L. mirabilis KCOM 3484. These results indicate that this qPCR primer pair (RTLam-F4/RTLam-R3) may be useful for species-specific detection of L. mirabilis in epidemiological studies of oral bacterial infectious diseases such as periodontal disease.
Genomic RNA was extracted from Cy strain of odontoglossum ringspot tobamovirus (ORSV-Cy) isolated from infected leaves of tobacco cv. Samsun. Size of the genomic RNA was about 6.6 kb in length. The genomic RNA was fractionated using Sephadex G-50 column chromatography into 2 fractions. They were polyadenylated at their 3'-end using E. coli poly(A) polymerase. Polyadenylated viral RNA was recovered by oligo (dT) primer adapter containing NotI restriction site and Moloney murine leukemia virus SuperScript reverse transcriptase (RNase H-). Second-strand cDNA was synthesized by using E. coli DNA ligase, E. coli DNA polymerase I and E. coli RNase H. Recombinant plasmids containing cDNAs for ORSV-Cy RNA ranged from about 800 bp to 3,000 bp. Among the selected 238 recombinants, pORCY-124 clone was the largest one covering 3'-terminal half of the viral RNA. This clone contained two restriction sites for EcoRI and XbaI and one site for AccI, AvaI, BglII, BstXI, HindIII, PstI, and TthIII 1. respectively. The clone contained partial viral replicase, a full-length movement protein and a complete coat protein genes followed by a 3' untranslated region of 414 nucleotides based on restriction mapping and nucleotide sequencing analyses. Clones pORCY-028, -068, -072, -187 and -224 were overlapped with the pORCY-124. Clones pORCY-014 and -095 covered 5' half upstream from the middle region of the viral RNA, which was estimated based on restriction mapping and partial sequence analysis. Constructed cDNA library covered more than 90% of the viral genome.
Geagibokrounghwan (桂技茯笭湯) has long been used to cure human diseases such as vascular and blood disorders. However, it is still unkown on its action mechanism, physiolosical and biochemical meaning. Thus, many attempts were tried to show the scientific background covering the above mentioned mechanism. The effect of Geagibokrounghwan, which was known to date, as follow; effective circulation of body blood system, proliferation of leucocytes and antioxidative action. In this study, we have applied the Geagibokrounghwan administration and feed to mouse, to see effects on the expression of superoxide dismutase(SOD) mRNA as antioxidative agent and oxygen radical scavenger. Total RNAs includingmRNA have been isolated from liver and white blood cells after mice were fed with cholesterol in high dose. Also, in a separate group, the cholesterol-administrated mice were fed with Geagibokrounghwan to see the effects on SOD transcription. and then reverse transcriptase-polymerase chain reaction (RT-PCR) usion each primer set (SOD-F;GATGAAAGCGGTGT-3'; SOD-R; 5'-CCTGTGGAGTGATT-3') were performed to trace theamounts of mRNA. SOD mRNA was specifically expressed in Geagibokrounghwan-fed mice at 2 weeks after treatment, however, gradually reduced after 4 weeks. These results indicate that Geagibokrounghwan is highly applicable in treatment of the above mentioned human diseases.
Viral RNA was extracted from a purified orchid strain of tobacco mosaic virus (TMV-O) from Cymbidium "Grace Kelly". Polyadenylated viral RNAs were primed with Not I-oligo (dT) primer-adapter. First-strand cDNAs were reversely transcribed by Moloney murine leukaemia virus reverse transcriptase (RNAse H-), and then second-strand cDNAs were synthesized by RNase H and DNA polymerase I. The resulting double-stranded cDNAs were ligated into pSPORT1 vector and transformed into competent E. coli strain JM109 cells. The size of cDNAs within the recombinant plasmids was ranging from 0.9 to 3.9 kb. Among the selected clones, pTMO-0205 and -0210 covered the 3' half and the 5' half of the viral genomic RNA, respectively, which were covering more than 99% of the viral genemo size based on sequencing analysis. Two cDNA fragments which were 3.1 kb BamHI and NotI fragement released from pTMO-0.205 and 3.3 kb SalI and BamHI fragment released from pTMO-0210 were ligated with T4 DNA ligase. The clone was almost entire length, lacking only 31 nucleotides from the 5' terminus based on the sequencing result. This method was shown to be efficiently applicable to other plant viral gnomic RNA for the construction of cDNA.n of cDNA.
Using phytoplasma universal primer pair Pl and P7, a fragment of about 1.8 kb nucleotide sequences of 16S rRNA gene and 16S-23S rRNA intergenic spacer region, and a portion of 23S rRNA gene of jujube witches'broom (JWB) and mulberry dwarf(MD) phytoplasmas were determined. The nucleotide sequences of JWB and MD were 1,850 bp and 1,831 bp long, respectively. The JWB phytoplasma sequence was aligned with the homologous sequence of MD phytoplasma. Twenty-eight base insertions and nine base deletions were found in the JWB phytoplasma sequence compared with that of MD phytoplasma. The similarity of the aligned sequences of JWB and MD was 84.8%. The near-complete 16S rRNA gene DNA sequences of JWB and MD were 1,529 bp and 1,530 bp in length, respectively, and revealed 89.0% homology. The 16S-23S rRNA intergenic spacer region DNA sequences were 263 bp and 243 bp in lengths respectively, while homology was only 70% and the conserved tRNA-lle gene of JWB and MD was located into the intergenic space region between 16S-23S rRNA gene. The nucleotide sequences were 77 bp long in both JWB and MD, and showed 97.4% sequence homology. Based on the phylogenetic analysis of the two phytoplasmas, the JWB phytoplasma belongs to the Elm yellow phytoplasma group (16S rV), whereas, the MD phytoplasma belongs to the Aster yellow group (16S rI).
Blueberry red ringspot virus (BRRSV) and blueberry scorch virus (BlScV) are included in the quarantine virus list managed by the Korean Animal and Plant Quarantine Agency. A multiplex polymerase chain reaction (PCR) assay with an internal control was developed for the simultaneous detection of both viruses. The specific primers used here were designed based on the highly conserved regions of the genomic sequences of each virus, obtained from the National Center for Biotechnology Information nucleotide databases. The primers were designed to amplify a partial sequence within coat protein (CP) for detecting BRRSV and a partial sequence within the CP-16 kDa for detecting BlScV. 18S ribosomal RNA (rRNA) was used as internal control, and the primer set used in a previous study was modified in this study for detecting 18S rRNA. Each conventional PCR using the BRRSV, BlScV, and 18S rRNA primers exhibited a sensitivity of approximately 1 fg plasmid DNA. The multiplex PCR assay using the BRRSV, BlScV, and 18S rRNA primers was effective in simultaneously detecting the two viruses and 18S rRNA with a sensitivity of 1 fg plasmid DNA, similar to that of conventional PCR assays. The multiplex PCR assay developed in this study was performed using 14 blueberry cultivars grown in South Korea. BRRSV and BlScV were not detected, but 18S rRNA was all detected in all the plants tested. Therefore, our optimized multiplex PCR assay could simultaneously detect the two viruses and 18S rRNA in field samples collected from South Korea in a time-efficient manner. This approach could be valuable in crop protection and plant quarantine management.
The present study was performed to analyze the gene expressions of pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide(PACAP) and its receptor in the rat uterus, a candidate for novel extrahypothalamic source and target. The PACAP cDNA fragments corresponding to the common exon region which is found in both the rat hypothalamus and testis were produced from all tissue samples including the rat uterus by reverse transcriptionpolymerase chain reaction (RT-PCR). No PCR product was amplified from the rat hypothalamic, pituitary, ovarian and uterine samples when the 5' primer corresponding to the testis-specific exon 1 region was used, while the predicted size of product was detected from the testis sample. RT-PCR using the uterine RNA and specific primers for the PACAP receptor yielded products with predicted sizes. Transcripts for the rat uterine PACAP receptor were identified as type I isoforms with hip-hop and hip- or hop-type inserts. After pregnant mare's serum gonadotropin (15 IU) treatment of immature rats (day 25), the level of PACAP mRNA was increased in 24 h and 48 h group, and was declined to the lowest in 72 h group. The present study shows the presence of transcripts for PACAP and its receptor isoform in the rat uterus. These finding ssuggest that the uterine PACAP ight act as a novel autocrine and/or paracrine factor via its specific receptors on the reglulation of rat uterine function and physiology during the reproductive cycle.
Species-specific $TaqMan^{(R)}$ probe-based real-time PCR assays were developed for detection of beef, pork, chicken, duck, goose and turkey. The primer and probe sets used in this study were designed to be complementary to fibroblast growth factor (FGF) for cattle and pig, mitochondrial NADH dehydrogenase (ND) subunit 3 and ND2 for chicken and duck, 12S rRNA for goose and turkey, respectively. As internal positive control we used conserved region in the ribosomal 18S RNA gene to ensure the accuracy of the detection of target DNA by real-time PCR. We confirmed that real-time PCR assays with the primer and probe sets were positive for cattle, pig and chicken intended target animal species with no cross-reactivity with other non-target animal species. Only >50 ng DNA of beef show cross-reactivity in the determination of duck. Using species-specific primer and probe sets, it was possible to detect amounts of 0.1 ng DNA of cattle and pig, 1.0 pg DNA of chicken, duck and turkey, and 0.1 pg DNA of goose for raw samples, respectively. The detection limits were 0.1 ng DNA of cattle, 1.0 ng DNA of pig and 1.0 pg DNA of chicken for DNA mixtures (beef, pork and chicken) extracted from heat-treated ($121^{\circ}C$/5 min) meat samples. In conclusion, it can be suggested that the $TaqMan^{(R)}$ probe-based assay developed in this study might be a rapid and specific method for the identification of meat species in raw or cooked meat products.
Lee, Si Won;Shin, Yong-Gil;Lee, Jin-Young;Kim, Young-Suk;Yang, Mi Hee;Choi, In-Cheol
Korean Journal of Agricultural Science
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v.42
no.2
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pp.99-103
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2015
Potato virus T (PVT) is a plant pathogen in the family Betaflexiviridae, group IV single-stranded positive sense RNA viruses. The major host of PVT is potato, and it has been reported in Ullucus tuberosus, Oxalis tuberosa and Tropaeolum tuberosum. This study aimed at developing reverse transcription (RT)-polymerase chain reaction (PCR) and nested PCR techniques for specific detection of PVT. Finally, Two RT-PCR primer sets were developed and verified. The RT-PCR products were amplified to 734 (PVT RT-PCR primer set 6) and 828 bp (PVT RT-PCR primer set 29) long to detect PVT. The nested PCR primer sets [PVT-N70/C20 ($734{\rightarrow}315bp$) and PVT-N75/C30 ($828{\rightarrow}529bp$)] were developed which are high sensitivity and verification for detection of PVT. Furthermore, a modified-positive control plasmid is use to verify contamination of laboratory in PVT detection. This study supported the diagnose PVT in potato or PVT related hosts.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.39
no.4
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pp.595-601
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2010
This study was conducted to detect and identify Staphylococcus aureus, Vibrio parahaemolyticus, and Salmonella enterica subsp. using simultaneous multiplex polymerase chain reaction (multiplex PCR) assay. 23S rRNA partial gene (S. aureus), tox R gene (V. parahaemolyticus), and inv A gene (S. enterica subsp.) as diagnostic marker gene were suggested, and their amplicon sizes were 482 bp, 368 bp, and 284 bp, respectively. Non specific amplicons by STA-5F/STA-5R primer, ToxR-F/ToxR-R primer, and 139/141 primer were not observed in genomic DNA of pathogen bacteria as Bacillus cereus, Listeria monocytogenes, Escherichia coli, Proteus vulgaris, Streptococcus pyogenes, Candida albicans, and Shigella sonnei. The extracted crude DNA of targeted bacteria was detected as PCR template successfully. The detection limits were $10^5\sim10^4$ CFU/mL and 10 pg of purified genomic DNA of S. aureus, V. parahaemolyticus, and S. enterica subsp. by using simultaneous multiplex PCR.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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