In an attempt to obtain intersubgeneric somatic hybrids of Pelargonium aridum and P.zonale, protoplast isolated from the two species were fused by using polyethylene glycol(PEG) and electorfusion methods. Protoplast were isolated from cotyledon and leaf tissues using MS medium containing 550 mM sucrose, 0.7% cellulase (Onozuka R-10) and 0.4% Macerozyme. The optimum number of protoplasts per mL of culture medium was 6 x 10$^4$. Protoplast fused by the electrofusion method were more active than by PEG method. Heterokaryotically fused protoplasts formed calli when cultured in MS medium containing 550 mM glucose, 1 to 2 mg/L NAA and 0.5 to 1 mg/L BA.
Protoplasts were isolated from mesophyll of tobacco(Nicotiana glauca) transformed with kanamycin-resistant gene (NPT II gene) and potato hairy root callus containing Ri plasmid of Agrobacterium rhiEogenes, and protoplasm fusion was made between the isolated protoplasts. The transgenic tobacco leaf tissue could grow on the media containing high concentrations of kanamycin, but not on the phytohormone-free media. On the other hand, the potato hairy root calli could be cultured on the phytohormone-free media but not on media containing more than 40 ㎍/ml kanamycin. In these conditions, the viability of both protoplasts were above 90%, These selection markers were used for the selection of protoplasts fused between the two, i.e. protoplast fusion was detected using selection media containing 100㎍/ml kanamycin and with no phytohormone. The mixture of 1.0% cellulase, 0.3% macerozyme, and 0.7M mannitol was best for the maximum protoplast production for tobacco, and that of 2.0% cellulase, 2.0% macerozyme, 1.0% dricelase, and 0.5M mannitol for potato. Both tobacco mesophyll and potato callus protoplasts were fused by using PEG solution on the selectable medium. Cell walls were regenerated after 5 days in this medium, and colonies were alive until 4 weeks after cultural, but died after 6 weeks.
To find pharmacologically active hybrids among the inter-order protoplast fusants of Lentinula edodes and Ginoderma lucidam the antitumor test was performed and the fusant P22 was selected among them. The hot water and alkaline extracts from the cultured mycelia of P22 were purified and separated into four fractions by DEAE-cellulose anion exchange chromatography. When a dose of 20 mg/kg/day of each fractions was injected into ICR mice by i.p., the tumor inhibition ratio of Fr. IV against solid sarcoma 180 was the higher than any other fraction. Fr. IV was a protein-bound polysaccharide which was composed of 69. 12% polysacchafide and 9.76% protein and the molecular weight of Fr. IV was $6.7{\times}10^4$ dalton.
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.17
no.1
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pp.11-18
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1997
This study was to provide the basic data in improving protoplast formation and regeneration of antagonistic bacteria against phytopathogenic fungi and pest. The antagonistic rhizobacterium, BS 101, against Rhizoctonia solrmi and Fusurium oxyspomm was isolated and identified as Bacillus subtilis. Another bacterium for protoplast formation and regeneration was B. thuringiensis subsp. kurstcJtiHD-l (BT 37669) which have insectcidal toxin in the orders Coleopteria, Dipteria etc.. Auxotrophic mutants, BS 1013 and BT 69, were isolated by treating with NTG 300 ug/ml for 40 min. at $37^{\circ}C$, and with NTG 300 ug/ml for 30 min. at $37^{\circ}C$, respectively. The BS 1013 and BT 69 were converted to protoplas by treating with lysozyme 300 ugh1 for 30 min. at 37C, and lysozyme 9 mglml for 60 min. at $37^{\circ}C$, respectively. The fequencies of the protoplast formation of BS 1013 and BT 69 were 90.00 and 92.83% respectively, after 1~2 day at $37^{\circ}C$. The regeneration kequencies of the protoplasts BS 1013 and B T 69 were 0.52 and 0.10%, respectively, after 4~6 days at $37^{\circ}C$.
Intra- and inter-specific protoplast fusion of tobacco (Nicotiana tabacum cv. Virginia 115) and pea (Pisum sativum cv. Sparkle) were carried out in highly inhomogeneous alternating electric fields. Under the electric field of alternating current (AC, sine wave), 600 V/cm and 800 kHz for tobacco protoplast, and 600 V/cm and 700 kHz for pea protoplasts, the protoplasts were aggregated in pearl chains. Intra-specific protoplast fusions were most effectively induced within the aggregates of tobacco and pea, respectively, by the additional application of a single high field pulse of direct current (DC, square wave) at 1 kV/cm for 50 $mutextrm{s}$. Inter-specific fusions between protoplasts of the two plants were most effectively induced in the electric field of 600 V/cm and 700 kHz, and square wave pulse at 1 kV/cm for 50 $mutextrm{s}$. The duration of the pulse over the electrical breakdown voltages was simulated from 1 to 100 $mutextrm{s}$ in both tobacco and pea protoplast. The yield of the electrofusion products was significantly high (above 60%), compared with that (20%) of the standard fusion method by polyethylene glycol (PEG) 4,000, and the viability of electrofused protoplasts was above 70%, but that of PEG-fused protoplasts 8~16%, when determined by Evan's blue staining method.
A method isolating Populus euramericana cv. I-214 mesophyll protoplasts was developed to facilitate application of genetic engineering techniques to this species. The suitable medium for shoot multiplication in vitro was MS basal medium with $0.1mg/{\ell}$ BAP. The effects of several factors influencing protoplast isolation could be evaluated quickly by using leaf in vitro and known volumes of maceration and washing media. The best yields of mesophyll protoplasts were obtained using leaves in vitro in 2.0% Cellulase R-10, 0.8% Macerozyme R-10, 1.2% Hemicellulase, 2.0% Driselase, 0.05% Pectolyase Y-23, and O.6M Mannitol in addition to DTT and MES buffer adjusted to pH 5.6. Over $2.4{\times}10^6$ protoplasts per gram of leaf were produced using these conditions. For protoplast purification, the most favorable sucrose concentration of floating solution was 0.6M after washing them with CPW solution. This method of screening factors affecting protoplast isolation could be applicable to other species.
As the bsic study about protoplast fusion of amylolytic fungus Aspergillus oryze and nonamyloytic sugar fermenter, Saccaromyces cerevsisae, the intraspecific protoplast fusion of A. oryzae was carried out and the properties of the obtained fusants were investigated. For protoplast fomation from mycellia of auxotrophs, Novozyme 234 as lytic enzyme was the most effective and optimal pH was determined to be pH 5.5-6.0. When the two types of protoplasts were treated with a fusogen including 30% PEG4000, they fused effectively and most of fusants were heterokaryons. Protoplasts aggregated with 30% PEG4000 after fusion treatment were observed by the microscope. Protoplast regeneration frequency was 1.46 to 13.8% and complementation frequency of fusion was 0.12 to 0.16. Fusant strains had a 1.5-fold DNA content compared to that of parent strain. And amylase activity was intermediate between those of parent strains.
The protoplast formation of Rhizoctonia solani in the fast growing anastomosis groups (AGs) 1 and 4, the intermediate AG-2 and AG-5, and the slow AG-3 yielded the most, moderate and the least in that order, respectively. Sclerotia formation varied with AGs. A high yield of protoplasts from AGs was obtained with a combined lytic enzyme system containing cellulase 'Onozuka' R-10, macerozyme R-10 and ${\beta}-glucuronidase$. When 3g (fresh weight) of 30 hr old mycelia was incubated for 3 hr at $32^{\circ}C$ with the enzyme mixture in 0.6 M mannitol, maximum protoplasts were obtained in the five AGs. A protoplast fusion between sclerotia forming AG-1 inactivated with heat and non-forming AG-5 was induced by polyethylene glycol and ${Ca}^{2+}$. Seven fusants obtained were based on characteristics of colony and sclerotium formation on culture plates. The fusants were confirmed by isozyme patterns of esterase and killing reaction between AG-1 and a fusant F1501.
Factors affecting protoplast formation and reversion were investigated in Pleurotus sapidus kalchbr. For release of protoplast, enzyme mixture of Novozyme 234, ${\beta}-D-glucanase$ and ${\beta}-glucuronidase$ was most effective, when mycelium of 0.6 M sucrose solution as osmotic stabilizer without addition of buffer solution. The yield of protoplast was highest with mycelium cultured for 4 days on mushroom complete agar medium at ${30}^{\circ}C$. Protoplasts of Pleurotus sapidus were reverted to normal hyphal growth with maximum reversion frequency of 2% on Mushroom complete agar medium stabilized with 0.6 M sucrose solution and covered by 0.75% agar layer.
Brevibacterium lactofermentum SWA (arg trp) and B. lactofermentum SWB (met ser) were obtained from UV and NTG treatment. The rates of protoplast formation by B. lactofermentum SWA and SWB were 99.93% and 99.98%, respectively when each strain was treated with penicillin G in mid exponential growth phase, followed by incubation with 400 $\mu\textrm{g}$/ml of lysozyme in lysis fluid supplemented with 0.4M sucrose. Frequencies of protoplast regeneration in B. lactofermentum SWA and B. lactofermentum SWB were 9.27% and 10.32% respectively, on regeneration medium containing 0.5M sodium succinate, 50 mM $Mg^{2+}$, and 3% PVP. In intraspecific protoplast fusion between B. lactofermentum SWA and B. lactofermentum SWB, fusion frequency of $2.30\times 10^{-5}$ was observed by using the 100mM $CaCl_{2}$ and 30% PEG 6,000 in fusion fluid. Relative recombinant frequencies in each marker by means of selective media could be used for genetic analysis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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