Park, Dong-Woo;Lee, Jun-Hun;Lee, Dong-Hun;Lee, Kyoung;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.13
no.5
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pp.700-705
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2003
Pseudomonas sp. S-47 is capable of degrading benzoate and 4-chlorobenzoate as well as catechol and 4-chlorocatechol via the meta-cleavage pathway. The three enzymes of 2-oxopenta-4-enoate hydratase (OEH), acetaldehyde dehydrogenase (acylating) (ADA), and 2-oxo-4-hydroxypentonate aldolase (HOA) encoded by xylJQK genes are responsible for the three steps after the meta-cleavage of catechol. The nucleotide sequence of the xylJQK genes located in the chromosomal DNA was cloned and analyzed. GC content of xylJ, xylQ, and xylK was 65% and consisted of 786, 924, and 1,041 nucleotides, respectively. The deduced amino acid sequences of xylJ, xylQ, and xylK genes from Pseudomonas sp. S-47 showed 93%, 99%, and 99% identity, compared with those of nahT, nahH, and nahI in Pseudomonas stutzeri An10. However, there were only about 53% to 85% identity with xylJQK of Pseudomonas putida mt-2, dmpEFG of P. putida CF600, aphEFG of Comamonas testosteroni TA441, and ipbEGF of P. putida RE204. On the other hand, the xylLTEGF genes located upstream of xylJQK in the strain S-47 showed high homology with those of TOL plasmid from Pseudomonas putida mt-2. These findings suggested that the xylLTEGFIJQK of Pseudomonas sp. S-47 responsible for complete degradation of benzoate and then catechol via the meta-pathway were phylogenetically recombinated from the genes of Pseudomonas putida mt-2 and Pseudomonas stutzeri An10.
A survey of bacterial species associated with Korean isolates of pine wood nematode (PWN) was performed. A total of 110 bacterial isolates were obtained from the PWN isolates that were previously isolated from Pinus densiflora and P. koraiensis. Among the bacterial isolates, Cedecea neteri was most frequent (64 isolates) followed by Ewingella americana (21 isolates), Pseudomonas sp. (15 isolates), Flavobacterium sp. (8 isolates) and Rahnella aquatilis (2 isolates). Both E. americana and Pseudomonas sp. which are assumed to be closely associated with PWN were examined for their phytotoxicity to P. thunbergii seedlings. Ethyl acetate extracts of Psuedomonas sp. (Ba2 strain) cultures were found to induce wilting and mortality in the tested seedlings. The three bacterial species, Pseudomonas sp. (Ba2 strain), E. ameircana (Ba4 strain) and C. neteri (Ba10 strain) were examined in vitro for their sensitivity to 21 kinds of antibiotics. All of the strains were highly susceptible to carbenicillin, doxcycline and tetracycline.
Kim, Ki-Pil;Seo, Dong-In;Min, Kyung-Hee;Ka, Jong-Ok;Park, Yong-Keun;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology
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v.35
no.4
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pp.295-299
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1997
Pseudomonas sp. S-47 is capable of transforming 4-chlorobenzoate to 4-chlorocatechol which is subsequently oxidized bty meta-cleavage dioxygenase to prodyce 5-chloro-2-hydroxymuconic semialdehyde. Catechol 2,3-dioxygenase (C23O) produced by Pseudomonas sp. S-47 was purified and characterized in this study. The C23O enzyme was maximally produced in the late logarithmic growth phase, and the temperature and pH for maximunm enzyme activity were $30{\sim}35^{\circ}C$ and 7.0, respectively. The enzyme was purified and concentrated 5 fold from the crude cell extracts through Q Sepharose chromatography and Sephadex G-100 gel filtration after acetone precipitation. The enzyme was identified as consisting of 35 kDa subunits when analyzed by SDS-PAGE. The C23O produced by Pseudomonas sp. S-47 was similar to Xy1E of Pseudomonas putida with respect to substrate specificity for several catecholic compounds.
Pseudomonas sp. K82 cultured in p-hydroxybenzoate induces protocatechuate 4,5-dioxygenase (PCD 4,5) for p-hydroxybenzoate degradation. In this study, a 6.0-kbp EcoR1 fragment containing p-hydroxybenzoate degradation genes was cloned from the genome of Pseudomonas sp. K82. Sequence analysis identified four genes, namely, pcaD, pcaA, pcaB, and pcaC genes known to be involved in p-hydroxybenzoate degradation. Two putative 4-hydroxyphenylpyruvate dioxygenases and one putative oxidoreductase were closely located by the p-hydroxybenzoate degradation genes. The gene arrangement and sequences of these p-hydroxybenzoate degradation genes were similar to those of Comamonas testosteroni and Pseudomonas ochraceae. PcaAB (PCD4,5) was overexpressed in the expression vector pGEX-4T-3, purified using a GST column, and confirmed to have protocatechuate 4,5-dioxygenase activity. The N-terminal amino acid sequences of overexpressed PCD4,5 were identical with those of purified PCD4,5 from Pseudomonas sp. K82.
A strain of Pseudomonas sp. isolated from soil was shown to produce a high level of extracellular endo-inulinase. In this work, the endo-inulinase gene (inu1) of the bacterial strain was cloned into the plasmid pBR322 by using EcoRI restriction endonuclease and E. coli HB101 as a host strain. One out of 7, 000 transformants obtained from the above cloning experiment formed a clear zone around its colony on the selective medium supplemented with 2.0% inulin after a prolonged incubation at 37$\circ$C and subsequent cold shock treatment. The functional clone was found to carry a recombinant plasmid (pKMG50) with a 3.7 kb genomic insert containing the genetic information for the inulinase activity. The inulinase from E. coli HB101/pKMG50 was proved to be an endo-acting enzyme and produced constitutively in the recombinant E. coli cells. Zymogram of the enzyme from the recombinant cells with inulin substrate indicated that the molecular mass of the active protein was 190 Kd, while that of the endo-inulinase from the Pseudomonas strain was 170 Kd. This size discrepancy suggested that the inulinase from the recombinant E. coli HB101 cells might be the initial product of translation, not the mature form produced in the strain of Pseudomonas sp..
Seo, Dong-In;Lim, Jai-Yun;Kim, Young-Chang;Min, Kyung-Hee;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology
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v.35
no.3
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pp.188-192
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1997
The strain of S-47 degrading 4-chlorobenzoic acid (4CBA) was isolated from Ulsan chemical industrial complex by enrichment cultivation with 1 mM 4CBA. The strain was Gram-negative rod and grew optimally at 30.deg.C and pH 7 under aerobic condition, so that the organism was identified as a species of Pseudomonas. Pseudomonas sp. S-47 degraded 4-chlorobenzoic acid to produce a yellow-colored meta-cleavage product, which was confirmed to be 5-chloro-2-hydroxymuconic semialdehyde (5C-2HMS) by UV-visible spectrophotometry. 5C-3HMS was proved trometry. This means that Pseudomonas sp. S-47 degraded 4CBA via 4-chlorocatechol to 5C-2HMS by meta-cleavage reaction and then to 5C-2HMA by 5C-2HMS dehydrogenase.
This study was performed to investigate the effects of microbial augmentation on the biological treatment of paper mill wastewater. Three bacteria (KN11, KN13, KN27) capable of degrading aromatic compounds and a bacterial strain (GT21) producing an extracellular cellulase were isolated from soil and wastewater by selective enrichment culture. Through morphological, physiological, and biochemical taxonomies, isolated strains of KN11, KN13, KN27, and GT21 were identified as Acinetobacter sp., Neisseria sp., Bacillus sp., and Pseudomonas sp. and named Acinetobacter sp. KN11, Neisseria sp. KN13, Bacillus sp. KN27, and Pseudomonas sp. GT21, respectively. For analysis of non-biodegradable and chemical oxygen demand (COD)-increasing matter in a paper mill wastewater, we utilized GC/MS to detect aromatic compounds and their derivatives containing several substituted functional groups. The microbial augmentation, J30 formulated with the mixture of bacteria including Acinetobacter sp. KN11, Neisseria sp. KN13, Bacillus sp. KN27, and Pseudomonas sp. GT21, was used for the treatment of paper mill wastewater. The optimum temperature and pH for COD removal of the microbial augmentation, J30, were $30^{\circ}C$ and 7.5, respectively. For evaluation of the industrial applicability of the microbial augmentation, J30 in the pilot test, treatment efficiency was examined using paper mill wastewater. The microbial augmentation, J30, showed a COD removal rate of 87%. On the basis of the above results, we designed the wastewater treatment process of the activated sludge system.
Choi, Hye Jung;Hwang, Min Jung;Kim, Dong Wan;Joo, Woo Hong
Journal of Life Science
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v.26
no.5
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pp.603-607
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2016
A crude extracellular lipase from solvent-tolerant bacterium Pseudomonas sp. BCNU 106 was highly stable in the broad pH range of 4-10 and at temperature of 37℃. Crude lipase of BCNU 106 exhibited enhanced stability in 25% organic solvents such as xylene (121.85%), hexane (120.35%), octane (120.41 %), toluene (118.14%), chloroform (103.66%) and dodecane (102.94%) and showed excellent stability comparable with the commercial immobilized enzyme. In addition, the stability of BCNU 106 lipase retained above 110% of its enzyme activity in the presence of Cu2+, Hg2+, Zn2+ and Mn2+, whereas Fe2+ strongly inhibited its stability. The detergents including tween 80, triton X-100 and SDS were positive signals for lipase stability. Because of its stability in multiple organic solvents, cations and surfactants, the Pseudomonas sp. BCNU 106 lipase could be considered as a potential biocatalyst in the industrial chemical processes without using immobilization.
Kim, Man;Choi, Kyoung-Kyoon;Go, Myong-Jin;Park, Jeong-Hun
Journal of Soil and Groundwater Environment
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v.12
no.6
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pp.70-77
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2007
Pseudomonas sp. KM1 was separated from soil contaminated by petroleum and identified. The isolated strain is Gram-positive, rod-shaped and immotile. In batch culture, the optimum cultivation temperature and pH was $35^{\circ}C$ and 7, respectively. Biodegradation of PAHs experiment with soil slurry system was performed using Pseudomonas sp. KM1. Pseudomonas sp. KM1 could degrade 7 PAHs including naphthalene, acenaphthylene, acenaphthene, fluorene, phenanthrene, pyrene, and fluoranthene. These mixed PAHs was easily degraded within one day except fluoranthene, which was degraded much slowly, taking several days by this isolated bacteria. Pseudomonas sp. KM1 is good candidate for bioremediation of PAHs contaminated soils. Biodegradation rates of naphthalene, phenanthrene and pyrene in soils were different at each soil, and the rates were decreased as sorption capacity increased.
Marine bacterial strain, highly effective agar degrading, was isolated from south sea of Korea and was identified as Pseudomonas sp. This strain was named Halophilic Pseudomonas sp. W7 and accumulated an extracellular agarase which showed a high level of enzyme activity in the presence of agar and agarose. This extracellular agarase was purified by anion-exchange chromatography and gel filtration. Purified agarase showed a single protein band upon sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis and its molecular weight was estimated to be about 89KDa. The agarase gene was cloned into Escherichia coli JM83 using the plasmid vector pUC19. DNA fragments(3.7, 3.0Kb) of Hind III-digested chromosomal DNA of Pseudomonas sp. W7 was inserted into the Hind III site of pUC19. Selected transformants, E. coli JM83/pSWl 000000and E. coli JM83/pSW3, produced agarase and this agarase was accumulated In the cytoplasmic space.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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