To determine the patterns and the levels of expression of the cauliflower mosaic virus (CaMV 35S) promoter and the rice actin 1 (Act1) promoter in rice, transgenic rice plants containing CaMV 35S-$\beta$-glucuronidase (GUS) and Act1-GUS constructs were generated and examined by fluorometric and histochemical analyses. The fluorometric analysis of stably transformed calluses showed that the activity of the rice Act1 promoter was stronger than that of the CaMV 35S promoter in rice cells. In a histochemcial study of the transgenic rices, it was shown that the GUS activity directed by the CaMV 35S promoter was localized mainly in parenchymal cells of vascular tissues of leaves and roots and mesophyll cells of leaves. These results are similar to those of potato, a dicot plant. In contrast, rice plant transformed with Act1-GUS fusion construct revealed strong GUS activity in parenchymal cells of vascular tissue, mesophyll cells, epidermal cells, bulliform cells, guard subsidiary cells of leaves and most cells of the root, suggesting that the rice Act1 promoter is more constitutive than the CaMV 35S promoter. It was also confirmed that in both types of transgenic rice little or no staining was localized in metaxylen tracheary elements of vascular tissue from leaves or roots. These results indicate that the rice Act1 promoter can be utilized more successfully for expression of a variety of foreign gene in rice than the CaMV 35S promoter.
Transcriptome analysis revealed that the sinR gene encoding a transition-state regulator of Bacillus pumilus, genetically close to B. subtilis, was expressed at high levels during growth. The sinR gene is the second gene of the sinIR operon consisting of three promoters and two structural genes in B. subtilis. This study used the sinIR promoter of B. subtilis DB104 to construct a recombinant protein expression system. First, the expression ability depending on the number of sinIR promoter was investigated using enhanced green fluorescent protein (eGFP). The expression level of eGFP was slightly higher when using two promoters (Psin2) than using original promoters. The Psin2 promoter was further engineered by modifying the repressor binding site and -35 and -10 regions. Shine-Dalgarno (SD) sequence of the sinI gene was modified to the consensus sequence. Finally, combining the engineered Psin2 promoter with the modified SD sequence increased the expression level of eGFP by about 13.4-fold over the original promoter. Our results suggest that the optimized sinIR promoter could be used as a novel tool for recombinant protein expression in B. subtilis.
The expression of Aspergillus nidulans glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (gpdA) and trpC promoters in A. oryzae were compared using E. coli lacZ gents fusions. The specific activities of the expressed E. coli $\beta$-galactosidase in A. oryzae transformants containing the A. nidulans gpdA promoter were around 2,000 units per ug of protein. The specific activities of transformants containing the A. nidulans trpC promoter were very low, ranging from 10.5 to 52.3 units per ug of protein. These results showed that the expression of the A. nidulans gpdA promoter in A. oryzae was approximately 70 times greater than the A. nidulans trpC promoter. In western blot analysis, immunoreactive bands of a imlilar molecular weight as the E. coli $\beta$-galactosidase were observed in A. oryzae carrying the gpdA-lacZ fusion and to a lesser intensity in those carrying the tvpC-lacZ fusion. Southern analysis showed that the higher expression of the gpdA-lacZ fusion as compared to the trpC-lacZ fusion was not due a greater number of integrated plasmids.
Yao, Zhuang;Meng, Yu;Le, Huong Giang;Lee, Se Jin;Jeon, Hye Sung;Yoo, Ji Yeon;Kim, Jeong Hwan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.31
no.6
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pp.833-839
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2021
Bacillus subtilis CH3-5 isolated from cheonggukjang secretes a 28 kDa protease with a strong fibrinolytic activity. Its gene, aprE3-5, was cloned and expressed in a heterologous host (Jeong et al., 2007). In this study, the promoter of aprE3-5 was replaced with other stronger promoters (Pcry3A, P10, PSG1, PsrfA) of Bacillus spp. using PCR. The constructed chimeric genes were cloned into pHY300PLK vector, and then introduced into B. subtilis WB600. The P10 promoter conferred the highest fibrinolytic activity, i.e., 1.7-fold higher than that conferred by the original promoter. Overproduction of the 28 kDa protease was confirmed using SDS-PAGE and fibrin zymography. RT-qPCR analysis showed that aprE3-5 expression was 2.0-fold higher with the P10 promoter than with the original promoter. Change of the initiation codon from GTG to ATG further increased the fibrinolytic activity. The highest aprE3-5 expression was observed when two copies of the P10 promoter were placed in tandem upstream of the ATG initiation codon. The construct with P10 promoter and ATG and the construct with two copies of P10 promoter in tandem and ATG exhibited 117% and 148% higher fibrinolytic activity, respectively, than that exhibited by the construct containing P10 promoter and GTG. These results confirmed that significant overproduction of a fibrinolytic enzyme can be achieved by suitable promoter modification, and this approach may have applications in the industrial production of AprE3-5 and related fibrinolytic enzymes.
Background: CD11c, also known as integrin alpha x, is one of the optimum markers of dendritic cells. However, the regulation of the CD11c expression in mouse has not been identified yet. In this study, in order to analyze the regulation of CD11c expression, the promoter of CD11c was cloned and characterized. Methods: To identify the promoter portion, various sizes of what are considered to be CD11c promoter fragments was amplified by polymerase chain reaction (PCR), using mouse genomic DNA as a template. After sequence was obtained, these fragments were transfected into various cell lines including mouse dendritic cell lines such as JAWSII and DC2.4 and L929 as control cell line.. The promoter activity of three promoter fragments was measured and compared by luciferase activity in the transfected cells. Results: Three clones with size of 1kb, 3kb and 6kb were obtained from mouse genomic DNA. Flow cytometry analysis of JAWSII cells revealed that 52% of the cells expressed CD11c, which was confirmed by RT-PCR analysis. On the contrary, L929 and DC 2.4 cells did not express CD11c. The CD11c+ JAWSII cells were enriched from 52% to 90% with cell sorter. The comparative luciferase activity analyisis demonstrated that the region responsible for tissue specific expression was contained within -3 kb and the clone with size of 3 kb particularly showed higher luciferase activity than 6 kb and 1 kb clones. Conclusion: The CD11c promoter region containing the region responsible for tissue specificity was successfully cloned and -3 kb region showed the highest activity.
Vitis vinifera thaumatin-like protein (VVTL1) is a fruit-specific and ripening-related protein in grape. In order to isolate VVTL1-homolog gene and fruit-specific promoter from Campbell cultivar, we isolated a genomic clone containing VVTL1-homolog gene from grape genomic library through plaque hybridization. VVTL1-homolog gene has an intronless genomic structure, which the pattern is matched with those of other PR5 genes such as osmotin and osmotin-like protein genes. Transcription start site was determined by primer extension analysis. The promoter region of VVTL1-homolog gene contains a sequence or structure, especially the location and number of TCA box and ABRE (abscisic acid-responsive element), distinct from other reported plant PR5 genes, though with several known functional elements such as a TATA box and CAAT box. These results suggested that VVTL1-homolog gene may be regulated by a plant hormone, abscisic acid, and one or several stresses such osmotic pressure and pathogen infection. The isolation of fruit-specific promoter may be helpful to breed a genetically modified grape with valuable phenotype or materials in fruits.
The xylA gene of Bacillus stearothermophilus No. 236 encoding $\beta$-xylosidase was cloned and sequenced previously. The transcriptional start site of the xylA gene cloned in E. coli was identified to be the guanine (G) by primer extension analysis. This supports that the expression of xylA gene is also directed in the E. coli cells by the previously determined transcription initiation signals, -10 sequence (CATAAT) and -35 sequence (TTGTTA) separated by 12 bp. To increase the expression of $\beta$-xylosidase, firstly the spacer region of xylA promoter was extended from 12 to 17 bp, and then the -10 and -35 elements were converted into their respective consensus sequences. The mutant promoters thus obtained were tested for their activities in both the E. coli and B. subtilis host cells. The change of the length of the spacer region from 12 to 17 bp resulted in a 1.6- and 2.5-fold increase in promoter strength in comparison with the wild type promoter in E. coli and B. subtilis cells, respectively. Also, strength of the promoter with the fourth T to A transversion on its -35 element increased in the transcription level by about 35 times compared with that of wild-type promoter. However, surprisingly the 5' end C-to-T transition of the -10 hexamer showed a 5- to 15-fold reduction in $\beta$-xylosidase activity in both E. coli and B. subtilis. Together, the present data demonstrated that the 5' end nucleotide C of the -10 sequence CATAAT and the fourth nucleotide A of the -35 hexamer are two most critical nucleotides for the promoter activity in the context of the xylA promoter.
Cervical carcinoma is the main cause of cancer-related mortality in women and is correlated with more than 15 risk cofactors, including infection of cervical cells with high-risk types of HPV (hrHPV). Indeed, both aberrant methylation of the RASSF1A promoter and hrHPV infection are often observed in cervical carcinomas. The purpose of our meta-analysis was to evaluate the role of RASSF1A promoter methylation and hrHPV infection in cervical cancer. Our meta-analysis involved 895 cervical cancer patients and 454 control patients from 15 studies. Our results suggested that RASSF1A promoter hypermethylation increased the risk of cervical cancer (OR=9.77, 95%CI=[3.06, 31.26], P=0.0001, $I^2=78%$). By grouping cases according to cancer subtypes, we found that HPV infection was higher in cervical squamous cell carcinomas (SCCs) than in cervical adenocarcinomas/adenosquamous cancers (ACs/ASCs) (OR=4.00, 95%CI=[1.41, 11.30], P=0.009, $I^2=55%$). Interestingly, HPV infection tended to occur in cervical cancers with relatively low levels of RASSF1A promoter methylation (OR=0.59, 95%CI=[0.36, 0.99], P=0.05, I2=0%). Our study provides evidence of a possible interaction between HPV infection and RASSF1A promoter methylation in the development of cervical cancers.
Jang, Y. S.;Yoon, D. H.;Kim, T. H.;Cheong, I. C.;Jo, J. K.
Journal of Animal Science and Technology
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v.45
no.2
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pp.169-182
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2003
To understand the structure and regulation of bovine ADRP (Adipocyte Differentiation Related Protein) gene, we have isolated the genomic clone of bovine ADRP and determined its sequence. A genomic Southern blot analysis confirmed that ADRP gene is present as a single copy in bovine genome and the ADRP gene spans 12 kb. Bovine ADRP genomic clone, HwADRPg-1, had 8 exons and 7 introns, and all splicing sites conformed to the GT/AG rule with the exon-intron boundaries located exactly. Analysis of the upstream 649 bp of the sequence of HwADRPg-1 showed that it does not contain any canonical TATAA boxes; however Sp1 binding sites and CAAT boxes are found. The promoter contained potential binding sites for AP-1, AP-2 and several putative transcription factor binding sites. The 5'-flanking region of HwADRPg-1 contained muscle specific transcription activator Myo G and C/EBP (CCAAT/ enhancer binding protein) recognizing site. These results suppose that the Myo G transcription activator regulate the transcription of bovine ADRP gene in muscular tissue and its transcriptional activity was triggered by degree of muscular development. Our results provide the necessary analysis for other flanking sequences are needed in addition to the proximal cis elements of this promoter to confer adipocyte differentiation-dependent or growth-dependent transcriptional control.
NPR1 is a positive regulator of systemic acquired resistance in Arabidopsis and rice. Expression of the rice gene OsNPR1 is induced by salicylic acid (SA). To identify the region of the OsNPR1 promoter involved in response to SA, we carried out deletion mutagenesis of the region 1005 bp upstream of the OsNPR1 start codon. Ciselement analysis revealed that the OsNPR1 promoter contains W-boxes and ASF1 motifs, both of which are known to be functional cis-elements of the WRKY and bZIP proteins, respectively. The deletion constructs 1005:LUC and 752:LUC, were induced by up to 4.3- and 3.8-fold, respectively, following SA treatment, suggesting that W-boxes and ASF1 motifs may play an important role in the strong induction of these constructs by SA. Using mutation analysis, we also showed that both the W-box and ASF1 motif are necessary for SA-induced expression of OsNPR1.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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