The optimal conditions for high yields of mycelial protoplasts from P. cornucopiae were established. The concentraion of enzyme system containing Novozym 234, ${\beta}-D-glucanase$ and ${\beta}-glucuronidase$ was $5mg\;ml^{-1}$ each. The osmotic stabilizer most effective for protoplast isolation was O.6 M sucrose. The optimal reaction time of mycelium with the lytic mixture was 90 min in a shaking condition at 120 strokes $min^{-1}$. When the myelium of P. cornucopiae was cultured for 4 days on mushroom complete medium at $28^{\circ}C$, the formation of protoplast was effective. When the pH of the digestion mixture with O.6 M sucrose as stabilizer varied between pH 4.0 and 7.0, the production of protoplasts was effective in phosphate buffer (pH 6.2) and Na-maleate buffer (pH 5.0). Generally, phosphate buffer was more effective for protoplast isolation than Na-maleate buffer, but 0.6 M sucrose osmotic stabilizer without adjusting pH was most effective. Using these conditions, protoplasts from P. cornucopiae were obtained at a ratio $1{\times}10^7\;ml^{-1}$.
To obtain protoplasts of Colletotrichum acutatum JC24, conidia were inoculated onto cellophane membrane placed on PDA and incubated at $25^{\circ}C$ for 20 hrs under the dark condition. Cellophane membranes, where mycelia were incubated, were soaked into 2% lysing enzyme solution prepared with 0.02 M phosphate buffer (pH 7.0) including 1.2 M sorbitiol. After treatment in 2% enzyme solution for 2 - 3 hrs, it could be possible to harvest $2-3\;{\times}\;10^6$ protoplasts/mL. The effect of several fungicides on reversion ratio was determined by using the protoplasts obtained from C. acutatum JC24. Any protoplasts could not be reversed to mycelia on reversion PDA amended with $10\;{\mu}\;g\;mL^{-1}$ of propineb. With tebuconazole, inhibition ratio of protoplast reversion was 100 and 0.9% at 0.5 and $0.1\;{\mu}\;g\;mL^{-1}$, respectively, while inhibitory effect on mycelial growth was 85.1 and 75.7%. The inhibitory tendency of carbendazim on protoplast reversion was as same as mycelial growth. In the case of strobilurins, trifloxystrobin and kresoxim-methyl, they only could inhibit protoplast reversion of C. acutatum JC24, when salicylhydroxamic acid (SHAM) was amended into reversion PDA with strobilurins.
Effects of incompatibility existing between intra-and interspecies in Pleurotus spp. on protoplast fusion, clamp formation of their fusants and fruitbody production were investigated. Protoplast fusion between intra-and interspecies of the fungus was achieved by Poly ethylene glycol treatment. The fusion frequency between intraspecies was a little higher than that of interspecies. Fusion frequency between interspecies was not correlated with their similarities based on isozyme patterns. In case of protoplast fusion between intra-and interspecies, the fusants from the compatible isolates produced normal fruit bodies, while those from the incompatible isolates did not produce clamp connections and fruit bodies except those of a few isolates presumed mutants.
Ethanol-tolerant strain, S. eerevisiae BUI a26 ($alc^r thr^-$) and gJucoamylase-producing strain, S diastatieus AI5a6 (STA+ hom-) were prepared by means of genetic manipulation, Protoplast fusion was carried out to introduce STA gene from AI5a6 strain to BUla26 strain, Protoplast formation was shown at 0,8 M sorbitol and 200 Jig/ml to 400 Jig/ml zymolyase treatment for 2 hours incubation, Fusion frequency was $ 3.25 {\times} 10^{-3}$ to the regenerated protoplast number using PEG 6000 for 90 min incubation. The excellent fusants with genotype of STA- $alc^r thr^-$ hom+/STA+ ($alc^s thr^+$ hom- (2n), F7 and FIO, were selected by ethanol-tolerant, ethanol fermentation, and glucoamylase production tests, Glucoamylase production of AI5a6 showed 2,7 units, but 4.2 or 8.4 units for F7 or FIO fusant at $30^{\circ}C$, Ethanol fermentation from 32% glucose by BUla26 was 14,0%(v/v) in fermentaion medium for 5 days incubation, but 14.5% or 15,0% for F7 or FIO strain, respectively. Ethanol fermentation from 5% starch was 2,0% by F7, or 1.8% by FIO strain in fermentation medium for 5 days fermentation.
This study was designed to investigate the productivity of L-methionine by the method of protoplast fusion between Brevibacterium flavum ATCC 14067 and Corynebacterium glutamicm ATCC 13032, and then L-methionine production was performed to continuous fermentation using the immobilized fusant cells. Mutants B. flavum K 104($thr\;met\;Km^{r}\;Et^{r}\;Sm^{r}\;Tm^{r}\;as\;genetic\;marker$) and C. glutamicum B 70($thr\;Hos\;Km^{r}\;Et^{r}\;Sm^{r}\;Tm^{r}as\;genetic\;marker$) were isolated by MNNG treatment. On the other hand, protoplast of mutants were formed to treat with lysis solution containing $500{\mu}g/ml$ of lysozyme. The ratios of protoplast formation and regeneration were 99% and $64{\sim}66%$ respectively. Fusion frequency between B. flavum K 104 and C. glutamicum B 70 showed the $3.5{\times}10^{5}$ in the 35% polyethylene glycol(PEG6000) containing 3% PVP solution. The productivity of L-methionine by fusant BFCG 37 immobilized with sodium alginate was 0.89 g/l the batch fermentation and was $18.75mg/^{1}hr\;^{1}$ on the continuous fermentation at $30^{\circ}C$ for 72 hr.
The isolatin and culture of protoplasts from hypocotyl originated callus of Phaseolus vulgaris cv. Damyang were carried out. The maximum protoplast yield of 4.6$\times$105 per gram fresh callus, using the 13-day-old callus, was obtained by digeston for 6 hours in the enzyme solution. After 10 day-culture of the isolated callus protoplsts, plating efficiency was 50%. Thereafter, cell cluster medium, and followed by leading to callus formation on an agar medium after 3 weeks of the liquid culture.
To improve alkaline protease producing strain by protoplast fusion, a strain of Bacillus sp. was treated with $100{\mu}g/ml$ NTG (N-methyl-N'-itro-N-nitrosoguanidine) for 45 minutes and mutants of Bacillus subtilts $Arg^-,\;Try^-,\;His^-$ and $Ade^-$ were isolated. The frequency of protoplast formation was about 99%, when teas of exponential phase were treated with $200{\mu}g/ml$ lysozyme at $42^{\circ}C$ for $10{\sim}30$ minutes. In a regeneration medium containing 0.3M sodium succinate, 2.0% polyvinylpyrrolidone, 0.5% casamino acid, 10mM $MgCI_2$ and 20mM $CaCI_2$, regeneration frequency cf the isolated Bacillus subtilis strains was 25.2%. The fusion frequency between mutant was from $2.1{\times}10^{-5}$ to $8.1{\times}10^{-5}$ under optimum condition.
Protoplasts were isolated from hypocotyl tissues of 5-day-old Brassica oleracea var capitata Green Challenger seedlings. Several media were used for protoplast culture and shoot regeneration. The shoot-regeneration rapacity of protoplast derived callus depended on the initial culture medium. Protoplasts were cultured in liquid medium (B5 medium supplemented with CaCl2, 2H2O 600mg/L, g1ucose 20g/L, D-mannito1 70g/L, NAA lmg/L, BA lmg/L, 2.4-D 0.25 mg/L)at 27$^{\circ}C$ under the dark After 5 to 10 days, cultlues were diluted with medium with a reduced osmotic stabilizer and then transferred to illuminated conditions. The culture medium was changed with the fresh medium at 7- to 10-day-intervals until the formation of microcallus. Hypocotyl protoplast-derived callus proliferated when transferred to MS medium supplemented with NAA lmg/L, BA 1mg/L and GA$_3$ 0.02mg/L. Upon transfer to MS basal medium without growth regulators, roots were produced. In an attempt to increase the regeneration frequency, 10g/L polyvinylpyrrolidone was added to the regeneration medium, but the shoot regeneration was mot improved. The regenerated whole plants were acclimated in a sterized soilless mixture(vermiculite 2;perlite 2;peat moss1) in a culture room.
To improve a new yeast strain capable of converting xylan to ethanol directly, we tried protoplast fusion between xylose fermenting yeast (Candida sp. X-6-41) and xylan assimilating yeast (Crypto-coccus sp. XB-33), finally selected the most promising two fusants (XFU-1 and XFU-2). As the optimum conditions for protoplast formation, the yeast cells were cultured to exponential phase in YPD and YPX containing 0.6M KCI, respectively, and then treated with zymolyase (0.25mg/$m\ell$), cellulase(4mg/$m\ell$) and 100mM 2-mercaptoethanol at pH 8 and 3$0^{\circ}C$. The protoplasts of parental auxotrophs were fused in the presence of 20mM CaCl$_2$and 40% polyethylene glycol(M.W.4000). The physiological and morphological characteristics of the fusants, such as assimilation of carbon sources, cell size, growth rate, xylanase activity and xylan fermentation ability were investigated. Xylanase activity of fusants that cultured in chemically minimal medium was higher than that of fusants that cultured in completed medium, because xylanase producing activity of xylose fermenting yeast(X-6-41) was inhibited by isoleucine.
The studies were carried out to obtain the basic data for maximizing the protoplast yields from the mycelia of P. ostreatus and P. sajor-caju. Some factors affecting the regeneration of the protoplast of both species and the productivity of their reversion were also examined. The maximum yields of protoplasts were obtained from four days cultured mycelia of both species on cellophan membrane placed on the surface of PSA or MCM media in a petri dish. The optimal concentration of lytic enzyme Novozym 234 for protoplast releasing was 5 mg per ml of 0.5 M phosphate buffer solution with 0.6 M sucrose or 0.6 M $MgSO_4$ at pH 6.0. The greatest number of protoplasts was released 3 hours after incubation of the mycelia of P. ostreatus and after 4 hours for the P. sajor-caju in the lytic enzyme solution. Among the osmotic stabilizer solutions tested 0.6 M sucrose and 0.6 M KCl showed the best regeneration rates of the protoplasts of both species. When 0.75 % agar solution was over-layed on the regeneration media immediately after inoculation of the protoplast the regeneration rates were greatly enhanced. The ampicillin added to the agar solution prevented bacteria from infection. The reverted isolates produced the sporophores and basidial spores just like their parents without any mutations when they were cultivated in a broad mouth bottle with sawdust substrates.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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