Mungbean (Vigna radiata) is a legume to East Asia that has great potential for development as traditional food and industrial crop. It produces both protein and starch rich grain. The low variability of the existing gene pool of the mungbean limits the use of conventional plant breeding to address this problem. For this purpose, an efficient means of RNA isolation from mungbean seed tissues was developed. The quality of RNA obtained by this method was sufficient for use in RT-PCR and RNA analysis.
Conventional methods for the isolation and purification of mRNA from Zygnema were unsuccessful because of its high amount of pigments and RNA interactive molecules. In particular, pigments were difficult to remove using conventional protocols because they interacted with RNA during pulverization of the materials. This resulted in total degeneration of RNA in two to three hours. To alleviate this problem, we developed an isolation method that utilized DEAE-cellulose resin. The pigments bound to DEAE anion exchange resin and separated from the RNA. Purified total RNA showed an yield of 50 μg per 100 mg of tissue with this method. The amplified 2nd strand cDNA was distributed 300 bp and over.
As an attempt to preserve resources in marine biological organisms, we first constructed a cDNA library from the red alga Porphyra yezoensis. The library construction method from P. yezoensis consists of three steps; those include protoplast presparation, RNA isolation, and phage library construction. Protoplast was prepared in order to remove much of the carbohydrate compounds which are characteristics of algal cell walls. Carbohydrate contamination in the purified RNA may inhibit further enzyme reactions, those carbohydrates should be removed. RNA samples prepared from protoplast still seemed to contain residual amount of carbohydrate because mRNA isolation with conventional method failed. We therefore developed a method with Poly ATtract mRNA isolation system. The constructed phage library was tested by analyzing cDNA insert in phage vector from randomly picked ten independent white plagues. All of the phages contained cDNA inserts with sizes ranging 0.5kb and 2.0kb.
Total RNA was isolated from two months old wheat, rice, tobacco and sweet potato. The procedure used was simple and provided pure RNA preparation. Lysis of plant tissue in a buffer with guanidine thiocyanate and CsCl density gradient centrifugation separated RNA from the rest of the cellular components. Subsequent cholroform/1-butanol extraction and ethanol precipitation were necessary to ensure contaminant-free RNA preparation. Storage of the lysed plant tissue in the buffer with guanidine thiocyanate preserved the sample for two months without noticeable RNA degradation.
Transactions of the Korean Society of Mechanical Engineers B
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v.35
no.12
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pp.1309-1316
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2011
This paper presents a high-speed RNA microextractor for the direct isolation of RNA from blood lysate using magnetic oligo(dT) beads. The extraction is performed through lateral magnetophoresis, which is induced by a ferromagnetic wire array inlaid. With this RNA microextractor, more than 80% of the magnetic beads could be separated at a flow rate up to 20 ml/h, and the overall extraction procedure was completed within 1 min. The absorbance ratio of RNA to protein(A260/A280) was greater than 1.7, indicating that the extraction technique yields pure RNA. The feasibility of using this technique in reverse transcription polymerase chain reaction procedures was investigated by cDNA synthesis and PCR processes. The results confirmed that the RNA microextractor is a practical device for easy, fast, and high-precision RT-PCR using minimal amounts of reagent.
Extracellular microvesicles are membranous nano-sized cellular organelles secreted by a variety of cells under normal and pathological conditions and heterogeneous in size ranging from 30 nm to $1{\mu}m$. They carry functional microRNAs that can influence immunity and development. For a particular application of microvesicles, choice of isolation method is particularly important; however, their isolation methods from colostrum in particular have not been described clearly. In this work, differential ultracentrifugation as a conventional method, ultracentrifugation with some modification such as additional precipitations, ultrafiltration, sucrose gradient separation and ExoQuick$^{TM}$ as a commercial reagent were compared. The goal was to compare mainly microvesicular total microRNA yield, distribution and purity among the methods then select the best isolation method for bovine colostrum microvesicles based largely on microRNA yield with the view of applying the vesicles in work where vesicular microRNA cargo is the target bioactive component. Highest yields for vesicular microRNA were obtained using conventional methods and among them, subsequent ultracentrifugation with 100,000 g and 135,000 g conventional method 2 was selected as it had the highest RNA to protein ratio indicating that it pelleted the least protein in relation to RNA an important factor for in vivo applications to assess microvesicle functionalities without risk of contaminating non-vesicular biomaterial. Microvesicles isolated using conventional method 2 were successfully internalized by cells in vitro showing their potential to deliver their cargo into cells in vitro and in vivo in case of functional studies.
Myxobacteria are Gram-negative soil bacteria known to be a rich source of potentially useful secondary metabolites. We have isolated 204 strains of bacteriolytic myxobacteria from soil samples collected in Korea and determined their 16S rRNA sequences. Sequence analysis of the partially determined 16S rRNA sequences has suggested that 132 isolates (65% of total isolates) belong to the genus Myxococcus and 59 isolates (29% of total isolates) belong to the genus Corallococcus. Meanwhile, 4 isolates appear to be Archangium spp. and the other 4 isolates appear to be Stigmatella spp. Genera of the remained 5 isolates have not been identified because their 16S rRNA sequences are distantly related to those of known myxobacteria.
A rapid, simple and efficient method to extract RNA from the adult polyps of a soft coral, marine cnidarian, Scleronephthya gracillimum $(K\ddot{u}kenthal)$; was developed in this study. The highest yield and purity of RNA was obtained with the lysis solution containing 35 mM EDTA, 0.7 M LiCl, 7.0% SDS, and 200 mM Tris-Cl (pH 9.0). Approximately $40{\mu}g$ of total RNA was extracted from 200 mg of liquid nitrogen-pulverized polyp tissue. The ratio of absorbance at 260 nm and 280 nm ranged from 1.8 to 2.0. The results of the reverse transcription polymerase chain reaction (RTPCR) with ${\beta}-actin$ gene specific primers and Northern blot analysis using the same gene probe revealed that the RNA extracted by our method had high quality, and was sufficient for subsequent molecular biological analyses. This method was effective for RNA extraction from other soft coral species which belong to the genus Dendronephthya.
Oh, Sangnam;Park, Mi Ri;Son, Seok Jun;Kim, Younghoon
Food Science of Animal Resources
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v.35
no.4
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pp.459-465
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2015
Bovine milk provides essential nutrients, including immunologically important molecules, as the primary source of nutrition to newborns. Recent studies showed that RNAs from bovine milk contain immune-related microRNAs (miRNA) that regulate various immune systems. To evaluate the biological and immunological activity of miRNAs from milk products, isolation methods need to be established. Six methods for extracting total RNAs from bovine colostrums were adopted to evaluate the isolating efficiency and expression of miRNAs. Total RNA from milk was presented in formulation of small RNAs, rather than ribosomal RNAs. Column-combined phenol isolating methods showed high recovery of total RNAs, especially the commercial columns for biofluid samples, which demonstrated outstanding efficiency for recovering miRNAs. We also evaluated the quantity of five immune-related miRNAs (miR-93, miR-106a, miR-155, miR-181a, miR-451) in milk processed by temperature treatments including low temperature for long time (LTLT, 63℃ for 30 min)-, high temperature for short time (HTST, 75℃ for 15 s)-, and ultra heat treatment (UHT, 120-130℃ for 0.5-4 s). All targeted miRNAs had significantly reduced levels in processed milks compared to colostrum and raw mature milk. Interestingly, the amount of immune-related miRNAs from HTST milk was more resistant than those of LTLT and UHT milks. Our present study examined defined methods of RNA isolation and quantification of immune-specific miRNAs from small volumes of milk for use in further analysis.
Sphacelaria is a filamentous brown algal genus that can be epibiotic on macroalgae, marine plants, and sea turtles. Its important role in benthic ecosystems, exposure to different stressors (e.g., grazing), and use as a model organism make Sphacelaria ideal for assessing physiological responses of organisms to environmental inputs. Single-cell RNA sequencing is a powerful new probe for understanding environmental responses of organisms at the molecular (transcriptome) level, capable of delineating gene regulation in different cell types. In the case of plants, this technique requires protoplasts ("naked" plant cells). The existing protoplast isolation protocols for Sphacelaria use non-commercial enzymes and are low-yielding. This study is the first to report the production of protoplasts from Sphacelaria fusca (Hudson) S.F. Gray, using a combination of commercial enzymes, chelation, and osmolarity treatment. A simple combination of commercial enzymes (cellulase Onozuka RS, alginate lyase, and driselase) with chelation pretreatment and an increased osmolarity (2512 mOsm/L H2O) gave a protoplast yield of 15.08 ± 5.31 × 104 protoplasts/g fresh weight, with all the Sphacelaria cell types represented. Driselase had no crucial effect on the protoplast isolation. However, the increased osmolarity had a highly significant and positive effect on the protoplast isolation, and chelation pretreatment was essential for optimal protoplast yield. The protocol represents a significant step forward for studies on Sphacelaria by efficiently generating protoplasts suitable for cellular studies, including single-cell RNA sequencing and expression profiling.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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