Hypocotyl explants of flowering cabbage were precultured on MS medium without kanamycin and then cocultured with Agrobacterium tumefaciens LBA4404;;pGA875 harboring insect resistantce proteinase inhibitor II(PI-II) gene in MS liquid medium adjusted pH 5.5 for 72hr. These explants were transferred to MS medium containing 20 mg/L kanamycin, 500 mg/L carbenicillin, and 1 mg/L BA. The explants were subsequently subcultured every 2 weeks. After 4 weeks of subculture, kanamycin-resistant shoots were obtained from selection medium. Leaves of putative transformants survived on MS selection medium containing 30 mg/L kanamycin. Incoporation of the PI-II gene into flowering cabbage was confirmed by PCR analysis of genomic DNA. Southern blot analysis showed that ECL-labeled probe for PI-II gene was hybridized to the expected amplified genomic DNA fragment of about 500 by from transgenic flowering cabbage.
The resistance of a non-transgenic poplar clone, 'Ogy' and three transgenic poplar lines to the cottonwood leaf beetle, Chrysomela scripta F., was evaluated by in vitro feeding. The lines were transformed with neomycin phosphotransferase II(NPT II) as a selectable marker, proteinase inhibitor II(pin2) as a resistance gene, and CaMV 35S as a promoter. An efficient method of sterilizing the beetle eggs and introducing them into plant tissue cultures was developed. The resistance of the transgenic lines was investigated in terms of effects tin leaf area consumed, insect weight, insect developmental stages, and plantlet root dry weight after feeding. Also, leaf area consumed was examined by leaf age as measured through leaf plastochron index(LPI). The leaf area consumed and insect weight were highly significant between transformants and control, and insect development in vitro was significant among the transgenic lines. Larval infestation was the most severe around LPI 4 to 5 which were young leaves. The system provided a quick, highly controlled method to screen developing transgenic plantlets directly.
Hypocotyl explants of flowering cabbage were cocultured with Agrobacterium tumefaciens LBA4404;;pGA875 harboring proteinase inhibitor II(PI-II) cDNA and then regenerated into plants. Sucessful transcripts of PI-II gene were detected by RNA dot blot analysis. Bioassay was conducted on transgenic flowering cabbage. It was confirmed that insecticidal activities of transformants were much higer than that of control plants. In progeny test of hansformants, 27.4% of T$_1$ seeds was resistant on MS medium containing 20 mg/L kanamycin.
The potato proteinase inhibitor II (PI-II) protein contains chymotrypsin and trypsin inhibitory site. Among several PI-II genes isolated from genomic library, amino acid sequence deduced from PI-IIT gene has 84% identity with that of the polypeptide chymotrypsin inhibitor (PCI). Therefore a gene fragment having homology with the PCI was cloned into a vector using polymerase chain reaction(PCR) from the potato proteinase inhibitor IIT gene. Two different primers were utilized for cloning; primer A contains NdeI restriction site and 30 nucleotides, which has AUG N-terminal methionine codon, primer B contains BclI restriction site and 28 nucleotides, which has TAG translation stop codon. After PCR, about 160 bp-long DNA fragment was cloned into pRT146, derivative of pUC118, and sequenced. The sequenced NdeI/BclI fragment was moved to pET3a, containing bacteriophage T7 promoter and terminator. The expressed proteins in E. coli BL2l(DE3) were determined on a polyacrylamide gel containing sodium dodecyl sulfate. The expected size of protein deduced from the sequenced gene fragment is about 6,500 dalton whose size was similar to the IPTG-induced protein (6,000 dalton) on a gel. However the expression level was much lower than expected.
Cabbage plants were transformed with the potato proteinase inhibitor II (PINII) gene, bar gene, and hpt gene using Agrobacterium. The expression of the PINII gene was driven by its own promoter which was wound-inducible. Ten transgenic plants were obtained from medium containing hygromycin as a selection antibiotic. The integration and expression of PINII and bar genes were confirmed by Southern and Northern hybridization. Growth and development of diamondback moths (Plutella xylostella) and tobacco cutworm (Spodoptera litura) larvae were examined on $T_1$ plants. The weight of the larvae and pupae of these two insects grown on transgenic plants was not different compared to those grown on wild type plants. However, the pupation and emergence rate of diamondback moths and tobacco cutworms fed on some transgenic plants was lower than on wild type plants. These results suggest that the PINII transgene under the control of a wound-induced promoter may be used for control of insects in transgenic cabbage through reduction of insect progeny number.
We have isolated several proteinase inhibitor II genes pin2 from a Russet Burbank potato DNA library. One of these, pin2T was subcloned and a 1.8 kb Xbal/Nsil insert was sequenced. This fragment contained the complete Inhibitor II gene including 965 Up of flanking DNA upstream from the gene and 200 bp of flanking DNA downstream from the gene. The open reading frame encodes a protein that is similar to other reported proteinase Inhibitor II proteins. The DNA sequence of the 5' flanking region of pin2T from -714 to +1 is highly homologous (91% identity) with that of the previously isolated wound-inducible pin2K. There are, however, four small deletions in the pin2T promoter which are located at -221 to -200, -263 to -254, -523 to -426 and -759 to -708 relative to the transcription start site of the wound-inducible pin2K. Three of these deletions map to a portion of the promoter that controls the wound-inducibility of the proteinase inhibitor genes. Chimeric genes containing the promoter of the pin2T gene linked with the both CAT and GUS were constructed and transfered into tobacco plants. Analysis of these plants indicated that pin2T is not a wound-inducible gene but is expressed at low levels. Thus, wound-inducibility is lost with the concomitant natural deletion of three small regions of the promoter. Comparision of the sequences deleted in pin2T relative to the pin2K with Genebank sequences indicates that the deleted sequences contain a motif (consensus 5'-AGTAAA-3') that is found in many other wound-inducible genes but not easily found in the published promoter sequences of other plant genes. Nuclear proteins from unwounded and wounded potato leaves were bound to the proximal promoter region, downstream of the 5'-AGTAAA-3', of pin2T. The comparison of the pin2T gone with the pin2K gene indicates that the natural internal promoter deletions are likely responsible for loss of the wound-inducible phenotype in the pin2T gene.
Cytokinin is one of major growth regulators in plants. In this study, the gene isopentenyl transferase (jpt) which encodes a key enzyme involved in the biosynthesis of the growth regulator cytokinin isolated from Agrobacterium tumefaciens was introduced ito tobacco plant via Agrobacterium-mediated transformation. The jpt gene was modulated using the proteinase inhibitor II (PI-IIK) promotor. In general, this promoterlipt gene fusion resulted in overproduction of cytokinins throughout the transgenic plants. The overproduction of cytokinin caused dramatic changes in morphology of the plant, including stem thickness and reduced root development. The studies reported in this paper were initiated to examine the consequences of overproduction of cytokinin in plant.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1987.07a
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pp.309-321
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1987
Differential gene expressions of patatin, proteinase inhibitor II, PAPI, rbcS and actin in potato microtuber have been examined. Microtubers from the several different stages of development were collected and their protein and mRNA patterns were examined. SDS-PAGE of microtuber proteins revealed that developmental changes in protein should be analogous to that of potatoes grown in the field. The level of patatin mRNA was the highest at the 30th day of development. Proteinse inhibitor IImRNA level was at the highest at the 15th day and decreased thereafter. The levels of PAPI mRNA, rbcS mRNA and actin mRNA were low throughout the time course examined.
To understand the signal transduction pathway that leads to the activation of the wound-inducible proteinase inhibitor II (pin2) promoter. $F_2$ progenies of wound (-) mutant crossed with wild-type Arabidopsis plants were biochemically and genetically characterized. Wound (-) mutant was derived from transgenic Arabidopsis plants containing bacterial cytosine deaminase gene under the control of pin2 promoter. The cytosine deaminase assays indicated that wound (-) mutant is a dominant inhibitor of wound-inducibility as only 3 of the $20F_2$ progenies showed cytosine deaminase (CDase) activity, To construct a structural map of the wound (-) mutant chromosomal regions, cleaved, amplified polymorphic sequences (CAPS) markers that cover all Chromosomes were used. Chromosomal regions covered by three different CAPS markers could be candidates for further fine mapping of the location of the wound (-) mutation. g4026, RGA1 and ASA1 located at 84.9 on recombinant inbred (RI) map of chromosome I, at 1.75 on RI map of chromosome II, and 18.35 on RI map of chromosome V, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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