Paratuberculosis (Johne's disease), a chronic enteritis produced by Mycobacterium paratuberculosis, affects a large proportion of ruminants in all continents and causes important economic losses. The identification of well-characterized and species-specific components of M paratuberculosis would provide the means to improve the specificity and sensitivity of immunodiagnostic assays for Johne's disease. The aims of this study were to express the recombinant C-terminal of 34kDa protein (rC34P) of M paratuberculosis in E coli and to investigate the effectiveness of this protein in detecting antibodies to the native protein in sera from paratuberculosis infected cattle. The C-terminal of the gene encoding the 34kDa protein was amplified by polymerase chain reaction from the chromosomal DNA of M paratuberculosis (ATCC 19698) and cloned into vector pGEX-4T-2. Then, cloned plasmid was transformed into E coli DH5${\alpha}$ and the rC34P was overexpressed. The rC34P was purified by affinity chromatography and gel filtration. The rC34P was examined antigenicity by Western blot. The rC34P was reactive with culture positive bovine serum and hyperimmune rabbit anti-M paratuberculosis serum but was not reactive with culture negative bovine serum and tuberculin positive bovine serum in Western blot. In conclusion, the rC34P produced in this study is expected as a useful candidate for antigen in serological diagnosis of Johne's disease.
Antibiotics are chemical substances produced by various species of microorganisms that suppress the growth of other microorganisms or may destroy them. Among the more than 4000 antibiotics that has been identified, about 20s are using as the therapy of infectious fish diseases. There are several methods used to classify and group antibiotics, and the most common classification has been based on chemical structure and proposed mechanism of action. The effect of antibiotics may be determined by the kind of fish pathogens and by the external environment surrounded the infected fish. It implies that the kind of antibiotics and its application method should be decided after the determination of the reasons of fish disease. The uncontrolled usages of antibiotics may induce the selection of resistant mutants appeared spontaneously and present in any group of bacteria. The epidemic spread of such antibiotic resistant strains of fish pathogenic bacteria already has been reported in various districts of japan. Importantly, transferable drug resistant(R) plasmids were detected in strains of most of fish pathogens. Based on those reports, the antimicrobial resistance appears to be a rapidly emerging problem in the fish industry on the country. The expanding literatures on the pharmacokinetics, clinical trials, withdrawal periods and efficacy of environmental effect for the commonly using antibiotics have met the needs of data for the practical application of antibiotics. However, the most important thing for the treatment of fish diseases would be the communication and exchanging of information between the site of aquaculture and the diagnostic laboratory.
For the overproduction of L-phenylalanine using Escherichia coli, the authors constructed various recombinant plasmids including pMW 10, pMW 11 and pMW 12. The $aroF{FR}$ and $pheA^{FR}$ genes for the production of L-phenylalanine were isolated from Escherichia coli MWEC 101-5 strains. The productivity and atability of Escherichia coli regulatory mutants containing recombinant plasmids were investigated to evaluate the efficiency of the $aroF^{FR}$ and $pheA^{FR}$ genes. The MWEC 101-5/pMW 11 strain produced 24.3g/l of L-phenylalanine while its stability was 73.8 percent. The specific activity of prephenate dehydratase in the MWEC 101-5/pMW 11 strain increased by 26-fold compared with that of Escherichia coli K-12.
Seo, Han-Gill;Seo, Jung Soo;Ryu, Min Kyung;Lee, Eun Hye;Jung, Sung Hee;Han, Hyun-Ja
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.48
no.5
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pp.731-738
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2015
Nematode infection in the epithelial tissue of cultured rockfish Sebastes schlegeli was first reported in 2012. Since then, nematode infections have caused serious economic losses in rockfish aquaculture on the west coast of Korea. Taxonomic and life cycle information for this parasite are currently unknown. In this study, 18S rRNA and cytochrome c oxidase subunit I (COI) genes were used for molecular identification and polymerase chain reaction (PCR) to detect the invisible stages of this parasite. Nucleotide sequences of the 18S rRNA of the rockfish nematode showed 98% identity with that of Philometra morii. Therefore, this rockfish nematode was classified to the Philometridae family. However, we could not identify it to genus level using 18S rRNA. Its COI nucleotide sequences shared 85% and 82% identities with those of Bursaphelenchus sinensis and Philometra overstreeti, respectively. In addition, two gene-specific primer sets were designed based on the 18S rRNA gene to detect the intermediate host and nematode larvae. These primers were specific to this rockfish nematode without cross-reacting to other pathogens. The detection limit of the PCR assay using these primers was 1,000 copies of nematoda plasmid DNA. Therefore, the PCR assay described here is suitable for the detection of nematode DNA within rockfish. In addition, this PCR assay could be used to detect nematode larvae and the intermediate host.
The transposon TnphoA was used to generate avirulent mutants from a type A Pasteurella multocida. A suicide vector plasmid pRT733 carrying TnphoA, having the kanamycin resistant gene and harbored in Escherichia coli K-12 strain SM10(${\lambda}pir$), was mated with streptomycin resistant P. multocida P-1059 strain as recipient. This resulted in the generation of two TnphoA insertion mutants (transconjugants, tc95-a and tc95-b) which were resistant both to kanamycin ($Km^{R}$) and streptomycin ($Sm^{R}$), secreted alkaline phosphatase, and were avirulent to turkeys. Southern blot hybridization using two probes derived from internal fragments of TnphoA, confirmed the insertion of TnphoA into 12.9kb or 13.7kb DNA fragment from the EcoRV digested genomic fragments of transconjugants. The two transconjugants, tc95-a and tc95-b, were distinguishable from their parent strains by differences in ribotypes, and outer membrane protein profiles. TnphoA insertion in both transconjugants also resulted in constitutive expression of a 33Kd iron regulated outer membrane protein (IROMP). The gene encoding $Sm^{R}$ was also located within the same 12.9kb EcoRV genomic fragment from both transconjugants. Furthermore, our finding that the recipient P. multocida P-1059 $Sm^{R}$ strain and both transconjugants were avirulent to turkeys suggest that the either 12.9kb or 13.7kb genomic DNA contains the virulence gene and speculate that the presence of $Sm^{R}$ gene or TnphoA insertion may be responsible for regulating and inactivating the gene(s) encoding virulence in P. multocida.
The internal regions of nuclear small subunit rRNA from 6 plaeurotus species and 5 Pleurotus ostreatus strains were amplified by PCR and sequenced. The DNA sequences of 8 Pleurotus strains (P. ostreatus NFFA2, NFFA4501, NFFA4001, KFFA4001, KFCC11635, P florida, P. florida, P. sajor-cuju, P. pulmonarius, and P. spodoleucus) were idential, but P. cornucopiae differed from them in two bases out of 605 bases. However, p[hylogenetic analysis of the sequences by DNA-distance matrix and UPGMA methods showed that P. ostreatus NFFA2m1 and NFFA2m2, known as mutants of P. ostreatus NFFA2, belonged to anther group of Basidiomycotina, which is close to the genus Auricularia. The difference of the SSU rDNA sequences of P. cornucopiae from other Pleurotus species tested corresponds to the difference of mitochondrial plasmid type present in Pleurotus species as observed by Kim et al. (1993, Korean J. Microbiol. 31, 141-147).ishement of silencing at the HMR/hsp82 locus can occur in G1-arrested cells. Cell cycle arrest at G1 phase was achieved by treatment of early log a cell cultures with .alpha.-factor mating pheromone, which induces G1 arrest. The result suggests that passage through S phase (and therefore DNA replication) is nor required for re-establishing silencer-mediated repression at the HMNRa/HSP82 locus. Finally, to test whether de nono protein synthesis is required for re-establishment of silencer-mediated repression, cells were pretreated with cycloheximide (500 /.mu.g/ml) 120 min. It was apparent that inhibiting protein synthesis delays, but does not prevent, re-establishment of silencer-mediated repression. Altogether, these results indicate that re-establishment of silencer-mediated repression is not dependent on the DNA replication and has no requirement for protein synthesis.
The aromatic hydrocarbon receptor (AhR) is a ligand-activated transcription factor that mediates many of the biological and toxicological effects of 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD, dioxin) and related chemicals. The application of recombinant reporter plasmid such as the firefly luciferase gene has proven to be a very effective method to detect these chemicals. The bioassay system, CALUX, is sensitive in directly detecting AhR-agonists from a variety of environmental and biologic materials. However, responses of the AhR-dependent bioassays are dependent on the cell types used. Thus, we developed a sensitive bioassay using the recombinant mouse hepatoma cell (Hepa1c1c7) for the determination of dioxins. The recombinant cell line was stably transfected with firefly luciferase reporter gene (pGudLuc1.1). The transfected cells showed the highest induction of luciferase activity at 4.5 hr and a decrease beyond this time point. The system showed the highest sensitivity of detection ever reported. Upon TCDD exposure cells showed 2 fold increase at 10 pM and 7 fold increase at 100 pM, respectively. The passage number after the transfection played an important role in the sensitivity. The increase of passage number tended to increase the sensitivity of the cells up to 15. The media without phenol red showed a higher induction rate than with phenol red, suggesting the preferable use of phenol red-free media for the bioassay. Since each of the assays has unique characteristics that make them suitable for some screening applications and not others, development of sensitive bioanalytical methods based on a variety of cellular systems in a key to the successful determination of dioxins. The bioassay system developed in this study will contribute to further development of successful screening the AhR agonists among the environmental mixture. In addition, the rapid and sensitive nature of this cellular system can be applied as a valuable tool to screen the dioxin-like moieties among the prodrugs at the initial stage, thereby expediting the new drug discovery.
Glutaredoxins (Grxs) are thioloxidoreductases which are required for maintaining thiol/disulfide equilibrium in living cells. The Grx3 gene, which encodes one of the three monothiol Grxs in the fission yeast Schizosaccharomyces pombe, was characterized, and its transcriptional regulation studied. Genomic DNA encoding Grx3 was isolated by PCR, and a plasmid pTT3 carrying this DNA was produced. The DNA sequence has 1,267 bp, which would encode a monothiol Grx of 166 amino acids with a molecular mass of 18.3 kDa. The putative protein has 27% homology with Grx5, and contains many hydrophobic amino acid residues in its N-terminal region. S. pombe cells harboring pTT3 had increased Grx activity and enhanced survival on minimal medium plates containing aluminum (5 mM), BSO (0.05 mM), menadione (0.01 mM) or cadmium (0.2 mM). The 568 bp upstream region of Grx3 was fused into the promoterless b-galactosidase gene of the shuttle vector YEp367R to generate fusion plasmid pMJS10. Potassium chloride (KCl) and metals including aluminum and cadmium enhanced the synthesis of ${\beta}$-galactosidase from the fusion gene. The synthesis of ${\beta}$-galactosidase was also enhanced, in a Pap1-dependent manner, by fermentable carbon sources such as glucose (at low concentrations) and sucrose, but not by non-fermentable carbon sources such as ethanol and acetate. Grx3 mRNA increased in response to treatment with BSO. These observations indicate that S. pombe Grx3 is involved in the response to stress, and is regulated by stress.
Park, Jong-Uk;Jo, Jae-Hyung;Kim, Young-Ji;Chung, So-Sun;Lee, Jin-Ho;Lee, Hyune-Hwan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.4
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pp.639-647
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2008
The heat-inducible expression vectors for Corynebacterium glutamicum and C. ammoniagenes were constructed by using the ${\lambda}O_L1$ and the cryptic promoters, CJ1 and CJ4 that express genes constitutively in C. ammoniagenes. Although the promoters were isolated from C. ammoniagenes, CJ1 and CJ4 were also active in C. glutamicum. To construct vectors, the $O_L1$ from the ${\lambda}P_L$ promoter was isolated and fused to the CJ1 and CJ4 promoters by recombinant PCR. The resulting artificial promoters, CJ1O and CJ4O, which have one ${\lambda}O_L1$, and CJ1OX2, which has two successive ${\lambda}O_L1$, were fused to the green fluorescent protein (GFP) gene followed by subcloning into pCES208. The expression of GFP in the corynebacteria harboring the vectors was regulated successfully by the temperature-sensitive cI857 repressor. Among them, C. ammoniagenes harboring plasmid pCJ1OX2G containing GFP fused to CJ1OX2 showed more GFP than the other ones and the expression was tightly regulated by the repressor. To construct the generally applicable expression vector using the plasmid pCJ1OX2G, the His-tag, enterokinase (EK) moiety, and the MCS were inserted in front of the GFP gene. Using the vector, the expression of pyrR from C. glutamicum was tried by temperature shift-up. The results indicated that the constructed vectors (pCeHEMG) can be successfully used in the expression and regulation of foreign genes in corynebacteria.
The chromosomal DNA fragment from Phaffia rhodozyma CBS 6938 which is able to autonomously replicate in the yeast Saccharomyces cerevisiae was cloned on an integrative URA3 plasmid. Its minimal fragment exhibiting autonomously replicating activiy in the S. cerevisiae gave a higher frequency transformation efficiency than that found for centromere-based plasmid, and enabled extrachromosoma1ly stable transmission of the plasmids in one copy per yeast cell under non-selective culture condition. The 836-bp DNA element lacked an ORF and did not contain any acceptable match to an ARS core consensus. Sequence analysis, however, displayed a cluster of three hairpin-Ioop-sequences with individual $\triangle {G_{25}}^{\circ}C$ free energy value of -10.0, -17.5, and -17.0 kcal. $mor^{-l}$as well as a 9-bp sequence with two base pair mismatches to the S. cerevisiae/E. coli gyrase-binding site. This 836-bp sequence also included one 7-bp sequence analogous to the core consensus of centromeric DNA element III (CDEIII) of S. cerevisiae, but CDEIII-like 7 bp sequence alone did not give a replicative function in this yeast.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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