토양으로부터 분리한 포도당 이성화효소를 강하게 생산하는 방사균을 Bergey's manual 8판에 따라 동정한 결과 Streptomyces antibioticus 근록의 균주이었다. 본 균의 배양액으로부터 균체를 모아서 해사를 넣고 파쇄 하여 증류수로 추출하고 Mn-처리를 하여 핵단백질을 제거한 후 황산 ammonia 분획침전(0.5∼0.8포화), 수석, DEAE-cellulose column chromatography, DEAE-sephadex (A-50) column chromatography 및 sephadex G-200에 의한 gel filtration을 거쳐 비활성도로 약 380배, 회수율 25% 정도로 분리 정제하였다.
토양에서 분리한 호알카리성 Bacillus sp. YC-335가 생산하는 CGTase를 ethanol 침전법, DEAE-Toyopearl column chromatography, Sephadex G-100 column chromatography 방법 등에 의해 대량 정제 하였다. 이때 수율은 17.8 이었고 52.9배의 정제도를 가진 효소단백질을 얻을 수 있었다. 정제효소는 SDS-polyacrylamide gel 전지영동에 의해 분자량이 75,000 정도인 단일 peptide의 단백질임을 확인하였고 효소의 최적활성 pH는 6.0 있었으며 pH 안정성은 pH 6-10까지 안정하였다. 최적활성온도는 5$0^{\circ}C$이었으며 열안정성은 5$0^{\circ}C$까지 안정하였고 이는 15mM CaCl$_2$에 의해 열안정성이 보호되었다.
Pseudomonas aeruginosa strain B5 with antagonistic activity against Phytophthora capsici and Magnaporthe grisea, was isolated from pepper-growing soil. From the culture of P. aeruginosa strain B5 grown on King's medium B, antibiotic substances were purified using XAD-2 column chromatography. XAD-2 eluates inhibited not only the mycelial growth of P. capsid and M. grisea, but also the development of Phytophthora blight on pepper plants. The crude antibiotic substances were further purified by using silica gel column chromatography, Sephadex LH-20 column chromatography, thin layer chromatography on silica gel plates, and high performance liquid chromatography. Silica gel column chromatogrphy gave good separation of the four antibiotic substances. The pure antibiotics P1, P2, and P3 finally purified by preparative HPLC inhibited the mycelial growth of P. capsici, at concentrations from 7 to 10 $\mu g/ml$. Only P1 and P2 had antifungal activity against M. grisea at 8 $\mu g/ml$. P1 and P3 were highly inhibitory to the mycelial growth of Botryosphaeria dothidea and Botrytis cinerea at relatively low concentrations. However, the three antibiotics had no antifungal activity against Rhizoctonia solani. The chemical structures of these antibiotics are being identified.
Kim, Sang-Joon;Shin, Hyun-Jae;Kim, Yeu-Chun;Lee, Dae-Sil;Yang, Ji-Won
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제5권6호
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pp.465-468
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2000
Methyl mercaptan oxidase was successfully induced from Rhodococcus rhodochrous IGTS8 using methyl mercaptan gas and purified to homogeneity for the detection of mercaptans. The purification procedure involved DEAE-Sephacel and Superose 12 column chromatography with recovery yields of 85.8 and 83.3%, and a specific activity of 92.7 and 303.4 units/mg-protein, respectively. The molecular weight of purified methyl mercaptan oxidase was determined to be 64.5 kDa by SDS-PAGE. The extract from gel filtration chromatography oxidizes methyl mercaptan to produce formaldehyde, which can be easily detected by the purpald-coloring method. Optimum temperature for activity was achieved at 60$^{\circ}C$. This enzyme was inhibited by both K$_2$SO$_4$and NaCl at concentration of less than 100mM and recovered to original activity at concentration of 200mM. In the presence of methanol, the activity decreased by 33%.
The optimum conditions of Cordyceps militaris mycelial growth, purification and characteristics of branched-chain amino acid aminotransferase [BCAT(EC 2.6.1.42)] in this mycelium were studied. Optimum pH, temperature and medium of culture of mycelia were 5.5, $22.5^{\circ}C$ and Hamada medium (HM), respectively. BCAT in homogenate of this mycelia was precipitated by 20-40% saturated solution of ammonium sulfate and then purified by DEAE (diethylaminoethyl)-Sephadex A-50 column chromatography with linear concentration gradient and Sephadex G-200 gel filtration. A single band of purified enzyme was detected on SDS-PAGE (sodium dodecylsulfate-polyacrylamide gel electrophoresis). Optimum pH and temperature of BCAT were found to be 7.8 and $29^{\circ}C$, respectively. It showed activity toward L-leucine, L-isoleucine and L-valine as a substrate. The Km values of this enzyme for L-leucine were determined to be 5.88 mM for L-leucine.
이산화탄소를 용매로하는 초임계유체 크로마토그래퍼(SFC)방법을 이용하여 어유로부터 EPA및 DHA를 고순도로 분리정제하는 연구를 하였다. 질산은 칼럼을 이용하는 초임계 이산화탄소의 초기 압력조건 변화가 저 지방산의 용해도 및 분리도에 미치는 영향을 조사하였는데 압력이 증가될수록 저지방산의 용해도는 증가되었고, 반면에 EPA와의 분리도는 감소하는 경향을 나타내었다. EPA의 분리정제 효율을 높이기 위해 초임계 이산화탄소에 대한 단계별 밀도구매 방법을 적용하였다. 적용 결과 초기에 저지방산이 먼저 분리되었고, 계속해서 92.1%~97.8%EPA 순도를 갖는 분획들을 얻을 수 있었다. 순도가 높은 3개의 분획의 평균 순도는 95.6%이었고 회수율은 30%에 달하였다.
Homogeneous human deoxycytidine kinase was purified in one step from a variety of spontaneous human leukemic cells (T-ALL, B-ALL, B-CLL, AML, CML), and from cultured T-lymphoblast cells (MOLT-4) using the newly developed affinity medium, $dCp_4$-Sepharose. Starting with an ammonium sulfate fraction, purification was achieved in one step with the kinase being eluted from a column by the end product inhibitor, dCTP. The purified deoxycytidine kinase from T-ALL cells phosphorylated deoxyadenosine and deoxyguanosine, as well as deoxycytidine. The enzyme purified from T-ALL and B-CLL cells yielded one major band with a molecular weight of 52 kDa determined by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. AML and CML cells yielded one 52 kDa band and an extra band of 30 kDa molecular weight. On the other hand, B-ALL and MOLT-4 cells showed a low molecular weight band of 30 kDa only. However, the electrophoretic mobilities of enzymatic activity in 12% non-denaturing gels were identical for the dCyd kinase from all different kinds of leukemic cell lines, except that the B-ALL, B-CLL, and MOLT-4 cell preparations had an extra minor peak, all at the same position. dAdo and dCyd phosphorylating activities comigrated indicating that these activities are all associated with the same protein. Two new methods, a disk implantation method and a nitrocellulose powder method were used with a small amount of enzyme protein to raise polyclonal antibodies against dCyd kinase purified from T-ALL cells.
An extracellular levansucrase, which catalyzes the formation of levan from sucrose, from the culture broth of Zymomonas mobilis ZM1 was purified by conventional column purification methods. The final purification yield was 18.3 fold of the crude enzyme from Z. mobilis, with 16.5 % of the enzyme recovered in the preparation step. The molecular weight of the enzyme was estimated to be 91,000 by Superose 12 gel filtration, and 45,000 by SDS-PAGE, indicating that levansucrase is a dimer. The optimum pH for the enzyme activity was around pH 4.0 for sucrose hydrolysis, and was around pH 5.0 for levan formation. The enzyme was inhibited by some metal ions, such as Hg$\^$2+/ and Cu2$\^$2+/, and 50% of inhibition was observed with 5mM EDTA. The enzyme activity was enhanced by the presence of detergent Triton X-100, but inhibited by SDS completely The enzyme catalyzes the liberation of reducing sugars, oligosacccharides and the formation of fructose polymer(levan). The enzyme also catalyzes the transfructosylation reaction of fructose moiety from sucrose to various sugar acceptor molecules, including sugar alcohols.
Highly metastatic mouse T-lymphoma CS21 cells can grow in vitro when cocultured with CA12 lymph node stromal cells, but they undergo apoptotic cell death when separated from CA12 stromal cells. It has been found that cysteine and interleukin-7(IL-7) as antiapoptotic soluble factors that produced by CA12 stromal cells. In this study, we report that an ICE family protease is activated in CS21 cells when separated from CA12 stromal cells and cultured alone. Enzyme purification using an avidin affinity column revealed that the involved cysteine protease possessed caspase3-like death protease activity. In addition, when IL-7 was added to CS21 cell culture, the protease activity could not be detected during partial purification of the enzyme. Taken together, these results strongly suggest that the caspase3-like protease activation is suppressed by IL-7 as an antiapoptotic factor that leads to abrogation of apoptosis execution.
황산암모늄 분획, 2차례의 DEAE-Cellulose, DEAE-Sephadex A-50 및 Sephacryl S-200 superfine gel filtration으로 정제한 결과 Streptomyces sp. J-350P의 세포외 adenine deaminase는 0.3%의 수율로서 1764배로 정제되었다. Streptomyces sp. J-350P의 세포외 adenine deaminase는 pH6.5~8.5 사이에서 안정하였고, pH7.0에서 10분간 열처리하였을 때 5$0^{\circ}C$까지는 안정하였다. 효소 활성 최적 pH와 온도는 pH6.5와 35$^{\circ}C$ 였다. Sephacryl S-200 superfine gel filtration 의한 분자량의 측정 결과 본 효소의 분자량은 약 36,000이었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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